Kim, Si Hyun;Lim, Nu Ri;Min, Hophil;Sung, Changmin;Oh, Han Bin;Kim, Ki Hun
Mass Spectrometry Letters
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v.11
no.4
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pp.118-124
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2020
An analytical method was developed for hypoxia-inducible factor (HIF) stabilizers based on QuEChERS (Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged, and Safe) sample preparation and liquid chromatography-high resolution mass spectrometry analysis. HIF stabilizers potentially enhance the performance of athletes, and hence, they have been prohibited. However, the analysis of urinary HIF stabilizers is not easy owing to their unique structure and characteristics. Hence, we developed the QuEChERS preparation technique for a complementary method and optimized the pH, volume of extraction solvent, and number of extractions. We found that double extraction with 1% of formic acid in acetonitrile provided the highest recovery of HIF stabilizers. Moreover, the composition of the mobile phase was also optimized for better separation of molidustat and IOX4. The developed method was validated in terms of its precision, detection limit, matrix effect, and recovery for ISO accreditation. To the best of our knowledge, this is the first demonstration of the application of the QuEChERS method, which is suitable as a complementary analytical method, in antidoping.
Proteins were extracted from an aqueous phase with reversed micelles. The effect of pH, and salt concentration on the solubilization of lysozyme in AOT/isooctane solution was studied to explore the potential for employing this solvent system in the large-scale recovery and concentration of proteins using liquid extraction. For pH values below the isoelectric point, pl of the protein, solubilization was high, probably owing to strong electrostatic interactions between the positively charged proteins and the anionic surfactant heads forming the inner micelle wall. At low ionic strength complete solubilization of the protein was observed. A pH higher than the pl of lysozyme and a salt concentration lower than that of the water pool were required for the recovery aqueous phase to ensure the back extraction of lysozyme from the AOT reversed micelles.
The solvent extraction of Tb(III) from hydrochloric acid solution was investigated by employing single organophosphorus (D2EHPA, PC88A and Cyanex 272), its mixture with Alamine 336 and ionic liquids with Aliquat 336. The equilibrium pH after the extraction with extractant mixtures and ionic liquids was higher than that by single extractants. Among the mixtures and ionic liquids, only the ionic liquid with Cyanex 272 and Aliquat 336 showed synergism to the extraction of Tb(III). The extraction percentage of Tb(III) by the extractant mixtures was lower than that by single extractant and the extraction order was in the following order : D2EHPA + Alamine 336 > PC88A + Alamine 336 > Cyanex 272 + Alamine 336. The extraction order of Tb(III) by the ionic liquids was Cyanex 272 + Aliqaut 336 > PC88A + Aliquat 336 > D2EHPA + Aliquat 336.
A simple and rapid method has been developed and validated for simultaneous determination of each macrolides residues (spiramycin, josamycin, tilmicosin, tylosin) in chicken muscle by high-performance liquid chromatography- photo diode array (HPLC-PDA). Chicken muscle sample have been extracted with liquid-liquid extraction process; analytes was extracted by acetonitrile, and then defatted with hexane saturated by acetonitrile. The HPLC separation was performed on a Unison UK-$C_{18}$ ($150mm{\times}3.0mm$, $3{\mu}m$) with a gradient system of 0.1% trifloroacetic acid (TFA) and 0.1% trifloroacetic acid (TFA) in acetonitrile as the mobile phase. The drugs were detected at 232 nm for spiramycin and josamycin, and 287 nm for tilmicosin and tylosin. The limits of quantification (LOQs) were between 27 and $59{\mu}g/kg$; and the intra- and inter-day precision (relative standard deviation; RSD) was between 0.9-13.2 and 2.4-13.1%, respectively in chicken muscle sample. The method may has been successfully applied for multiresidue determination of four macrolides below the maximum residue limits (MRLs) established by the European Union (EU).
