Streptococcus salivarius is a beneficial bacterium in oral cavity, and some strains of this bacterium are known to be probiotics. The purpose of this study was to investigate the anti-inflammatory effect and mechanism of S. salivarius G7 lipoteichoic acid (LTA) on lipopolysaccharide (LPS) and LTA of periodontopathogens. The surface molecules of S. salivarius G7 was extracted, and single- or co-treated on human monocytic cells with LPS and LTA of periodontopathogens. The induction of cytokine expression was evaluated by real-time PCR and ELISA. After labeling fluorescence on LPS and LTA of periodontopathogens, it was co-treated with S. salivarius LTA to the cell. The bound LPS and LTA were measured by a flow cytometer. Also, the biding assay of the LPS and LTA to CD14 and LPS binding protein (LBP) was performed. The surface molecules of S. salivarius G7 did not induce the expression of inflammatory cytokines, and S. salivarius G7 LTA inhibited the inflammatory cytokines induced by LPS and LTA of periodontopathogens. S. salivarius G7 LTA inhibited the binding of its LPS and LTA to cells. Also, S. salivarius G7 LTA blocked the binding of its LPS and LTA to CD14 and LBP. S. salivarius G7 has an inhibitory effect on inflammation induced by LPS or LTA of periodontopathogens, and may be a candidate probiotics for prevention of periodontitis.
Our body's immune system has defense mechanisms against pathogens such as viruses and bacteria. Immune responses are primarily initiated by the activation of toll-like receptors (TLRs). In particular, TLR4 is well-characterized and is known to be activated by gram-negative bacteria and tissue damage signals. TLR4 requires myeloid differentiation factor 2 (MD2) as a co-receptor to recognize its ligand, lipopolysaccharides (LPS), which is an extracellular membrane component of gram-negative bacteria. Gambogic acid is a xanthonoid isolated from brownish or orange resin extracted from Garcinia hanburyi. Its primary effect is tumor suppression. Since inflammatory responses are related to the development of cancer, we hypothesized that gambogic acid may regulate TLR4 activation. Our results demonstrated that gambogic acid decreased the expression of pro-inflammatory cytokines ($TNF-{\alpha}$, IL-6, IL-12, and $IL-1{\beta}$) in both mRNA and protein levels in bone marrow-derived primary macrophages after stimulation with LPS. Gambogic acid did not inhibit the activation of Interferon regulatory factor 3 (IRF3) induced by TBK1 overexpression in a luciferase reporter gene assay using IFN-${\beta}$-PRD III-I-luc. An in vitro kinase assay using recombinant TBK1 revealed that gambogic acid did not directly inhibit TBK1 kinase activity, and instead suppressed the binding of LPS to MD2, as determined by an in vitro binding assay and confocal microscopy analysis. Together, our results demonstrate that gambogic acid disrupts LPS interaction with the TLR4/MD2 complex, the novel mechanism by which it suppresses TLR4 activation.
This study demonstrates the ability of magnolol, a hydroxylated biphenyl compound isolated from Magnolia officinalis, to inhibit LPS-induced expression of iNOS gene and activation of NF-${\kappa}B$/Rel in RAW 264.7 cells. Immunohisto-chemical staining of iNOS and Western blot analysis showed magnolol to inhibit iNOS gene expression. Reporter gene assay and electrophoretic mobility shift assay showed that magnolol inhibited NF-${\kappa}B$/Rel transcriptional activation and DNA binding, respectively. Since p38 is important in the regulation of iNOS gene expression, we investigated the possibility that magnolol to target p38 for its anti-inflammatory effects. A molecular modeling study proposed a binding position for magnolol that targets the ATP binding site of p38 kinase (3GC7). Direct interaction of magnolol and p38 was further confirmed by pull down assay using magnolol conjugated to Sepharose 4B beads. The specific p38 inhibitor SB203580 abrogated the LPS-induced NF-${\kappa}B$/Rel activation, whereas the selective MEK-1 inhibitor PD98059 did not affect the NF-${\kappa}B$/Rel. Collectively, the results of the series of experiments indicate that magnolol inhibits iNOS gene expression by blocking NF-${\kappa}B$/Rel and p38 kinase signaling.
