The optimum conditions of protoplasts formation from Pyricularia oryzae were investigated with lytic enzymes and osmotic stabilizers. The mycelia were begun to refease the protoplasts in response to the complex enzyme solution after 30-60 minutes and reached to maximum after 2-3hrs. Among the lytic enzymes tested, the mixture solution containing ${\beta}-Glucuronidase$(0.01 ml/ml), Cellulase ONOZUKA-RS(20mg/ml), Driselase (10mg/ml), and Macerozyme R-10 (10mg/ml) resulted in the highest rate of protoplasts releasing of Pyricularia oryzae. The best stabilizer was 0.6M KCl at pH 7.0. Shen the mycelia were digested with enzyme mixture, the stationary culture was better than shaking culture for higher protoplast formation.
An efficient production method of chlorella extract was developed by enzymatic treatment using cell lytic and proteolytic enzymes. The suitable dosage of Tunicase, a cell lytic enzyme, was found to be 1.0% (w/w). Proteolytic enzymes were screened to obtain high chlorella growth factor (CGF) index, which indicates crude CGF content and solid recovery. Among the seven tested proteases, Esperase, whose optimal dosage was 1.0% (w/w), was selected. By co-treatment using optimal dosages of Tunicase and Esperase, the highest CGF index and solid recovery were obtained. The CGF index and solid recovery of co-treatment were remarkably enhanced by 250 ($4.36{\rightarrow}15.21$) and 220% ($12.65%{\rightarrow}40.15%$), respectively, than those of the non-treated extracts.
Kim, Kyung-Soo;You, Chang-Hyun;Kong, Won-Sik;Kim, Young-Ho;Cha, Dong-Yeul
The Korean Journal of Mycology
/
v.26
no.2
s.85
/
pp.275-280
/
1998
Factors affecting protoplasts isolation and regeneration of Fomitella fraxinea were investigated. Lytic enzyme mixture of Novozym 234, Cellulase onozuka R-10 and ${\beta}-Glucuronidase$ was found to be the best for the protoplasts isolation. Osmotic stabilizer of 0.6 M sucrose was observed as the best for protoplasts isolation. The highest number of protoplasts was obtained from the F. fraxinea mycelium with lytic enzyme mixture and osmotic stabilizer that had been cultured for 3 hours. The highest regeneration rate of 0.02 % was achieved when the 0.6 M sorbitol was employed as osmotic stabilizer.
1) In order to obtain a microbial strain having a strong yeast cell wall lytic activity, about 156 isolates capable of forming clear zones on baker's yeast-peptone-bouillon agar plate were obtained from soil, mud and water samples and a strain K-42 with the highest lytic activity was identified as Bacillus circulans. 2) Effect of carbon sources on the lytic enzyme production by the K-42 strain was in the decreasing order of maltose>glucan>xylose>control in 2-day culture and of lactose>galactose>glucan>control in 3-day culture. Effect of inorganic nitrogen sources was in the decreasing order of ammonium acetate>sodium nitrate>control in 2-day culture and of ammonium chloride>ammonium oxalate>control in 3-day culture, whereas organic nitrogen sources except milk casein showed an increase in 2-day culture and a decrease in 3-day culture. Synergistic effect of carbon sources and nitrogen sources was not observed. 3) The enzyme production by the K-42 strain was greatly affected by pH change of the culture medium, thus a high lytic activity could be maintained by keeping the pH range of $7{\sim}8$ and adding carbon or nitrogen sources. 4) Optimum conditions for the lytic activity of the K-42 strain were obtained at $pH\;7{\sim}8$ and $60^{\circ}C$ and the extent of hydrolysis toward heated yeast cell wall was 65%.
