Superoxide dismutase (SOD) was purified to homogeneity from fruiting bodies of edible mushroom, Lentinus edodes, by ammonium sulfate precipitation, diethylaminoethyl (DEAE)-Sepharose FF ion-exchange chromatography, Sephacryl S-200 gel filtration chromatography, and preparative PAGE. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be approximately 54 kDa by gel filtration chromatography, and the enzyme was shown to be consisted of two identical subunits of molecular weight 27 kDa by SDS-PAGE. The isoelectric point of the enzyme was 4.9 as determined by isoelectric focusing. The enzyme had optimal pH and temperature of pH 8.0 and $20^{\circ}C$, respectively. The activity of the enzyme was inhibited by hydrogen peroxide, but inhibited less by cyanide and azide. The native enzyme was found to contain 0.89g-atom of iron, 0.75g-atom of zinc, and 0.46g-atom of copper per mol of enzyme. Analysis of amino acids composition revealed that the SOD from L. edodes contained a relatively large amount of glutamic acid/glutamine, proline, cysteine, isoleucine, and leucine, but only a small amount of aspartic acid/asparagine, tyrosine, and tryptophan when compared to the other iron-containing SODs.
Isozyme comparisons of mycelial extracts from Pleurotus ostreatus were undertaken using isoelectric focusing. Enzyme isozyme patterns were Used to describe the extent of geographical diversity and degree of intraspecific variation in these extracts. A total of 77 bands were resolved from six different enzymes. Cluster analyses were performed using the zymograms for esterase (EST), glucose phosphate isomerase (GPI), leucine aminopeptidase (LAP), malate dehydrogenase(MDH), peroxidase (POX), and phosphoglucomutase (pGM). EST gave multiple banding patterns, while less variability was observed for GPI, MDH, and PGM. Cluster analyses demonstrated that strains of P. ostreatus from geographically different origins are genetically divergent, supporting the idea that there is little or no gene flow between these geographically distant population groups.
Three peroxidase fractions (peak I, II, III) were isolated from Fuji apples using CM-cellulose chromatography. The homogeneity of the isolated peroxidase isozymes was established by isoelectric focusing and electrophoresis. Isoelectric points of the isozymes were 3.80, 3.82, and 3.85, respectively. The optimum pH of peroxidase isozymes were pH 5.0(peak I) or 5.5(peak II, III), and optimum temperature was $40^{\circ}C$ when assayed by using guaiacol and $H_{2}O_{2}$ as substrates. Inactivation rate of three peroxidase isozymes were different at temperature of $70^{\circ}C$ and at pH of 5.5. The isozyme of peak II was found to be more heat stable than those of peak I and III. D values at $70^{\circ}C$ of peroxidase isozymes (peak I, II, III) were estimated to be 660 sec, 1,320 sec, and 600 sec, respectively. The thermal stability of Fuji apple peroxidase was not influenced in the presence of 0.032 M sucrose or lactose. However, the thermal stability of the enzyme was decreased by fructose and glucose.
It has been well known that the renal cortical blood flow rate was much higher than that of the medulla and the renal blood flow distribution was affected by hemorrhage, volume expansion or salt-loading. The existance of the heterogeneities of glomerular filtration rate and nephron has also been reported. In order to understand the regulations and physiological roles of the heterogeneities, studies on the intrarenal renin-angiotensin system have been focused. Although it is well known that the granularity of iuxtaglomerular cells and renal renin content are more marked in superficial than in the deep glomeruli, their physiological significance is not quite clear. This study was therefore undertaken to clarify changes in renin response and isoelectric ronin profile to TMB-8 in outer, mid and inner cotices of normotensive and hypertensive rats. The basal rate of renin release was highest in outer cortex of Sprague-Dawley rat (SDR), Wistar rat (WR) and spontaneously hypertensive rat (SHR). The basal renin release from outer and inner cortex of SHR was significantly lower than that from those of SDR. The reponse of renin release to TM8-8 was highest in mid cortex and the increase of renin release in response to TMB-8 from inner cortex of SDR was significantly higher than that in SHR. In dehydrated rats, the basal renin release from renal cortical slices of SDR was increased but that from WR and SHR was not. The response of renin release to TMB-8 from mid and inner cortex of dehydrated WR tended to increase. In dehyrated SHR, increase of renin release from inner cortex was significantly higher than that in euhydrated SHR. No significant differences in the isoelectric renin profile were found both in different cortical areas and strains. In dehydrated rats, the percentage of renin form 2 was decreased and those of renin form 5 and 6 were increased. These results suggest that the heterogeneity of renin release from cortical area of euhydrated and dehydrated rats in response to TMB-8 may be related to the changes of renal blood flow and/or calcium metabolism in cortical area. These data also suggest that the renin forms with different isoelectric points may have an physiological significance.