Inflammatory reactions activated by lipopolysaccharide (LPS) of gram-negative bacteria can lead to severe septic shock. With the recent emergence of multidrug-resistant gram-negative bacteria and a lack of efficient ways to treat resulting infections, there is a need to develop novel anti-endotoxin agents. Antimicrobial peptides have been noticed as potential therapeutic molecules for bacterial infection and as candidates for new antibiotic drugs. We previously designed the 9-meric antimicrobial peptide Pro9-3 and it showed high antimicrobial activity against gram-negative bacteria. Here, to further examine its potency as an anti-endotoxin agent, we examined the anti-endotoxin activities of Pro9-3 and elucidated its mechanism of action. We performed a dye-leakage experiment and BODIPY-TR cadaverine and limulus amebocyte lysate assays for Pro9-3 as well as its lysine-substituted analogue and their enantiomers. The results confirmed that Pro9-3 targets the bacterial membrane and the arginine residues play key roles in its antimicrobial activity. Pro9-3 showed excellent LPS-neutralizing activity and LPS-binding properties, which were superior to those of other peptides. Saturation transfer difference-nuclear magnetic resonance experiments to explore the interaction between LPS and Pro9-3 revealed that Trp3 and Tlr7 in Pro9-3 are critical for attracting Pro9-3 to the LPS in the gram-negative bacterial membrane. Moreover, the anti-septic effect of Pro9-3 in vivo was investigated using an LPS-induced endotoxemia mouse model, demonstrating its dual activities: antibacterial activity against gram-negative bacteria and immunosuppressive effect preventing LPS-induced endotoxemia. Collectively, these results confirmed the therapeutic potential of Pro9-3 against infection of gram-negative bacteria.
We demonstrate that paclitaxel, an antitumor agent derived from yew tree, inhibits LPS- and $IFN-{\gamma}$-induced NF-kB/Rel activation in RAW 264.7 cells. Previously, paclitaxel ($>10{\mu}M$) has been known to induce iNOS gene expression in macrophages. However, in the previous report we described that the pretreatment of macrophages with low concentration of paclitaxel ($0.1{\mu}M$) for 8 h inhibited LPS-induced iNOS gene expression. Pretreatment of RAW 264.7 cells with paclitaxel significantly inhibited NF-kB/Rel transcriptional activation. Electrophoretic mobility shift assay further confirmed that pretreatment of macrophages with paclitaxel inhibited NF-kB/Rel DNA binding. Taxotere, a semisynthetic analog of paclitaxel, also inhibited LPS- and $IFN-{\gamma}$-induced iNOS gene expression. Collectively, these series of experiments indicate that paclitaxel inhibits iNOS gene expression by blocking NF-kB/Rel activation.
Programmed Death-1 (PD-1) is one of the important immune-inhibitory molecules which was expressed in T cells, B cells, NKT cells, and macrophages activated by various immune activating factors. Lipopolysaccharide (LPS), the major component of the outer membrane of Gram-negative bacteria, is one of the crucial immunogens for PD-1 expression. However, there are only a few reports on the expression mechanisms of PD-1 in innate immune cells. In this study, we investigate the expression mechanisms of PD-1 in LPS-stimulated Raw264.7 cell lines by RT-PCR, Western Blot, flow cytometry as well as ChIP assay and co-immunoprecipitation. When Raw264.7 cells were stimulated with LPS, PD-1 expression was greatly up-regulated via PI3K and p38 signaling. Primary macrophages isolated from LPS-injected mice were also shown the increased expression of PD-1. In promoter assay, NF-${\kappa}B$ and IRF-1 binding regions in mouse PD-1 promoter are important for PD-1 expression. We also found that the co-activation of NF-${\kappa}B$ and IRF-1 is indispensable for the maximum PD-1 expression. These results indicate that the modulation of PD-1 expressed in innate immune cells could be a crucial for the disease therapy such as LPS-induced mouse sepsis model.
Licochalcone A is a chalcone isolated from the roots of Glycyrrhiza inflate. In this study, we examined the effects of licochalonce A on the production of cytokines in LPS-activated macrophages. Licochalcone A inhibited the secretion of proinflammatory cytokines such as IL-1$\beta$, IL-6, and TNF-$\alpha$. The reduced secretion of proinflammatory cytokines is related to the differences in the mRNA expression of IL-1$\beta$, IL-6, and TNF-$\alpha$. Moreover, licochalcone A inhibited the mRNA expression of IL-12p40, IL-18, and IL-23p19. To investigate its mechanism, we performed gel shift assay. Licochalcone A reduced nuclear NF-${\kappa}B$ binding activity in LPS-activated RAW264.7 cells. Taken together, these results suggest that licochalcone A has anti-inflammatory effects in LPS-activated macrophages and its mechanism could be through the down-regulation of binding to the ${\kappa}B$ site.
