A new putative laccase gene (soncotA) which show 78% homology with that from Bacillus licheniformis (liccotA) was isolated from draft genome sequence of Bacillus sonorensis KCTC 13918. A 1,545 bp of PCR product corresponding 514 amino acids was cloned into NdeI-NotI site of pET21c and expressed as soluble form in E. coli. About 59 kDa size of recombinant laccase was purified into homogenity by Ni-NTA column and laccase activity was confirmed by zymography. The enzymatic properties of recombinant laccase were characterized. The specific activity of B. sonorensis laccase was 0.033 fold lower than that of Bacillus licheniformis laccase. The finding of new laccase gene broadened the enzymatic diversity of Bacillus species laccases.
Coprinellus congregatus secreted a laccase isozyme when the culture was transferred to an acidic liquid medium (pH 4.1). The laccase cDNA gene (clac2) was used as a probe for cloning of the genomic laccase gene (lac2) including the promoter (Plac2). The open reading frame (ORF) of lac2 had 526 deduced amino acids and four conserved copper binding domains as other fungal laccases. Recombinant plasmid (pRSlac2p-cDNA) of lac2 cDNA with its own promoter was transformed in Saccharomyces cerevisiae. Expression of the transformed lac2 gene was induced by oxidative stress ($H_2O_2$) in yeast and the survival rate of the transformed yeast strain was greatly increased when compared with that of the control strain transformed with pRS316 yeast vector.
The putative laccase gene, yacK of Escherichia coli, K-12 is not expressed in lab culture conditions. The laccase gene was amplified by PCR and subcloned into pET28a vector. The laccase overproduced in E. coli harboring pET28a was purified by His-affinity column chromatography. The purified laccase, which has the apparent molecular weight of 55,000 on the SDS-polyacrylamide gel showed enzyme activity on the guaiacol solution and agar plate. Optimum temperature and pH were around 65$^{\circ}C$ and 5.0, respectively.
Degenerate primers corresponding to the sequences of the copper-binding regions in the fungal laccases were used to isolatc laccase gene specific fragment by PCR in Coprinus congregahts. A 144 bp DNA hagrnent was cloned and was identified to have 60-69 % homology with other fungal laccase genes. The predicted amino acid sequcnces showed 68-75% homology with other fungal laccase proteins.
Degenerate primevs corresponding to the consensus sequences of the copper-binding regions in the N- and Cterminal domains of fungal laccases were used to isolate laccase gene-specific sequences froin a white rot rungus Ganodern~a lucidrm w-hich has been known to strengthen the imnnne system. A 1.6 Kbp fragment was amplified by PCR and its base sequence was detenuiued. Locating seven iutrous within the base sequence, we could deduce its amino acid sequence. The nucleotide sequence witl~out introlls was 47Y0 identical to that of lee1 gene of Pametes wllosa; lhe identity in amino acid sequences of the two was 7994 The deduced amino acid seqoence was also sunilar to those of Coriolus versicolo~ kc3 (79%); Co~,iolz~s hirsutus phenolouiduse (78%), Trainetes vel.srcoloi. lccl (77%), Trametes ~!i/Iosa Ice2 (77%) and Trametes vemicolor kc4 (66%).
Laccases are multicopper-containing enzymes which catalyze the oxidation of phenolic and nonphenolic compounds with the concomitant reduction of molecular oxygen. They often occur as isoenzymes, either constitutive or inducible, that oligomerize to multilateral complexes, what allow for penetration to the woody cell wall structure. White rot basidiomycete fungi may produce a number of laccase isoenzymes, some constitutively and others after induction. Fungal laccase is commonly induced by many ions, such as $Cu^{2+}$, $Cd^{2+}$$Ca^{2+}$, $Li^+$, $Mn^{2+}$, $Ag^+$, $Hg^{2+}$, Mn and $Fe^{3+}$, phenolic compounds, some organic compounds, such as ethanol, isopropanol, cAMP, caffeine, p-anisidine, viscosinamide and paraquat, and nitrogens and even heat shock. A combination of Cu and pHB (p-hydroxybenzoic acid) made it possible to extend the inducible laccase activities over 30-fold. But the most effective inducer of laccase in the basidiomycete and other higher fungi is 2,5-xylidine, over 160-fold stimulation of laccase activity. The laccases are frequently encoded by gene families, as e.g. in Pycnoporus cinnabarinus, from which the lcc3-1 or the allelic form lac1 and lac3-2 have been cloned and sequenced. In the case of inducible forms the post-inductional laccase formation depends upon the synthesis of mRNA and the induction is due to the synthesis of a new protein.
