Journal of Korea Technical Association of The Pulp and Paper Industry
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v.31
no.2
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pp.8-14
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1999
A screening has been performed to find hyper-ligninolytic fungi, which degtrade beech and pine lignin extensively in order to broaden the understanding of the ligninolytic enzymes elaborated by various white-rot fungi. One hundred and twenty two ligninolytic strains were selected from decayed woods with a selective medium for screening ligninolytic wood-rotting fungi. Two of them, Phanerochaete sordida YK-624 and YK-472, showed much higher ligninolytic activity and selectivity in beech-wood degradation than typical lignin-degrading fungi, phanerochaete chrysosporium and Coriolus versicolor. They also degraded birch dioxane lignin and residual lignin in unbleached kraft pulp(UKP) much more extensively than P. chrysosporium and C. versicolor. During fungal treatment of beech wood-powder, the fungus strain P. sordida YK-624 showed higher activity of extracellular manganese peroxidase (MnP) in the medium than P. chrysosporium. It also showed MnP activity, which would not be lignin peroxidast during treatment of oxygen-bleached kraft pulp(OKP) and under enzyme-inducing conditin.
Kim, Gi-Deok;Sin, Dong-Ha;Son, Gwang-Hui;Park, Ho-Yong
한국생물공학회:학술대회논문집
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2002.04a
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pp.473-476
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2002
A lignin degradation bacteria, symbiotic bacteria was isolated from the gut of Sympetrum depressiusculum and tested for its lignin degrading activity using lignin model compounds and related aromatic compounds. The strain was identified as Serratia marcescens HY-5 based on the 165 rDNA, cellular fatty acid composition, biochemical and physiological characteristics. S. marcescens showed 40-50% lignin degrading activity in the media that contained vaillin, guaiacol and dealkaline lignin. S. marcescens showed three ligninase activities [Jaccase, lignin peroxidase(LiP) and Manganase peroxidase(MnP)]. Addition of dealkaline lignin to the basal media increased about 6fold of laccase activity. Vanillic acid or vanillin increase 1.3fold of MnP activity and p-coumaric acid increased 12fold of LiP activity which added to the basal medium.
Wood-rot fungi produce extracellular lignin-degrading enzymes, the best known of which are lignin peroxidase, Mn-peroxidase and laccase. In this experiment, some of them produced all of three enzymes. Many other wood-rot fungi produced one or two of those enzymes with various combinations. In this experiment, we tried to clarify the relationship between the pattern of enzyme production and degradative activity of several dye compounds. From the 36 strains of 23 species of wood-rot fungi, Mn-peroxidase activity was found in 30 strains of the fungi tested, whereas the activity of lignin peroxidase and laccase was detected in 11 strains and 12 strains of species, repectively, in Kirks low nitrogen media. In relation to the activity of lignin degrading enzymes and degradation of dye compounds, the white-rot fungi with three kinds of enzymes tested showed the best dye decolorizers. The fungi with Mn-peroxidase activity only decolorized poly R-478 and remazol brilliant blue R dye in proportion to the enzyme activity, while methylene blue, bromophenol blue and congo red dye were degraded in regardless of enzyme activity. Those dyes were degraded in relation to the growth rate of mycelium. Brown-rot fungi did not degrade all the dye compounds except bromophenol blue, in spite of moderate growth rate.
This experiment was conducted to screen a superior wood-rotting fungi for lignin degradation and ligninolytic enzyme production by evaluation of red colored zone width on potato-dextrose agar medium and oak woodmeal medium complimented guaiacol. Relationship between the red colored zone width on GU-WA medium and klason lignin loss on woodmeal medium showed the positive correlation. Thus, the potential ligninolytic activity of wood rotting fungi which are not elucidated yet may be estimated to some extent by the evaluation of the red colored zone width on GU-WA medium. Of the isolates screened from fruit bodies and decayed woods. LKY-12, LKY-7 and C. versicolor-13 isolates having preferential lignin degradation and laccase activity were selected. These isolates exhibited characteristics of superior wood-rotting fungi as Klason lignin loss ranged from 30% to 35% and ligninolytic enzyme activity of these isolates on glucose-peptone broth was higher than that of other isolates. And then, these isolates were considered to be able to use in biological pulping and bleaching and ligninolytic enzyme production.