As circ_UBE2D2 has been confirmed to have targeted binding sites with multiple miRNAs involved in septic acute kidney injury (SAKI), efforts in this study are directed to unveiling the specific role and relevant mechanism of circ_UBE2D2 in SAKI. HK-2 cells were treated with lipopolysaccharide (LPS) to construct SAKI model in vitro. After sh-circ_UBE2D2 was transfected into cells, the transfection efficiency was detected by qRT-PCR, cell viability and apoptosis were determined by MTT assay and flow cytometry, and expressions of Bcl-2, Bax and Cleaved-caspase 3 were quantified by western blot. Target genes associated with circ_UBE2D2 were predicted using bioinformatics analysis. After the establishment of SAKI rat model, HE staining and TUNEL staining were exploited to observe the effect of circ_UBE2D2 on tissue damage and cell apoptosis. The expression of circ_UBE2D2 was overtly elevated in LPS-induced HK-2 cells. Sh-circ_UBE2D2 can offset the inhibition of cell viability and the promotion of cell apoptosis induced by LPS. Circ_UBE2D2 and miR-370-3p as well as miR-370-3p and NR4A3 have targeted binding sites. MiR-370-3p inhibitor reversed the promoting effect of circ_UB2D2 silencing on viability of LPS-treated cells, but shNR4A3 neutralized the above inhibitory effect of miR-370-3p inhibitor. MiR-370-3p inhibitor weakened the down-regulation of NR4A3, Bax and Cleaved caspase-3 and the up-regulation of Bcl-2 induced by circ_UB2D2 silencing, but these trends were reversed by shNR4A3. In addition, sh-circ_UBE2D2 could alleviate the damage of rat kidney tissue. Circ_UBE2D2 mitigates the progression of SAKI in rats by targeting miR-370-3p/NR4A3 axis.
Objectives : This study aimed to investigate the unknown mechanisms behind the anti- inflammatory activity of Hyeonto-dan(HT) 70% ethanol extract on LPS-stimulated RAW 264.7 cells. Methods : Cells were treated with Hyeonto-dan 1 h prior to addition of 200 ng/mL of LPS. Cell viability was measured by the MTS assay. Nitric oxide levels were determined by the Griess assay. $PGE_2$ were measured using EIA kit. Pro-inflammatory cytokine production was measured by the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). The expression of COX-2, iNOS, and MAPKs was investigated by Western blot, qRT-PCR. $NF-{\kappa}B$/p65 localization and interaction of the TLR-4 receptor with LPS was examined by immunofluorescence assays. Results : Hyeonto-dan had no cytotoxicity at the measured concentration. Hyeonto-dan inhibited NO production and pro-inflammatory cytokines such as IL-6, $TNF-{\alpha}$, and PGE2 as well as the protein and mRNA expression of iNOS and COX-2. Moreover, Hyeonto-dan inhibited the interaction between LPS and TLR-4 in murine macrophages. It suppressed phosphorylation of extracellular signal-regulated kinase (ERK 1/2), c-jun N-terminal kinase (JNK 1/2) and p38. Finally, it inhibited translocation of $NF-{\kappa}B$ in response to competitive LPS. Conclusions : Based on the results of this study, Hyeonto-dan inhibited the binding of TLR-4 receptor to LPS and inhibited the phosphorylation of extracellular signaling pathway MAPKs. These inhibitory effects are thought that the amount of $NF-{\kappa}B$ delivered to the nucleus was decreased and the inflammatory reaction was prevented by decreasing the production of LPS-induced $PGE_2$, NO, IL-6 and $TNF-{\alpha}$.
This research analyzed the effect of ${\beta}$-glucan that is expected to alleviate the production of the inflammatory mediator in macrophagocytes, which are processed by the lipopolysaccharide (LPS) of Escherichia. The incubated layer was used for a nitric oxide (NO) analysis. The DNA-binding activation of the small unit of nuclear factor-${\kappa}B$ was measured using the enzyme-linked immunosorbent assay-based kit. In the RAW264.7 cells that were vitalized by Escherichia coli (E. coli) LPS, the ${\beta}$-glucan inhibited both the combatant and rendering phases of the inducible NO synthase (iNOS)-derived NO. ${\beta}$-Glucan increased the expression of the heme oxygenase-1 (HO-1) in the cells that were stimulated by E. coli LPS, and the HO-1 activation was inhibited by the tin protoporphyrin IX (SnPP). This shows that the NO production induced by LPS is related to the inhibition effect of ${\beta}$-glucan. The phosphorylation of c-Jun N-terminal kinases (JNK) and the p38 induced by the LPS were not influenced by the ${\beta}$-glucan, and the inhibitory ${\kappa}B-{\alpha}$ ($I{\kappa}B-{\alpha}$) decomposition was not influenced either. Instead, ${\beta}$-glucan remarkably inhibited the phosphorylation of the signal transducer and activator of transcription-1 (STAT1) that was induced by the E. coli LPS. Overall, the ${\beta}$-glucan inhibited the production of NO in macrophagocytes that was vitalized by the E. coli LPS through the HO-1 induction and the STAT1 pathways inhibition in this research. As the host immune response control by ${\beta}$-glucan weakens the progress of the inflammatory disease, ${\beta}$-glucan can be used as an effective immunomodulator.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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