Functional elements of the conserved helix 7 in the poreforming domain of the Bacillus thuringiensis Cry $\delta$- endotoxins have not yet been clearly identified. Here, we initially performed alanine substitutions of four highly conserved aromatic residues, $Trp^{243}$, $Phe^{246}$, $Tyr^{249}$ and $Phe^{264}$, in helix 7 of the Cry4Ba mosquito-larvicidal protein. All mutant toxins were overexpressed in Escherichia coli as 130-kDa protoxins at levels comparable to the wild-type. Bioassays against Stegomyia aegypti mosquito larvae revealed that only W243A, Y249A or F264A mutant toxins displayed a dramatic decrease in toxicity. Further mutagenic analysis showed that replacements with an aromatic residue particularly at $Tyr^{249}$ and $Phe^{264}$ still retained the high-level toxin activity. In addition, a nearly complete loss in larvicidal activity was found for Y249L/F264L or F264A/ Y249A double mutants, confirming the involvement in toxicity of both aromatic residues which face towards the same direction. Furthermore, the Y249L/F264L mutant was found to be structurally stable upon toxin solubilisation and trypsin digestion, albeit a small change in the circular dichroism spectrum. Altogether, the present study provides for the first time an insight into the highly conserved aromaticity of $Tyr^{249}$ and $Phe^{264}$ within helix 7 playing an important role in larvicidal activity of the Cry4Ba toxin.
Bacillus thuringiensis Cyt2Aa toxin is a mosquito-larvicidal and cytolytic $\delta$-endotoxin, which is synthesized as a protoxin and forms crystalline inclusions within the cell. These inclusions are solubilized under alkaline conditions and are activated by proteases within the larval gut. In order to assess the functions of the N-and C-terminal regions of the protoxin, several N- and C-terminal truncated forms of Cyt2Aa were constructed. It was determined that amino acid removal at the N-terminal, which disrupts the $\beta$1 structure, might critically influence toxin production and inclusion formation. The deletion of 22 amino acids from the C-terminus reduced the production and solubility of the toxin. However, the removal of more than 22 amino acids from the C-terminus or the addition of a bulky group to this region could result in the inability of the protein to adopt the proper folding. These findings directly demonstrated the critical roles of N- and C-terminal amino acids on the production and folding of the B. thuringiensis cytolytic $\delta$-endotoxin.
The current model for the mechanism of action of the Bacillus thuringiensis Cry $\delta$-endotoxins involves the penetration of the ${\alpha}4-{\alpha}5$ hairpin into the target midgut epithelial cell membranes, followed by pore formation. In this study, PCR-based mutagenesis was employed to identify a critical residue within the ${\alpha}4-{\alpha}5$ loop of the 130-kDa Cry4A mosquito-larvicidal protein. Alanine-substitutions of two charged (Asp-198 and Asp-200) and four polar (Asn-190, Asn-195, Tyr-201 and Tyr-202) residues in the ${\alpha}4-{\alpha}5$ loop were performed. Like the wild-type, all of the mutant toxins were over-expressed as inclusion bodies in Escherichia coli. When E. coli cells expressing each mutant toxin were bioassayed against Aedes aegypti larvae, larvicidal activity was completely abolished for the substitution of only Tyr-202, while replacements at the other positions still retained a high level of toxicity. Further replacement of Tyr-202 with an aromatic side chain, phenylalanine, did not affect the toxicity. These results revealed a crucial role in toxin activity for the conserved aromatic residue at the 202 position within the ${\alpha}4-{\alpha}5$ loop of the Cry4A toxin.
Based on the currently proposed toxicity model for the different Bacillus thuringiensis Cry $\delta$-endotoxins, their pore-forming activity involves the insertion of the ${\alpha}4-{\alpha}5$ helical hairpin into the membrane of the target midgut epithelial cell. In this study, a number of polar or charged residues in helix 4 within domain I of the 65-kDa dipteranactive Cry11A toxin, Lys-123, Tyr-125, Asn-128, Ser-130, Gln-135, Arg-136, Gln-139 and Glu-141, were initially substituted with alanine by using PCR-based directed mutagenesis. All mutant toxins were expressed as cytoplasmic inclusions in Escherichia coli upon induction with IPTG. Similar to the wild-type protoxin inclusion, the solubility of each mutant inclusion in the carbonate buffer, pH 9.0, was relatively low When E. coli cells, expressing each of the mutant proteins, were tested for toxicity against Aedes aegypti mosquito-larvae, toxicity was completely abolished for the alanine substitution of arginine at position 136. However, mutations at the other positions still retained a high level of larvicidal activity Interestingly, further analysis of this critical arginine residue by specific mutagenesis showed that conversions of arginine-136 to aspartate, glutamine, or even to the most conserved residue lysine, also abolished the wild-type activity The results of this study revealed an important determinant in toxin function for the positively charged side chain of arginine-136 in helix 4 of the Cry11A toxin.
Bacillus sphaericus produces mosquito-larvicidal binary toxin composed of BinA and BinB. While BinB is expected to bind to a specific receptor on the cell membrane, BinA interacts to BinB or BinB receptor complex and translocates into the cytosol to exert its activity via unknown mechanism. To investigate functional roles of aromatic cluster in BinA, amino acids at positions Y213, Y214, Y215, W222 and W226 were substituted by leucine. All mutant proteins were highly produced and their secondary structures were not affected by these substitutions. All mutants are able to insert into lipid monolayers as observed by Langmuir-Blodgett trough and could permeabilize the liposomes in a similar manner as the wild type. However, mosquito-larvicidal activity was abolished for W222L and W226L mutants suggesting that tryptophan residues at both positions play an important role in the toxicity of BinA, possibly involved in the cytopathological process after toxin entry into the cells.
