Ok Bong Kim;Na Young Kim;Jae Hoon Jeong;Si Wouk Kim;Hye Gwang Jeong;Seong Myeong Yoon;Jong Kun Park;Jung Sup Lee
Animal cells and systems
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v.3
no.2
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pp.229-236
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1999
The recA gene plays a central role in genetic recombination and SOS DNA repair in Escherichia coli (E. coli). We have previously identified a 42 kDa RecA-like protein inducible by a variety of DNA damages from a fluorescent Pseudomonas strain sp. and characterized its inducible kinetics. In the present study, we cloned and characterized the gene encoding the RecA-like protein by immunological screening of Pseudomonas genomic expression library using polyclonal E. coli anti-RecA antibodies as a probe. From 10$^{5}$ plaques screened, five putative clones were finally isolated. Southern blot analysis indicated that four clones had the same DNA inserts and the recA-like gene was located within the 3.2 kb EcoRI fragment of Pseudomonas chromosomal DNA. In addition, the cloned recA-like gene was transcribed into an RNA transcript approximately 1.1 kb in size, as judged by Northern blot analysis. The cellular level of RNA transcript of the cloned recA-like gene was increased to an average of 5.15- fold upon treatment with DNA damaging agents such as ultraviolet (UV)- light, nalidixic acid (NA), methyl methanesulfonate (MMS), and mitomycin-C (MMC). These results suggest that the cloned gene is inducible by DNA damage similarly to the recA gene in E. coli. However, the cloned gene did not restore the DNA damage sensitivity of the E. coli recA-mutant.
We have analyzed the MRE3/REC114 gene of Saccharomyces cerevisiae, previously detected in isolation of mutants defective in meiotic recombination. We cloned the MRE3/REC114 gene by complementation of the meiotic recombination defect and it has been mapped to chormosome XIII. The DNA sequence analysis revealed that the MRE3 gene is identical to the REC114 gene. The upstream region of the MRE3/REC114 gene contains a T_4C site, a URS (upstream repression sequence) and a TR (T-rich) box-like sequence, which reside upstream of many meiotic genes. Coincidentally, northern blot analysis indicated that the three sizes of MRE3/REC114 transcripts, 3.4, 1.4 and 1.2 kb, are induced in meiosis. A less abundant transcript of 1.4 kb is detected in both mitotic and meiotic cells, suggesting that it is needed in mitosis as well as meiosis. To examine the role of the MRE3/REC114 gene, we constructed mre3 disruption mutants. Strains carrying an insertion or null deletion of the MRE3/REC114 gene showed slow growth in nutrient medium and the doubling time of these cells increased approximately by 2-fond compared to the wild-type strain. Moreover, the deletion mutant (${\delta}$mre3) displayed no meiotically induced recombination and no viable spores. The mre3/rec114 spore lethality can be suppressed by spo13, a mutation that causes cells to bypass reductional division. The double-stranded breaks (DSBs) which are involved in initiation of meiotic recombination were not detected in the analysis of meiotic chromosomal DNA from the mre3/rec114 disruptant. From these results we suggest that the MRE3/REC114 gene product is essential in normal growth and in early meiotic stages involved in meiotic recombination.
SOON-DUCK HONG;SHIN, WOO-CHANG;DONG-SUN LEE;JONG-GUK KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.5
no.2
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pp.87-91
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1995
The chitinase gene was cloned from Acinetobacter sp. WC-17 for investigating the genetic control and enzymatic properties of bacterial chitinase. A genomic library of Acinetobacter sp. WC-17 was prepared in E.coli JM109 by using pUC18 as a vector. The chitinase-positive clone containing 3.2kb insert fragment was obtained from 5, 000 insert-bearing transformants. The optimum pH and temperature of cloned enzyme were 6.0 and $55^{\circ}C$, respectively. Almost all the chitinase activity of E.coli recombinant was localized in the periplasmic fraction, while most of the enzyme activity of Acinetobacter sp. WC-17 was found in the extracellular fraction.
For the purpose of developing a new biodegradable detergent, we have isolated a gene encoding wide-range temperature applicable alkaline protease from Xanthomonas sp. YL-37 (Lee et al., 1994, Kor. J. Appl. Microbiol. Biotechnol.). An alkaline protease gene was isolated from the gene bank that was prepared from the chromosomal DNA of Xanthomonas sp. YL-37. From the results of agarose gel electrophoresis and a restriction enzyme mapping, a 2.7 kb DNA fragment containing the alkaline protease gene was inserted in the plasmid pUC9. Extracellular activity of a clone having alkaline protease gene was detected on SDS-polyacrylamide gel with activity staining assay. The molecular weight of alkaline protease was determined to be about 64 kDa from 11% SDS-PAGE analysis. Alkaline protease activity, produced from E. coli which harboring the plasmid, showed no difference at reaction temperature 20, 30 and 40$\circ$C, respectively. This result showed that alkaline protease produced from E. coli harboring the plasmid was apparently the same as that of Xanthomonas sp. YL-37.