${\beta}$-Glucuronidase from bull seminal plasma was partially purified by $(NH_4)_2SO_4$fractionation, two successive DEAE-cellulose columns, isoelectric focusing (pH 4 to 6) and Gel filtration on Sephadex G-200. Only one form of ${\beta}$-glucuronidase was obtained by isoelectric focusing at pH 5.13. Highly purified ${\beta}$-glucuronidase had specific activity of 34 units/mg protein and showed one major and some minor contaminants by disc gelk electrophoresis. The enzyme showed maximum activity at pH 5.2 and at $48^{\circ}C$. The enzyme was completely inhibited by 1,4 saccharo-${\alpha}$-lactone (5 mM). Albumin and 0.15 M NaCl increased the ${\beta}$-glucuronidase activity. Km of ${\beta}$-glucuronidase using phenolphthalein mono-${\beta}$-glucuronic acid as substrate was 2.9 mM and Vmax was $0.8{\mu}$mole/min. The enzyme appeared to be a glycoprotein by its binding to concanvalin·A. Rabbit and human sperm-acrosomal extracts and seminal plasma showed high ${\beta}$-glucuronidase activity.
Artificially oxidized cysteine residues in peroxiredoxin 6 (Prx6) were detected by electrospray interface capillary liquid chromatography-linear ion trap mass spectrometry after the preparation of two-dimensional gel electrophoresis (2D-GE). We used Prx6 as a model protein because it possesses only two cysteine residues at the 47th and 91st positions. The spot of Prx6 on 2D-GE undergoes a basic (isoelectric point, pI 6.6) to acidic (pI 6.2) shift by exposure to peroxide due to selective overoxidation of the active-site cysteine Cys-47 but not of Cys-91. However, we detected a tryptic peptide containing cysteine sulfonic acid at the 47th position from the basic spot and a peptide containing both oxidized Cys-47 and oxidized Cys-91 from the acidic spot of Prx6 after the separation by 2D-GE. We prepared two types of oxidized Prx6s: carrying oxidized Cys-47 (single oxidized Prx6), and other carrying both oxidized Cys-47 and Cys-91 (double oxidized Prx6). Using these oxidized Prx6s, the single oxidized Prx6 and double oxidized Prx6 migrated to pIs at 6.2 and 5.9, respectively. These results suggest that oxidized Cys-47 from the basic spot and oxidized Cys-91 from the acidic spot are generated by artificial oxidation during sample handling processes after isoelectric focusing of 2D-GE. Therefore, it is important to make sure of the origin of cysteine oxidation, if it is physiological or artificial, when an oxidized cysteine residue(s) is identified.