A method for measuring Rn-222 and Ra-226 in aqueous sample using liquid scintillation counting technique has been studied. The Rn-222 was extracted easily from the water sample (10 mL) by 12 mL of xylene based organic scintillant. After radioactive equilibrium between Rn-222 and its alpha emitting decay products for three hours, the alpha activity from Rn-222 and its decay products were measured in a scintillation vial using the Wallae $1220^{TM}$ Quantulus liquid scintillation counter. Ra-226 concentration in aqueous sample was determined, after isolation of Ra-226 from the sample matrix, by extraction the ingrowth of the Rn-222 and its alpha emitting decay products with xylene based organic scintillant. The optimum pulse-shape analysis (PSA) value was evaluated by the figure of merit (FM) criterion. Minimum detectable activity (MDA) is about 0.14 Bq/L (3.78 pCi) for the region of Rn-222 and its alpha emitting decay products and 0.06 Bq/L (1.63 pCi) for the region of Po-214 respectively, with 200 min, counting time at PSA level 100 in the low-diffusion polyethylene vial and xylene based cocktail solution. Experiment on the optimum sample-cocktail volume ratio, the influence of agitation and the diffusion of radon from vial were carried out.
An environmentally friendly, so-called green, high performance liquid chromatography method was developed and validated for the determination of trans, trans-muconic acid (t,t-MA) in human urine as a biomarker of benzene exposure. After urinary t,t-MA was extracted and enriched using solid-phase extraction, a MF-Ph1 SG80 ($150mm{\times}2.0mm$ I.D., 5 ${\mu}m$) column with a mobile phase of 10 mM $KH_2PO_4$ containing 0.1% $H_3PO_4$ was used for isocratic separation of t,t-MA with UV detection at 259 nm. The calibration curve was constructed in the range of 0.1-5.0 mg/L with good linearity ($r^2$=0.9992). The intra-day and inter-day precision (as RSD) were 0.9-8.5% and 3.1-4.5%, respectively. The average recovery ranged from 97.5% to 101.7%. The green sample preparation and separation with no organic solvents were successfully achieved. The validated method would be suitable for the routine biological monitoring of benzene exposure in the occupational settings.
An analytical method for the determination of cephalexin (CEX) in bovine tissues (muscle, liver, kidney and fat tissues) was developed and validated using liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Tissue samples were extracted by the liquid-liquid extraction based on 5% trichloroacetic acid (TCA). The chromatographic separation was achieved on a reverse phase $C_{18}$ column with gradient elution using a mobile phase of 20 mM hexafluroacetylacetone (HFAC)/50% acetonitrile (40:60). The procedure was validated according to the Ministry of Food and Drug Safety guideline determining accuracy, precision, and limit of detection. Mean recoveries of CEX from spiked edible tissues ($6{\sim}1,500{\mu}g/kg$) were 83.9~106.8%, and the relative standard deviation was between 2.3 and 14.8%. Linearities were obtained with the correlation coefficient ($r^2$) of > 0.999. Limit of detection and limit of quantification for the investigated CEX were 2~10 and $6{\sim}30{\mu}g/kg$, respectively. This method was reliable, sensitive, economical and suitable for routine monitoring of CEX residues in bovine edible tissues.