The cuclodextrin glucanotransferase (CGTase) gene of Bacillus macerans was subcloned at the downstream of yeast ADH1 promoter, and then the resulting plasmid pVT-CGTM(9.15 kb) was introduced into the yeast host strain, Saccharomyces cerevisias 2805. The transformed yeast, S. cerevisiae 2805/pVT-CGTM, showed the starch-hydrolyzing activity on the starch-azure plate. The optimal conditions for the CGTase expression were found to be 2% dextrose, initial pH5.5, 3$0^{\circ}C$, and 48hr cultivation. Under this condition, the extracellular CGTase activity reached at 0.53 U/mL, whereas the intracellular activity was about 0.03U/mL. This result indicates that the signal peptide of Bacillus CGTase functioned well in S. cerevisiae.
Hybridization of DNA isolated from leaves of Russet Burbank potato with tomato cDNA as a probe revealed the presence of about ten inhibitor 1 genes in the genome. Screening of a genomic library of Russet Burbank potato resulted in isolation of seven different genomic clones carrying inhibitor I genes. One of the genomic clones, clone 2, contained two EcoRI fragments of 3.4 and 1.8 kb in size, respectively, which were hybridized with the probe. The nucleotide sequence of parts of the hybridizing EcoRI fragments revealed that they contain a complete gene which codes for an open reading frame of 107 amino acids. It is interrupted by two intervening sequences of 502 and 493 bp, situated at the positions of codons 17 and 43, respectively, of the open reading frame. Putative regulatory sequences, TATAAA and CCACT, were found at the 5' flanking region. In addition, a copy of a 100 bp repeat found at a tomato inhibitor I gene was identified.
Park, Jae-Sun;Lee, Sung-Jae;Rhie, Ho-Gun;Lee, Ho-Sa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.6
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pp.1040-1043
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2008
Klebsiella oxytoca CCUG 15788 is resistant to $Ni^{2+}$ at a concentration of 10 mM and grows in an inducible manner when exposed to lower concentrations of $Ni^{2+}$. The complete genomic sequence of a 4.2-kb HindIII-digested fragment of this strain was determined from genomic DNA. It was shown to contain four nickel resistance genes (nirA, nirB, nirC, and nirD) encoding transporter and transmembrane proteins for nickel resistance. When the plasmid pKOHI4, encoding nirABCD, was transformed into Escherichia coli JM109, the cells were able to grow in Tris-buffered mineral medium containing 3 mM nickel. TnphoA'-1 insertion mutants in the four nickel genes nirA, nirB, nirC, and nirD showed nickel sensitivity. The nir genes were heterogeneously expressed in E. coli, suggesting functional roles of these genes in nickel resistance.
The pseudodisaccharide salbostatin, which consists of valienamine linked to 2-amino-1,5-anhydro-2-deoxyglucitol, is a strong trehalase inhibitor. From our Streptomyces albus ATCC 21838 genomic library, we identified thirty-two ORFs in a 37-kb gene cluster. Twenty-one genes are supposed to be a complete set of modules responsible for the salbostatin biosynthesis. Through sequence analysis of the gene cluster, some of the upstream gene products (SalB, SalC, SalD, SalE, and SalF) revealed functional resemblance with trehalose biosynthetic enzymes. On the basis of this rationale, we isolated the five genes (salB, salC, salD, salE, and salF) from the S. albus ATCC 21838 and cloned them into the expression vector pWHM3. We demonstrated the noticeable expression and accumulation of trehalose, using only the five upstream biosynthetic gene cluster of salbostatin, in the transformed Streptomyces lividans TK24. Finally, 490 mg/l trehalose was produced by fermentation of the transformant with sucrosedepleted R2YE media.
Virginiae butanolide C(VB-C) is one of the butyrolactone autoregulators, which triggers the production of virginiamycin in Streptomyces virginiae. In order to investigate the function of VB-C as inducer in other strains, Streptomyces erythraeus was used as a test strain(parent). VB-C binding receptor gene was introduced into S. erythraeus(transformant) and the production of VBs and specific VB-C binding protein were analysed in parent and transformant. When 300ng/ml of the synthetic VB-C was added at 0, 20, 44 h cultivation of the parent and at 44 h cultivation of the transformant, the initial production times a antibiotics were shortened by more than 8 and 6 h, respectively. The transformant showed strong antibiotic activity against B. subtilis. These results suggest that the VB-C might have an ability to induce the production of secondary metabolites in S. erythraeus.
The genetic relationships in 5 species of $Ligularia$ were investigated using RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA) and ITS (Internal Transcribed Spacer) sequences analyses. In RAPD analysis, sixty three of 196 arbitrary primers showed polymorphism. The amplified fragments ranged from 0.2 to 1.6 kb in size. The dendrogram was constructed by the UPGMA clustering algorithm based on genetic similarity of RAPD markers. A total of 16 accessions were classified into 5 major groups corresponding each species at the similarity coefficient value of 0.77. In the ITS sequence analysis, the size of ITS 1 was varied from 248 to 256 bp, while ITS 2 was varied from 220 to 222 bp. The 5.8S coding region was 164 bp in lengths. Forty nine sites (10.2%) of the 478 nucleotides were variable, and the G+C content of ITS region ranged from 49.4 to 53.5%. In the ITS tree, five species of $Ligularia$ were monophyletic, and $L.$$taquetii$ was the first branching within the clade. $Ligularia$$intermedia$ formed a clade with $L.$$fischeri$ var. $spiciformis$ (BS=79), and $L.$$stenocephala$ and $L.$$fischeri$ were also claded. Two data sets were congruent, except of the position of $L.$$fischeri$ var. $spiciformis$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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