For the production of potent chitinolytic enzyme from bacteria, screening was carried out. Of 100 samples from soil, fresh water and sea water collected from the Kyung-gi area, 7 strains of chitinolytic bacteria were isolated. Among them, Aeromonas hydrophila 5-3K showed the highest chitinolytic activity. Culture conditions of Aeromonas hydrophila for the production of chitinolytic enzyme were inverstigated and lytic enzyme was fractionated by the use of ammonium sulfate and Sephadex G-100. Maximum production of chitinolytic enzyme was obtained at pH 7.0 and 30$\circ$C with chitin concentration between 0.2% and 1.0%. Conditions for the enzyme production were optimized including fermentor cultivation. The chitinolytic system of Aeromonas hydrophila 5-3K was composed of two enzymes, chitinase and chitobiase.
An antifungal Pseudomonas stutzeri YPL-1 produced extracellular chitinase and .betha.-1, 3-glucanase that were key enzymes in the decomposition of fungal hyphal walls. These lytic extracellular enzymes markedly inhibited mycelial growth of the phytopathogenic fungus Fusarium solani. A chitinase from P. stutzeri YPL-1 inhibited fungal mycelial growth by 87%, whereas a .betha.-1, 3-glucanase from the bacterium inhibited growth by 53%. Furthermore, co-operative action of the enzymes synergistically inhibited 95% of the fungal growth. The lytic enzymes caused absnormal swelling and retreating on the fungal hyphal walls in a dual cultures. Scanning electron microscopy clearly showed hyphal degradation of F. solani in the regions interacting with P. stutzeri YPL-1. In an in vivo pot test, P. stutzeri YPL-1 proved to have biocontrol ability as a powerful agent in controlling plant disease. Planting of kidney bean (Phaseolus vulgaris L.) seedlings with the bacterial suspension in F. solani-infested soil significantly suppressed the development of fusarial root-rot. The characteristics of a crude preparation of .betha.-1, 3-glucanase produced from P. stutzeri YPL-1 were investigated. The bacterium detected after 2 hr of incubation. The enzyme had optimum temperature and pH of 40.deg.C and pH 5.5, respectively. The enzyme was stable in the pH range of 4.5 to 7.0 and at temperatures below 40.deg.C, with a half-life of 40 min at 60.deg.C.
M. incognita are plant-parasite nematode that cause severe damage to the crops. P. lilacinus are renowned for inhibitation of development of M. incognita's egg. We make a study for enzymatic examining the cause closely that P. lilacinus suppress development of M. incognita's egg by parasiting. The research result is explained the place below. 1. The egg that is exposed to co-enzymes which are cultured in the broth culture starts to change the membrane of egg from 3days. And in 10days, that membrane completely disappear. These are observed through light microscope. Therefore, we know that M. incongnita are controlled by extracellular lytic enzymes that are produced by P. lilacinus. 2. Through scanning electron microscope, we can find that the egg that is attacked by P. lilacinus loses it's membrane gradually, and that loss of the membrane causes transform, which suppresses the development of egg.
An antagonistic bacterium Pseudomonas stutzeri YPL-1 liberated extracellular chitinase and $\beta$-1,3-glucanase which are key enzymes in the decomposition of fungal hyphal walls. The lytic enzymes caused abnormal swelling and retreating at the hyphal tips of plant pathogenic fungus Fusarium solani in a dual culture. Scanning electron microscopy revealed the hyphal degradation of F. solani in the regions interacting with P. stutzeri YPL-1. The production of chitinase and properties of a crude preparation of the enzyme from P. stutzeri YPL-1 were investigated. Peak of the chitinase activity was detected after 4 hr of cultivation. The enzyme had optimum temperature and pH of 50$^{\circ}C$ and pH 5.3, respectively. The enzyme was stable in the pH range of 3.5 to 6.0 up to 50$^{\circ}C$. The enzyme was significantly inhibited by metal compounds such as $HgCl_2$, but was stimulated by $CoCl_2$. P. stutzeri YPL-1 produced high levels of the enzyme after 84 hr of incubation. Among the tested carbon sources, chitin was the most effective for the enzyme production, at the concentration level of 3%. As a source of nitrogen, peptone was the best for the enzyme production, at the concentration level of 4%. The maximum amount of enzyme was produced by cultivating the bacterium at a medium of initial pH 6.8.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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