High-molecular-weight ${\beta}-glucosidase$ (EC 3.2.1.21) was purified from the culture filtrate of Trichoderma koningii through a four-step procedure including chromatography on Bio-Gel P-150, DEAE-Sephadex A-50 and SP-Sephadex C-50; and chromatofocusing on Polybuffer exchanger PBE 94. The molecular weight of the enzyme was determined to be about 101,000 by SDS-polyacrylamide gel electrophoreses, and the isoelectric point was estimated to be 4.96 by analytical isoelectric focusing. The temperature optimum for activity was about $55^{\circ}C$, and the pH optimumwas 3.5. The enzyme was considerably thermostable, for no loss of activity was observed when the enzyme was preincubated at $60^{\circ}C$ for 5h. Km values for cellobiose, gentiobiose, sophorose, salicin and $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ were 99.2, 14.7, 7.09, 3.15 and 0.70 mM, respectively, which indicates that the enzyme has much higher affinity towards $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ than towards the other substrates, especially cellobiose. Substrate inhibition by $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ and salicin was observed at the conecntrations exceeding 5mM. Gluconolactone was a powerful inhibitor against the action of the enzyme on $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside\;(K_i\;37.9\;{\mu}M)$, wherease glucose was much less effective ($K_i$ 1.95 mM). Inhibition was of the competitive type in each case. Transglucosylation activity was detected shen the readtion products formed from $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ by the enzyme were analysed using high-performance liquid chromatography.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.16
no.2
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pp.37-48
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2008
The diapause and non diapause associated proteins of multivoltine silkworm eggs were analysed by two dimensional (2D) gel electrophoresis. The study was made at 0 hr, 24 hrs and 48 hrs after oviposition. A total of four protein spots in diapause eggs at 24 hrs of oviposition and two protein spots in non diapause eggs at 0 hrs of oviposition were observed. All the six protein spots were considered to have association with diapause and non diapause characters. The molecular weight (MW) and isoelectric point (PI) of these 6 protein spots were calculated. The protein spots 1 and 2 observed in 0 hr of non diapause eggs were found to have the MW of 67 and 75 KDa and PI of 8.6 and 8.4 respectively. Similarly the four protein spots observed in diapause egg at 24 hrs of oviposition exhibited MW viz., 15, 17,20 and 25 KDa and PI of 5.3, 5.8, 6.5 and 6.0 respectively. All these 6 identified protein spots were subjected to in-gel digestion and resulted tryptic peptides were analyzed by Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of flight mass spectrometry (MALDI TOF-MS). Databases searched based on experimentally determined molecular weights of peptides for the determination of the identities of proteins. The identified proteins indicated homology of 34% to 95%. The results indicate that the proteins may playa role in development of diapause and non diapause eggs.
Tabanus anticoagulant protein (TAP) was isolated from the whole body of the tabanus, Tabanus bivittatus, using three purification steps (ammonium sulfate fractionation, gel filtration on Bio-Gel P-60, and ion exchange chromatography on DEAE Sephadex gel). The purified TAP, with a molecular weight of 65 kDa, was assessed to be homogeneous by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, and an isoelectric point of 7.9 was determined by isoelectric focusing. The internal amino acid sequence of the purified protein was composed of Ser-Leu-Asn-Asn-Gln-Phe-Ala-Ser-Phe-lle-Asp-Lys-Val-Arg. The protein was activated by $Cu^{2+}\;and\;Zn^{2+}$, and the optimal conditions were found to be at pH $3\sim6\;and\;40\sim70^{\circ}C$. Standard coagulation screen assays were used to determine thrombin time and activated partial thromboplastin time. Chromogenic substrate assays were performed for thrombin and factor Xa activity. TAP considerably prolonged human plasma clotting time, especially activated partial thromboplastin time in a dose-dependent manner; it showed potent and specific antithrombin activity in the chromogenic substrate assay. Specific anti-factor Xa activity in TAP was not detected. Overall, this result suggested that TAP has significant anticoagulant activity on blood coagulation system.
To elucidate enzymatic properties of a-glactosidase (EC 3.2.1.22) from Asp. niger, a-galactosidase from wheat bran culture was purified by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography and gel filtration. And then its enzymatic propeties were investigated. The highest level of $\alpha$-galactosidase activity was obtained when Asp. niger was grown on wheat bran medium at $30^{\circ}C$ for 96 hours. The $\alpha$-galactosidase was purified by 23.7 fold by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography on DEAE-Celluose and Sephadex A-50, and gel filtration on Sephadex G-150 and its specific activity was 1,229 Unitslmg protein and the yield was 14% of the total activity of wheat bran culture. The purified $\alpha$-galactosidase was found to be homogeneous by polyacrylamide gel electrophoresis and HPLC. The $\alpha$-galactosidase was a tetrameric glycoprotein which consisted of identical subunits with molelcular weight of 28,000 each by SDS-PAGE and isoelectric point was determined analytical isoelectric focusing to be pH 4.6. The optimal temperature and pH for the $\alpha$-galactosidase activity were $40^{\circ}C$ and pH 6.5, respectively, and 54% of its activity was lost by heating at $60^{\circ}C$ for 10 mins, It was appeared to have higher affinty to raffinose than to stachyose. The K, value and activation energy of $\alpha$-galactosidase were 5.0 mM and 8.515 Kcal per mole for p-nitrophenyl- $\alpha$--D-galactopyranoside, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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