To establish and validate a liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method for the rapid and accurate quantitation of diarrhetic shellfish poisoning (DSP) toxins, we compared the results from different mobile phases and columns used for their analysis and collision energies for MS/MS experiments. Clear peaks of okadaic acid (OA) and dinophysistoxin-1 (DTX1) were obtained by using a mobile phase comprising aqueous acetonitrile containing 2 mM ammonium formate and 50 mM formic acid. The collision energies were optimized to facilitate the most sensitive detection for each toxin, namely, OA, DTX1, pectenotoxin-2 (PTX2), or yessotoxin (YTX). Further, the maximum ion response was obtained at a collision energy of 48 V for OA and DTX1. We compared the analytical performance of $C_8$ and $C_{18}$ columns. A wide range of toxins namely, OA, DTX1, PTX2, and YTX, except DTX3, were detected by both the columns. Although DTX3 was only detected by the $C_8$ column, we found that the $C_{18}$ column was also suitable for the quantitation of OA and DTX1 the toxins responsible for inducing diarrhea. The limit of detection of OA and DTX1 by the established LC-MS/MS conditions was 1 ng/g, and the limit of quantitation of the toxins under the same conditions was 3 ng/g. The process efficiencies were 91-118% for oysters (Crassostrea gigas) and 96-117% for mussels (Mytilus galloprovincialis) further, we observed no significant effect of matrix during the ionization process in LC-MS/MS. The comparison between mouse bioassay (MBA) and LC-MS/MS yielded varying results because low concentrations of OA and DTX1 were detected by LC-MS/MS in some shellfish samples, which provided positive results on MBA for DSP. The analysis time required by MBA for DSP analysis can be reduced by LC-MS/MS.
A simultaneous determination was developed for 9 aminoglycoside antibiotics (amikacin, apramycin, dihydrostreptomycin, gentamicin, hygromycin B, kanamycin, neomycin, spectinomycin, and streptomycin) in meat by liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Each parameter was established by multiple reaction monitoring in positive ion mode. The developed method was validated for specificity, linearity, accuracy, and precision based on CODEX validation guideline. Linearity was over 0.98 with calibration curves of the mixed standards. Recovery of 9 aminoglycosides ranged on 60.5~114% for beef, 60.1~112% for pork and 63.8~131% for chicken. The limit of detection (LOD) and limit of quantification (LOQ) were 0.001~0.009 mg/kg and 0.006~0.03 mg/kg, respectively in livestock products including beef, pork and chicken. This study also performed survey of residual aminoglycoside antibiotics for 193 samples of beef, pork and chicken collected from 9 cities in Korea. Aminoglycosides were not found in any of the samples.
Kyung-Ho Park;Song-Yi Gu;Geon-Woo Park;Jong-Jib Kim;Jong-soo Lee;Sang-Gu Kim;Sang-Yun Lee;Hyang Sook Chun
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.38
no.5
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pp.319-331
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2023
Aminoglycoside antibiotics, also known as aminoglycosides (AGs), are veterinary drugs effective against a wide range of gram-negative and gram-positive bacteria. Owing to their recent use in cultured meats, it has become essential to establish an analytical method for safety management. AGs are highly polar compounds, and ion-pair reagents (IPRs) are used to ensure component separation. Owing to the high possibility of potential mechanical problems resulting from IPR addition to the mobile phase, an analytical method in which IPRs are added directly to the vial was explored. In this study, methods for analyzing 10 AGs via liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) with the addition of two IPRs were validated for selectivity, detection limit, quantitation limit, recovery, and precision. The detection limit was 0.0001-0.0038 mg/kg, the quantification limit was 0.004-0.011 mg/kg, and the linearity (R2) within the concentration range of 0.01-0.5 mg/kg was over 0.99. Recovery and precision (expressed as relative standard deviation) evaluated in the two matrices (beef and cell culture media) ranged from 70.7% to 120.6% and 0.2% to 24.7%, respectively. The validated AG analytical method was then applied to 15 meats prepared from chicken, beef, and pork, and 6 culture media and additives used in cultured meat. No AGs were detected in any of the 15 meats distributed in Korea; however, streptomycin and dihydrostreptomycin were detected at levels ranging from 695.85 to 1152.71 mg/kg and 6.35 to 11.11 mg/kg, respectively, in the culture media additives. The LC-MS/MS method coupled with direct addition of IPRs to the vial can provide useful basic data for AG analysis and safety evaluation of meats as well as culture media and additives for cultured meats.
