Baculovirus Hyphantrin. cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV) insecticide containing the insecticidal protein (ICP) gene from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD1 was constructed using a lacZ-HcNPV system. The ICP ($\delta$-endotoxin) gene was placed under the control of the polyhedrin gene promoter of the HcNPV. A polyhedrin-negative virus was derived and named ICP-HcNPV insecticide. Then, the insertion of the ICP gene in the ICP-HcNPV genome was confirmed by Southern hybridization analysis. Polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) analysis of the Spodoptera frugiperda cell extracts infected with the ICP-HcNPV showed that the ICP was expressed in the insect cells as 130 kDa at 5 days post-infection. The ICP produced in the cells was present in aggregates. When extracts from the cells infected with the ICP-HcNPV were fed to 20 Bombyx mori larvae, the following mortality rate was seen; 8 larvae at 1 h, 10 larvae at 3 h, and 20 larvae at 12 h. These data indicate that the B. thuringiensis ICP gene was expressed by the baculovirus insecticide in insect cells and there was a high insecticidal activity. The biological activities of the recombinant virus ICP-HcNPV were assessed in conventional bioassay tests by feeding virus particles and ICP to the insect larvae. The initial baculovirus insecticide ICP-HcNPV was developed in our laboratory and the significance of the genetically engineered virus insecticides is discussed.
The gene for glycoprotein B (gB2) of HSV-2-strain G was subcloned, sequenced, recombinated into the lacZ-HcNPV, expressed in insect cells, and compared with the homologous gene of other HSV-2 strains. The ORF of the gB2 gene was 2,715 bp. The overall nucleotide sequence homology of te gB2 gene compared ith that of the two previously reported HSV-2 strains appeared to be over 98%. A recombinant virus named Baculo-gB2 protein in insect cells. The recombination was confirmed by a PCR and the expression was demonstrated by radio immunoprecipitation. Insect cells infected with the Baculo-gB2 virus synthesized and processed gB2 with approximately 120 kDa in the cells, and then secreted it into the culture media, where it reacted with a nomoclonal antibody to gB2. The gB2 polypeptide contained two main hydrophobic regions (a signal sequence from 1 to 23 amino acid residues, and a membrane anchor sequence from aa 745 to 798), eight N-glycosylation sites evenly distributed, and was rich in alanine (11.2%). Antibodies to this recombinant protein that were raised in mice recognized the viral gB2 and neutralized the infectivity of the HSV-2 in vitro. There results show that the gB2 protein was successfully porduced in insect cells and could be used to raise a protective neutralizing antibody. Accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
Kim, Borim;Lee, Soojin;Park, Joohong;Lu, Mingshou;Oh, Minkyu;Kim, Youngrok;Lee, Jinwon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권9호
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pp.1258-1263
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2012
2,3-Butanediol (2,3-BD) is a major metabolite produced by Klebsiella pneumoniae KCTC2242, which is a important chemical with wide applications. Three genes important for 2,3-BD biosynthesis acetolactate decarboxylase (budA), acetolactate synthase (budB), and alcohol dehydrogenase (budC) were identified in K. pneumoniae genomic DNA. With the goal of enhancing 2,3-BD production, these genes were cloned into pUC18K expression vectors containing the lacZ promoter and the kanamycin resistance gene to generate plasmids pSB1-7. The plasmids were then introduced into K. pneumoniae using electroporation. All strains were incubated in flask experiments and 2,3-BD production was increased by 60% in recombinant bacteria harboring pSB04 (budA and budB genes), compared with the parental strain K. pneumoniae KCTC2242. The maximum 2,3-BD production level achieved through fed-batch fermentation with K. pneumoniae SGJSB04 was 101.53 g/l over 40 h with a productivity of 2.54 g/l.h. These results suggest that overexpression of 2,3-BD synthesis-related genes can enhance 2,3-BD production in K. pneumoniae by fermentation.
The cell growth inhibitor effect of cervical cancer cells was investigated by liposome mediated transfection (pRcCMVp53/lipofectin) and by transfection using adenovirus (AdCMVp57). The papilloma virus cancer cell lines we used in this study were HPV16 positive, having inhibiter gene, wild p53 gene, CaSki, SiHa, HPV18 positive HeLa, HeLaS3 and HPV negative C33A, HT3. LacZ gene of E.coli was used as the marker gene for the transfection efficiency. The effect on the inhibition of tumor cell growth was measured by cell count and cell viability though ELISA analysis and MTT assay. The inhibition of tumor cell growth was confirmed by measuring each assay for six days, comparing with the normal control cell growth. The cell growth of cervical cancer calls by transfection was significantly reduced and showed tittle differences among the cell lines. To eliminate the potential problem of Ad(adenovirus) contamination during rAAV production, rAAV can be produced by a triple transfection of vector plasmic, packaging plasmid, and adenovirus helper plasmid. To examine the helper functions of Ad plasmids on the production of rAAV vector, we carried out cotransfection of three plasmids, AAV vector, packaging construct, and Ad helper plasmids. The optimized transfection condition for calcium phosphate method is 25ug of total DNA per 10-cm-diameter plate of 293 cell. We found that rAAV yields peaked at 48hr after Ad infection. The titer of rAAV was measured by the dot blot analysis to measure the number of particles/ml based on the quantification of viral DNA. Recent1y, Kombucha(fungi) was identified as a very potent antileukefic agent. In the present study, effect of natural toxin(plankton) and Kombucha is PSP(GTXI-3, neoSTX), on various MTT assay cervical cancer cell line. Toxin(GTX 1-3, neoSTX) also inhibited the proliferation in primary cervical cancer calls in a dose-dependent toxin concentration. These results showed that toxin was very potent in inhibiting the proliferation of cervical cancer calls in vitro. Toxins and Kombuoha exhibited a dose dependent inhibition of cellular proliferation in cancer cell line.