Trametes versicolor has a lignin degrading enzyme system, which is also involved in the degradation of diverse recalcitrant compounds. Manganese-dependent peroxidase (MnP) is one of the lignin degrading enzymes in T. versicolor. In this study, a cDNA clone of a putative MnP-coding gene was cloned and transferred into an expression vector (pBARGPE1) carrying a phosphinothricin resistance gene (bar) as a selectable marker to yield the expression vector, pBARTvMnP2. Transformants were generated through genetic transformation using pBARTvMnP2. The genomic integration of the MnP clone was confirmed by PCR with bar-specific primers. One transformant showed higher enzyme activity than the recipient strain did, and was genetically stable even after 10 consecutive transfers on non-selective medium.
A visual method for the selective screen Eng of lignin degrading enzymes, produced by white rot fungi (WRF), was investigated by the addition of coloring additives to solid media. Of the additives used in the enzyme production media, guaiacol and RBBR could be used for the detection of lignin peroxidase (LiP), manganese peroxidase (MnP) and lactase. Syringaldazine and Acid Red 264 were able for the detection of both the MnP and lactase, and the LiP and laccase, respectively, and a combination of these two additives was able to detect each of the ligninases produced by the WRF on solid media.
One of the most economically viable processes for the bioconversion of many lignocellulosic waste is represented by white rot fungi. Phanerochaete chrysosporium is one of the important commercially cultivated fungi which exhibit varying abilities to utilize different lignocellulosic as growth substrate. Examination of the lignocellulolytic enzyme profiles of the two organisms Phanerochaete chrysosporium and Rhizopus stolonifer show this diversity to be reflected in qualitative variation in the major enzymatic determinants (ie cellulase, xylanase, ligninase and etc) required for substrate bioconversion. For example P. chrysosporium which is cultivated on highly lignified substrates such as wood (or) sawdust, produces two extracellular enzymes which have associated with lignin deploymerization. (Mn peroxidase and lignin peroxidase). Conversely Rhizopus stolonifer which prefers high cellulose and low lignin containg substrates produce a family of cellulolytic enzymes including at least cellobiohydrolases and ${\beta}-glucosidases$, but very low level of recognized lignin degrading enzymes.
In this study, laccase activity, rate of weight loss and degree of lignin degradation of pine wood chips were determined during the liquid and solid state incubation with Polyporus brumalis. The results showed that laccase enzyme activity at untreated wood chip was gradually decreased after 20 days, but enzyme activity with wood chip treatment showed 10 times higher than untreated ones at 60 incubation days. Rate of weight losses of pine chip and rate of lignin loss were 23.4% and 6.3% by P. brumalis during 80 incubation days. Gene expression of pblac1 from P. brumalis was 3 times increased under pine chip treatment at 40 incubation days. Consequently, laccase activity of white rot fungi, P. brumalis, was increased at incubation with wood chip and pblac1 gene was important factor of lignin degradation. Therefore, to regulate lignin degrading enzyme gene expression by using the tools of biotechnology will be able to develop superior strains and it will be useful for pretreatment of lignocellulosic biomass at bioethanol production.
Over 50 morphologically distinctive soil Streptomyces were isolated from various Jocations in the Yongin area in Korea and visually screened for dye-decoloring activities on an agar plate. Two Streptomyces species (AD001 and ND002) showed strong dye-decoloring activities on the plate containing congo-red and new-fuchin dyes, respectively. Also, the liquid culture supernatants of these species showed 2,4-dicholophenol (DCP) oxidation activities only in the presence of hydrogen peroxide, a characteristic of Actinomycetes lignin-peroxidase (ALiP)-P3 isoform found in dye-degrading S. viridosporus T7A and S. badius 252. Based on their dye-decoloring capabilities and the 2,4-DCP oxidation kinetic data, it is suggested that these Streptomyces secrete not-yet-characterized extracelluar enzyme(s), whose activities are very similar to the ALiP-P3 enzyme.
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