Kim, Ki-Hwan;Ka, Kang-Hyeon;Kang, Ji Hyoun;Kim, Sangil;Lee, Jung Won;Jeon, Bong-Kyun;Yun, Jung-Kuk;Park, Sang Rul;Lee, Hyuk Je
Mycobiology
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v.43
no.1
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pp.75-80
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2015
We identified single nucleotide polymorphism (SNP) markers in the laccase gene to establish a line-diagnostic system for shiitake mushrooms. A total of 89 fungal isolates representing four lines, including Korean registered, Korean wild type, Chinese, and Japanese lines, were analyzed. The results suggest that SNP markers in the laccase gene can be useful for line typing in shiitake mushrooms.
The gene encoding Thermus thermophilus HJ6 laccase (Tt-laccase) was cloned, sequenced, and comprised of 1,389 nucleotides encoding a protein (462 amino acids) with a predicted molecular mass of 51,049 Da. The deduced amino acid sequence of Tt-laccase showed 99.7% and 44.3% identities to the Thermus thermophilus HB27 laccase and Synechococcus sp. RS9917 laccase, respectively. Tt-laccase gene was expressed as a fusion protein with six histidine residues in E. coli Rosetta-gami (DE3) cells, and the recombinant protein was purified to homogeneity. UV-Vis spectrum analysis revealed that the enzyme has copper atoms, a type I Cu(II) and a type III binuclear Cu(II). The optimum pH for the oxidation of guaiacol was 5.0 and the optimum temperature was $90^{\circ}C$ The half-life of heat inactivation was about 120 min at $90^{\circ}C$ The enzyme reaction was inhibited by sodium azide, L-cystein, EDTA, dithiothreitol, tropolone, and kojic acid. The enzyme oxidized various known laccase substrates, its lowest $K_m$ value being for 4-hydroxyindole, highest $k_{cat}$ value for syringaldazine, and highest $k_{cat}/K_m$ for guaiacol.
Laccases (EC 1.10.3.2) are copper-containing polyphenol oxidases found in white-rot fungi. Here, we report the cloning and analysis of the nucleotide sequence of a new laccase gene, fvlac7, based on the genomic sequence of Flammulina velutipes. A primer set was designed from the putative mRNA that was aligned to the genomic DNA of F. velutipes. A cDNA fragment approximately 1.6-kb long was then amplified by reverse transcriptase-PCR using total RNA, which was subsequently cloned and sequenced. The cDNA sequence of fvlac7 was then compared to that of the genomic DNA, and 16 introns were found in the genomic DNA sequence. The fvlac7 protein, which consists of 538 amino acids, showed only 42~51% identity with 12 different mushroom species containing two laccases of F. velutipes, suggesting the fvlac7 is a novel laccase gene. The first 25 amino acids of Fvlac7 correspond to a predicted signal sequence, four copper-binding sites, and four N-glycosylation sites. Fvlac7 cDNA was heterologously overexpressed in an Escherichia coli system with an approximate expected molecular weight of 60 kDa.
The purpose of this study was to identify and characterize the laccase genes of Flammulina velutipes var. lupinicola. Five laccase genes (g1934, g1937, g2415, g2539, g5858) were selected based on the copper binding site and signal peptide analysis results using the laccase gene selected from the F. velutipes var. lupinicola genome. The size of the laccase genes of F. velutipes var. lupinicola were 1,488 bp~1,662 bp. As a result of cDNA sequence analysis, 14 to 17 introns were identified in the laccase genes. The cleavage site predicted as the signal peptide of the laccase gene was found to be located between 20 bp and 34 bp from the N-terminus. In addition, separation and purification were performed to characterize the F. velutipes var. lupinicola laccases, and the optimal activity of the separated and purified proteins were analyzed by pH, temperature and time. Five bands with laccase activity were found from zymogram analysis. The optimal pH of the reaction was 5.5, the optimal temperature was found to be 40℃. Therefore, characterization of the laccase genes identified in this study should help in better understanding the biomass decomposition of F. velutipes var. lupinicola.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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