Ephrin-A5 has been implicated in the regulation of brain morphogenesis and axon pathfinding. In this study, we used bacterial homologous recombination to express a LacZ reporter in various ephrin-A5 BAC clones to identify elements that regulate ephrin-A5 gene expression during mesencephalon development. We found that there is mesencephalon-specific enhancer activity localized to a specific +25.0 kb to +30.5 kb genomic region in the first intron of ephrin-A5. Further comparative genomic analysis indicated that two evolutionary conserved regions, ECR1 and ECR2, were present within this 5.5 kb region. Deletion of ECR1 from the enhancer resulted in disrupted mesencephalon-specific enhancer activity in transgenic embryos. We also found a consensus binding site for basic helix-loop-helix (bHLH) transcription factors (TFs) in a highly conserved region at the 3'-end of ECR1. We further demonstrated that specific deletion of the bHLH TF binding site abrogated the mesencephalon-specific enhancer activity in transgenic embryos. Finally, both electrophoretic mobility shift assay and luciferase-based transactivation assay revealed that the transcription factor Ascl1 bound the bHLH consensus binding site in the mesencephalon-specific ephrin-A5 enhancer in vitro. Together, these results suggest that the bHLH TF binding site in ECR1 is involved in the positive regulation of ephrin-A5 gene expression during the development of the mesencephalon.
중추신경계의 미주신경동쪽핵(DMV)내 유사핵분열후 신경세포로 외래 유전자를 전달하는 매개체로서 pseudorabies 바이러스(PRV)의 유전자 조작기술은 흰쥐의 결장내로 PRV를 주입시킨 후 복잡한 신경로 추적에 관한 연구에서 하나의 바이러스에 의해 얻어지는 것보다 더욱 유용한 결과산출이 가능하게 하였다. 본 연구에서는 흰쥐의 생체내 실험모델로 하나의 바이러스 또는 이중 바이러스 주입에 PRV의 유전자 조작된 2종 바이러스를 사용하였다. 이 2종의 바이러스는 PRV의 Bartha 종에서 유래되었지만 면역조직화학적으로 검출할 수 있는 동일한 유전산물을 산출할 수 있도록 구성되었다. PRV-BaBlu는 PRV 게놈의 Us 구역 중 gC 자리에 lacZ 유전자를 삽입하여 산출되었는데 $\beta-galactosidase$ 발현은 이 바이러스에 감염된 신경원의 독특한 표시자로 나타났다. PRV-D는 2가지 단계에 의해 조성되었는데 첫째, PRV-Bartha의 Us 구역의 일부 유전자를 제거하고, 야생형인 PRV-Be DNA로 복구시켰는데 이로써 PRV-D는 PRV-Bartha 또는 PRV-Bablu에 존재하고 있지 않는 외피 당단백질인 gE와 gI를 지니게 되었다. 본 연구의 결과는 다음과 같았다. 첫째, PRV-D의 개별적 접종에 의해 얻어진 감염은 PRV-BaBlu에 의한 동일 신경회로의 감염보다 유의하게 빨랐다. 둘째, 유전자 조작된 PRV의 변이종은 변이종 상호간 및 부모 바이러스와 상이하였다. PRV-D는 PRV-Bartha 또는 PRV-BaBlu보다 감염독성이 더 강했고, PRV-BaBlu는 PRV-Bartha보다 감염독성이 약했다. 셋째, 결장을 지배하는 미주신경동쪽핵내 신경원은 변이종 바이러스들을 동시에 접종하였을 경우 이중감염을 나타내었다.