Yun, Sang Soon;Lee, Sang Jin;Lim, Do Yeon;Lim, Ho Soo;Lee, Gunyoung;Kim, MeeKyung
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.34
no.1
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pp.65-72
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2019
This study was aimed at investigating the levels of the natural preservatives of benzoic, sorbic and propionic acids in cereal grains, nuts and seeds. Benzoic and sorbic acid were analyzed by high-performance liquid chromatography with a diode-array detector (HPLC-DAD) and further confirmed by liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS), whereas propionic acid was analyzed using a gas chromatography-flame ionization detector (GC-FID) and further confirmed by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). Benzoic, sorbic and propionic acids were found in 44, 22, and 550 samples out of 702 samples, respectively. From the total of 702 samples. The concentrations of benzoic, sorbic and propionic acid were ranged from not detected (ND) to 23.74 mg/L, from ND to 7.90 mg/L, and from ND to 37.39 mg/L in cereal grains, nuts and seeds, respectively. The concentration ranges determined in this study could be used as standard criteria in the process of inspecting cereal grains, nuts and seeds for preservatives as well as to address consumer complaints or trade disputes.
Genomics is providing targets faster than we can validate them and combinatorial chemistry is providing new chemical entities faster than we can screen them. Historically, the drug discovery cascade has been established as a sequential process initiated with a potency screening against a selected biological target. In this sequential process, pharmacokinetics was often regarded as a low-throughput activity. Typically, limited pharmacokinetics studies would be conducted prior to acceptance of a compound for safety evaluation and, as a result, compounds often failed to reach a clinical testing due to unfavorable pharmacokinetic characteristics. A new paradigm in drug discovery has emerged in which the entire sample collection is rapidly screened using robotized high-throughput assays at the outset of the program. Higher-throughput pharmacokinetics (HTPK) is being achieved through introduction of new techniques, including automation for sample preparation and new experimental approaches. A number of in vitro and in vivo methods are being developed for the HTPK. In vitro studies, in which many cell lines are used to screen absorption and metabolism, are generally faster than in vivo screening, and, in this sense, in vitro screening is often considered as a real HTPK. Despite the elegance of the in vitro models, however, in vivo screenings are always essential for the final confirmation. Among these in vivo methods, cassette dosing technique, is believed the methods that is applicable in the screening of pharmacokinetics of many compounds at a time. The widespread use of liquid chromatography (LC) interfaced to mass spectrometry (MS) or tandem mass spectrometry (MS/MS) allowed the feasibility of the cassette dosing technique. Another approach to increase the throughput of in vivo screening of pharmacokinetics is to reduce the number of sample analysis. Two common approaches are used for this purpose. First, samples from identical study designs but that contain different drug candidate can be pooled to produce single set of samples, thus, reducing sample to be analyzed. Second, for a single test compound, serial plasma samples can be pooled to produce a single composite sample for analysis. In this review, we validated the issue whether the second method can be applied to practical screening of in vivo pharmacokinetics using data from seven of our previous bioequivalence studies. For a given drug, equally spaced serial plasma samples were pooled to achieve a 'Pooled Concentration' for the drug. An area under the plasma drug concentration-time curve (AUC) was then calculated theoretically using the pooled concentration and the predicted AUC value was statistically compared with the traditionally calculated AUC value. The comparison revealed that the sample pooling method generated reasonably accurate AUC values when compared with those obtained by the traditional approach. It is especially noteworthy that the accuracy was obtained by the analysis of only one sample instead of analyses of a number of samples that necessitates a significant man-power and time. Thus, we propose the sample pooling method as an alternative to in vivo pharmacokinetic approach in the selection potential lead(s) from combinatorial libraries.
This study was conducted to monitor the concentrations of 24 anti-impotence drugs and their analogues in various foods and dietary supplements, with the aim of ensuring the safety of the foods and supplements. The measurements were done in 226 samples using high performance liquid chromatography/photodiode array detector (HPLC/PDA) and liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry (LC-ESI-MS/MS). Five male sexual function enhancing products have been detected as follows: acethylvardenafil (21,476 mg/kg; 15 mg/capsule from one sample), sildenafil (52,778 mg/kg, 29 mg/capsule in one sample; 71,535 mg/kg, 48 mg/capsule in one sample), and tadalafil (9,772-55,545 mg/kg, 6-33 mg/capsule in four samples). A sustainable monitoring of anti-impotence drugs and their analogues in various foods and dietary supplement is recommended.