The insecticidal activity of Bacillus thuringiensis (Bt) Cry toxins involves toxin stabilization, oligomerization, passage across the peritrophic membrane (PM), binding to midgut receptors and pore-formation. The residues Arg-158 and Tyr-170 have been shown to be crucial for the toxicity of Bt Cry4Ba. We characterized the biological function of these residues. In mosquito larvae, the mutants R158A/E/Q (R158) could hardly penetrate the PM due to a significantly reduced ability to alter PM permeability; the mutant Y170A, however, could pass through the PM, but degraded in the space between the PM and the midgut epithelium. Further characterization by oligomerization demonstrated that Arg-158 mutants failed to form correctly sized high-molecular weight oligomers. This is the first report that Arg-158 plays a role in the formation of Cry4Ba oligomers, which are essential for toxin passage across the PM. Tyr-170, meanwhile, is involved in toxin stabilization in the toxic mechanism of Cry4Ba in mosquito larvae.
A freshwater bloom-forming cyanobacterium, Microcystis aeruginosa, and local soil isolate Scytonema sp. strain BT 23 were demonstrated to contain biotoxic secondary metabolites with pesticidal and mosquito larvicidal activities. A purified toxic constituent from M aeruginosa showed an absorption maximum at 230 nm and its toxicity symptoms, Rf value on TLC, and retention time observed ill an HPLC analysis were similar to those of the hepatotoxic heptapeptide microcystin-LR. The bioactive constituent of the Scytonema sp. was less polar in nature and exhibited two peaks at 240 and 285 m. When applied to two cruciffrous pests, Pieris brassicae and Plutella flostella, the crude extracts and toxic principles from the two cyanobacteria showed significant antifeedant activity in a no-choice bioassay, and at higher concenuations exhibited contact toxicity to the insect larvae. The purified toxin from M. aeruginosa was found to be more effective and produced 97.5 and $92.8\%$ larval mortality in the two pests, fo11owing 2 h of toxin treatment at a concentration of $25{\mu}g$ Per leaf disc (2.5 cm dia.). Meanwhile, similar treatment with the purified toxin from Sytonema sp. stain BT 23 only produced 73 and $78\%$ mortality in the two pests. The cyanobacterial constituents also showed significant activity against Culex and Anopheles larvae. The M. aeruginosa toxin ($20{\mu}g\;ml^-1$) caused 98.2 and $88.1\%$ mortality in the Culex and Anopheles larvae, respectively, while the purified toxin from the Sytonema sp. was less toxic and only produced a 96.3 and $91.2\%$ mortality, respectively, at a much higher concentration ($40{\mu}g\;ml^-1$). Accordingly, the current results point to certain hitherto unknown biological properties of cyanobacterial biotoxins.
Cyt2Aa2 is a mosquito larvicidal and cytolytic toxin produced by Bacillus thuringiensis subsp. darmstadiensis. The toxin becomes inactive when isoleucine at position 150 was replaced by alanine. To investigate the functional role of this position, Ile150 was substituted with Leu, Phe, Glu and Lys. All mutant proteins were produced at high level, solubilized in carbonate buffer and yielded protease activated product similar to those of the wild type. Intrinsic fluorescence spectra analysis suggested that these mutants retain similar folding to the wild type. However, mosquito larvicidal and hemolytic activities dramatically decreased for the I150K and were completely abolished for I150A and I150F mutants. Membrane binding and oligomerization assays demonstrated that only I150E and I150L could bind and form oligomers on lipid membrane similar to that of the wild type. Our results suggest that amino acid at position 150 plays an important role during membrane binding and oligomerization of Cyt2Aa2 toxin.
Bacillus sphaericus 1593 is a larvicidal toxin-producing mosquitocidal bacterium. The toxin contains a parasporal crystalline inclusion which is composed of a protein that is activated under alkaline condition. To enhance alkaline environment around toxin protein, cryptic plasmid cured, B. sphaericus 1593 was transformed by the Bacillus pasteurii urease gene which generate ammonia from urea. Transformant produced urease at about 80% more than wild type strain. B. sphaericus 1593, and the urease gene was stably maintained. It also produced crystalline toxin protein at the same level as the wild type strain B. sphaericus 1593.
Helices 4 and 5 of the Bacillus thuringiensis Cry4Ba $\delta$-endotoxin have been shown to be important determinants for mosquito-larvicidal activity, likely being involved in membrane-pore formation. In this study, the Cry4Ba mutant protein containing an additional engineered tryptic cleavage site was used to produce the $\alpha4$-$\alpha5$ hairpin peptide by an efficient alternative strategy. Upon solubilization of toxin inclusions expressed in Escherichia coli and subsequent digestion with trypsin, the 130-kDa mutant protoxin was processed to protease-resistant fragments of ca. 47, 10 and 7 kDa. The 7-kDa fragment was identified as the $\alpha4$-loop-$\alpha5$ hairpin via N-terminal sequencing and mass spectrometry, and was successfully purified by size-exclusion FPLC and reversed-phase HPLC. Using circular dichroism spectroscopy, the 7-kDa peptide was found to exist predominantly as an $\alpha$-helical structure. Membrane perturbation studies by using fluorimetric calcein-release assays revealed that the 7-kDa helical hairpin is highly active against unilamellar liposomes compared with the 65-kDa activated full-length toxin. These results directly support the role of the $\alpha4$-loop-$\alpha5$ hairpin in membrane perturbation and pore formation of the full-length Cry4Ba toxin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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