효모균에서의 유전자 재조합에 의한 단백절 생산에 미치는 유전학적, 환경적인 요인의 영향을 연구하였. Plasmid 안정도와 개수는 $REP^+$ 체계 에서 대단히 높은 반면, rep 체계에서는 매우 낮았다. $2{\mu}m$ circle plasmid genome을 포함하는 plasmid의 경우에 있어서. $[cir^o]$ 형 세포에서의 plasmid 안정도와 개수가 $[cir^+]$형 세포에서보다 높기때문에 $[cir^+o]$형 세포가 더 선호되는 세포였다. 유전자 발현은 plasmid 개수와 안정도에 좌우 되었다. 촉진제의 양이 유전자 발현에 매우 중요 한 역할을 했다. 유전자 발현의 촉진에 필요한 g떠actose의 농도는 0.8% 이 변 충분했다. 높은 안정 도와 개수를 갖는 plasmid의 경우 촉진속도는 매우 빨랐다. Galactose가 배양의 시작부분부터 첨가 될 때가 mid-exponential ph잃e에 첨가될 때보다 유전자 발현의 극대점에 이르는 시간이 걸었다. 상대적 촉진제의 양이 증가함에 따라 glucc잉e억제 현상은 감소되었다.
Alginate and alginate-derived oligomannuronate enhanced penicillin production in shake flask and fermentor cultures of Penicillium chrysogenum Wis 54-1255 (containing a single copy of the penicillin gene cluster) and in the high producter strain P. chrysogenum AS-P-99 (containing multiple copies of the penicillin gene cluster). Alginate was not used as a single carbon source by P. chryogenum. The stimulatory effect on penicillin production was observed in a defined medium and, to a lower extent, in a complex production medium containing corn steep liquor. Alginate-supplemented cells showed higher transcript levels of the three penicillin biosynthetic genes, pcbAB, pcbC, and penDE, than cells grown in the absence of alginate. The promoters of the pcbAB, pcbC, and penDE genes were coupled to the reporter lacZ gene and introduced as monocopy constructions in P. chrysogenum Wis 54-1225 npe10 by targeted integration in the pyrG locus; the reporter ${\beta}$-galactosidase activity expressed from the three promoters was stimulated by alginate added to the culture medium of the transformants. These results indicate that the stimulation of penicillin production by alginate was derived from an increase in the transcriptional activity of the penicillin biosynthesis genes. The induction by alginate of the transcription of the three penicillin biosynthetic genes is good example of the coordinated induction of secondary metabolism genes by elicitors of plant (or microbial) origin.
Constructions of a transfer vector and a recombinant baculovirus using the thymidine kinase gene of the Herpes simplex virus type 1 strain F (HSV -1) were carried out. Newly cloned transfer vector, pHcgXIIIB, was constructed by insertion of the glycoprotein gX gene signal peptide sequence of Pseudorabies virus into the baculovirus vector pHcEV-IV. The gX sequence was inserted just downstream from the promoter for the polyhedrin gene of the Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV). HSV-1 thymidine kinase(tk) gene (1.131 kb) was used as a candidate gene for transferring into the baculovirus expression system. The tk gene was inserted into a BamHI site downstream from the gX sequence-promoter for the polyhedrin gene in the pHcgXIIIB transfer vector and was transferred into the infectious lacZ-HcNPV expression vector. Recombinant virus was isolated and was named gX-TK-HcNPV. The recombinant virus produced a 45 kDa gX-TK fusion protein in Spodoptera frugiperda cells, which was confirmed by Western blot analysis. Microscopic examination of gX-TK-HcNPV-infected cells revealed normal multiplication. Fluorescent antibody staining indicated that the gX-TK fusion protein was present in the cytoplasm. These results indicated that the transfer vector successfully transferred the gX-tk gene into the baculovirus expression system.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제39권3호
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pp.112-119
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2013
Objectives: This study investigated the question of whether adenoviral magnetofection can be a suitable method for increasing the efficacy of gene delivery into bone marrow stromal cell (BMSC) and for generation of a high level of bone morphogenic protein (BMP) secretion at a minimized viral titer. Materials and Methods: Primary BMSCs were isolated from C57BL6 mice and transduced with adenoviral vectors encoding ${\beta}$ galactosidase or BMP2 and BMP7. The level of BMP secretion, activity of osteoblast differentiation, and cell viability of magnetofection were measured and compared with those of the control group. Results: The expression level of ${\beta}$ galactosidase showed that the cell transduction efficiency of AdLacZ increased according to the increased amount of magnetic nanoparticles. No change in cell viability was observed after magnetofection with 2 ${\mu}L$ of magnetic nanoparticle. Secretion of BMP2 or BMP7 was accelerated after transduction of AdBMP2 and 7 with magnetofection. AdBMP2 adenoviral magnetofection resulted in up to 7.2-fold higher secretion of BMP2, compared with conventional AdBMP2-transduced BMSCs. Magnetofection also induced a dramatic increase in secretion of BMP7 by up to 10-fold compared to the control. Use of only 1 multiplicity of infection (moi) of magnetofection with adenoviral transduction of AdBMP2 or AdBMP7 resulted in significantly higher transgene expression compared to 20 moi of conventional adenoviral transduction. Conclusion: Magnetic particle-mediated gene transudation is a highly efficient method of gene delivery to BMSCs. Magnetofection can lower the amount of viral particles while improving the efficacy of gene delivery.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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