In the course of our investigation for chemical constituents in the ethyl acetate layer of Korean black raspberry wine, five compounds were isolated and purified by silica gel column chromatography and high-performance liquid chromatography. The isolated compounds were identified as ethyl succinate (1), vanillic acid (2), ethyl 3,4-dihydroxybenzoate (3), furan-2-ol (4), and 4-(4-hydroxyphenyl)butan-2(S)-ol (5) based on the spectroscopic data of electrospray ionization tandem mass spectrometry and nuclear magnetic resonance. The presence of 2 in Korean black raspberry has previously reported. However, 1 and 3-5 in Korean black raspberry and its wine were isolated for the first time.
Antibacterial compound from Bacillus subtilis MJP1 was purified using C18 Sep-Pak cartridge, ion exchange chromatography, and gel filtration chromatography. The purified antibacterial compound showed antibacterial activity against Listeria monocytogenes, Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus subsp. aureus, and Enterococcus faecalis. The purified antibacterial compound was found to be stable at $100^{\circ}C$ for 5 min and in the pH range of 3.0~9.0, but it was unstable at pH 10.0. It was inactivated by proteinase K and pronase E, and heat treatment at $121^{\circ}C$ for 15 min, but it was stable with lipase and $\alpha$-amylase treatment, which indicated its proteineous nature. Ultra performance liquid chromatography and electrospray ionization tandem mass spectrometry analysis were used to identify the purified antibacterial compound and confirmed the existence of two peptides (3356.54 Da, 3400.5244 Da).
Kim, Nam Sook;Yoo, Geum Joo;Kim, Kyu Yeon;Lee, Ji Hyun;Park, Sung-Kwan;Baek, Sun Young;Kang, Hoil
Analytical Science and Technology
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v.32
no.2
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pp.35-47
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2019
In this study, high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry (HPLC-MS/MS) was employed to detect 26 antidiabetic compounds in adulterated dietary supplements using a simple, selective method. The work presented herein may help prevent incidents related to food adulteration and restrict the illegal food market. The best separation was obtained on a Shiseido Capcell Pak(R) C18 MG-II ($2.0mm{\times}100mm$, $3{\mu}m$), which improved the peak shape and MS detection sensitivity of the target compounds. A gradient elution system composed of 0.1 % (v/v) formic acid in distilled water and methanol at a flow rate of 0.3 mL/min for 18 min was utilized. A triple quadrupole mass spectrometer with an electrospray ionization source operated in the positive or negative mode was employed as the detector. The developed method was validated as follows: specificity was confirmed in the multiple reaction monitoring mode using the precursor and product ion pairs. For solid samples, LOD ranged from 0.16 to 20.00 ng/mL and LOQ ranged from 0.50 to 60.00 ng/mL, and for liquid samples, LOD ranged from 0.16 to 20.00 ng/mL and LOQ ranged from 0.50 to 60.00 ng/mL. Satisfactory linearity was obtained from calibration curves, with $R^2$ > 0.99. Both intra and inter-day precision were less than 13.19 %. Accuracies ranged from 80.69 to 118.81 % (intra/inter-day), with a stability of less than 14.88 %. Mean recovery was found to be 80.6-119.0 % and less than 13.4 % RSD. Using the validated method, glibenclamide and pioglitazone were simultaneously determined in one capsule at concentrations of 1.52 and 0.53 mg (per capsule), respectively.
Cannabis (Marijuana) is one of the most widely used drugs in the world, and its distribution has been controlled in South Korea since 1976. Identification of 11-nor-Δ9-carboxy-tetrahydrocannabinol (THCCOOH) in urine can provide important proof of cannabis use, and it is considered scientific evidence in the forensic field. In this study, we describe a simultaneous quantitative method for identifying THCCOOH and THCCOOH-glucuronide in urine, using simple liquid-liquid extraction (LLE), and liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). THCCOOH-D3 and THCCOOH-glucuronide-D3 were used as internal standards. Validation results of the matrix effect, as well as recovery, linearity, precision, accuracy, process efficiency, and stability were all satisfactory. No carryover, endogenous or exogenous interferences were observed. The limit of detection (LOD) of THCCOOH and THCCOOH-glucuronide were 0.3 and 0.2 ng/mL, respectively. The developed method was applied to 28 authentic human urine samples that tested positive in immunoassay screening and gas chromatography/mass spectrometry (GC/MS) tests. The ranges of concentrations of THCCOOH and THCCOOH-glucuronide in the samples were less than LOQ~266.90 ng/mL and 6.43~2133.03 ng/mL, respectively. The concentrations of THCCOOH-glucuronide were higher than those of THCCOOH in all samples. This method can be effectively and successfully applied for the confirmation of cannabinoid use in human urine samples in the forensic field.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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