Hur, Yeoun;Tae, Sookil;Koh, Yun-Joo;Hong, Sung-Hyun;Yoon, Young Ho;Jang, Haejong;Kim, Sooji;Kim, Kyeong Ho;Kang, Seung Woo;Lee, Youngshin;Han, Sang Beom
Mass Spectrometry Letters
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v.5
no.2
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pp.42-48
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2014
A specific and sensitive liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry method (LC-ESI-MS/MS) was developed and validated for the simultaneous quantification of porphyrins (coproporphyrin, pentacarboxylporphyrin, hexacarboxylporphyrin, heptacarboxylporphyrin, and uroporphyrin) in human plasma and urine. Acidified plasma samples and urine samples were prepared by using liquid-liquid extraction using ethyl acetate and protein precipitation with acetonitrile, respectively. The separation was achieved onto a Synergi Fusion RP column ($150mm{\times}2.0mm$, $4{\mu}m$) with a gradient elution of mobile phase A (0.1% formic acid in 2 mmol/L ammonium acetate, v/v) and mobile phase B (20% methanol in acetonitrile, v/v) at a flow rate of $450{\mu}L$/min. Porphyrins and the internal standard (IS), coproporphyrin I-$^{15}N_4$, were detected by a tandem mass spectrometer equipped with an electrospray ion source operating in positive ion mode. Multiple reaction monitoring (MRM) transitions of the protonated precursor ions and the related product ions were optimized to increase selectivity and sensitivity. The proposed method was validated by assessing selectivity, linearity, limit of quantification (LOQ), precision, accuracy, recovery, and stability. The calibration curves were obtained in the range of 0.1-100 nmol/L and the LOQs were estimated as 0.1 nmol/L for all porphyrins. Results obtained from the validation study of porphyrins showed good accuracy, precision, recovery, and stability. Finally, the proposed method was successfully applied to clinical studies on the autism spectrum disorder (ASD) diagnosis of 203 Korean children.
Hem, Lina;Choi, Jeong-Heui;Liu, Xue;Khay, Sathya;Shim, Jae-Han
The Korean Journal of Pesticide Science
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v.12
no.4
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pp.315-322
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2008
In this study, a simple, effective, and sensitive method has been developed for the quantitative residue analysis of cyhalofop-butyl and its metabolite cyhalofop acid in water and soil when kept under laboratory conditions. The content of cyholofop-butyl and cyhalofop acid in water and soil was analyzed by first purifying the compounds through liquid-liquid extraction and partitioning followed by Silica gel (adsorption) chromatography. Upon the completion of the purification step the residual levels were monitored through high-performance liquid chromatography (HPLC) using a UV absorbance detector. The recoveries of cyhalofop-butyl from three replicates spiked at two different concentrations ranged from 82.5 to 100.0% and from 66.7 to 97.9% in water and soil, respectively. The limit of detection and minimum detection level of cyhalofop-butyl in water and soil was 0.02 ppm and 10 ng, respectively. The recoveries of cyhalofop acid ranged from 80.7 to 104.8% in water and from 76.9 to 98.1 % in soil. The limit of detection of cyhalofop acid was 0.005 ppm in water and 0.01 ppm in soil, while the minimum detection level was 2 ng both in water and soil. The half-live of cyhalofop-butyl was 4.14 and 6.6 days in water and soil, respectively. The method was successfully applied to evaluate cyhalofop-butyl residues in water and soil applied aj. 30% emulsion, oil in water (EW) product.
An analytical method for the simultaneous determination of four tetracycline (oxytetracycline, tetracycline, chlortetracycline, doxycycline) in egg samples was developed and validated using liquid chromatography with ultraviolet detection. Egg samples were extracted by the liquid-liquid extraction based on acetonitrile. The chromatographic separation was achieved on a reverse phase C8 column with gradient elution using a mobile phase of 20 mM oxalic acid (pH 1.5)/acetonitrile. The procedure was validated according to the Food Drugs Administration guideline determining accuracy, precision, and limit of detection. Mean recovery of tetracyclines from spiked egg samples (50, 100, 200, 400, and $800{\mu}g/kg$) were 78.8-109.3%. Linearity in concentration range of $50-800{\mu}g/kg$ was obtained with the correlation coefficient $(r^2)$ of 0.994-0.999. The intra- and inter-day precision (relative standard deviation; RSD) was between 0.3-12.8 and 0.2-11.7%, respectively. Limit of detection (LOD) and limit of quantification (LOQ) for the investigated tetracyclines were 30 and $50{\mu}g/kg$ depending on egg samples, respectively. This method was reliable, sensitive, economical and suitable for routine monitoring of tetracycline residues in dairy egg.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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