To isolate a calcium-binding peptide from chlorella protein hydrolysates, chlorella protein was extracted and hydrolyzed using Flavourzyme, a commercial protease. The degree of hydrolysis and calcium-binding capacity were determined using trinitrobenzenesulfonic acid and orthophenanthroline methods, respectively. The enzymatic hydrolysis of chlorella protein for 6 hr was sufficient for the preparation of chlorella protein hydrolysates. The hydrolysates of chlorella protein were then ultra-filtered under 5 kDa as molecular weight. The membrane-filtered solution was fractionated using ion exchange, reverse phase, normal phase chromatography, and fast protein liquid chromatography to identify a calcium-binding peptide. The purified calcium-binding peptide had a calcium binding activity of 0.166 mM and was determined to be 700.48 Da as molecular weight, and partially identified as a peptide containing Asn-Ser-Gly-Cys based on liquid chromatography/electrospray ionization tandem mass spectrum.
Eleven phenols including two chlorophenols, eight alkylphenols and bisphenol A were derivatized with isobutylchloroformate to form their isobutoxycarbonyl derivatives. Standard phenol mixture was concentrated for the isobutoxycarbonyl (isoBOC) derivatization and analysed by gas chromatography/mass spectrometry (GC/MS). The recoveries of the derivatization method of alkylphenols, chlorophenols, and bisphenol A were calculated by gas chromatography/mass spectrometry-selected ion monitoring mode using two work-up methods for comparison; shaking and heating method. The linear detector responses were obtained in the concentration range of 5∼400 ng, with correlation coefficients varying from 0.9755∼0.9981. Recoveries of the alkylphenols, chlorophenols, and bisphenol A were determined by gas chromatography/mass spectrometry-selected ion monitoring mode using two work-up methods for comparison ; the US-EPA method and the isoBOC derivatization method, Eleven phenols in water samples were extracted with dichloromethane and then concentrated. Also, solid-phase extraction (SPE) with XAD-4 and subsequent conversion to isobutoxycarbonyl derivatives for sensitive analysis with the selected ion-monitoring (SIM) mode. The recoveries were 85.1∼109.9% and 90.3∼126.6% for the US-EPA method and the isoBOC.
The possibilities for HPLC analysis of lipids have been revolutionised by the availability of evaporative light-scattering detectors, with which the response is independent of the nature of the mobile phase and does not depend On the presence of specific chromophores in the lipids. It was thus possible to develop an HPLC procedure, involving ternary gradient elution, for separating all the lipid classes in animal tissues in a single step. Although reversed-phase HPLC has been widely used for the analysis of molecular species of lipids, sliver ion chromatography can be a valuable alternative. For example, a stable silver ion column for HPLC was developed which permitted resolution of molecular species of triacylglycerols, even from such complex samples as fish oils, again With light-scattering detection and gradient elution. The capacity for HPLC resolution of diastereomeric diacyl-sn-glycerol derivatives, prepared from triacylglycerols. has lead to a new simple method for stereospecific analysis of the latter.
담즙내 지방산의 농도와 그 조성이 콜레스테롤의 과포화와 마찬가지로 담석 형성 과정에 관련이 있는 것으로 여겨지고 있다. 본 연구에서는 gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS)의 selected ion monitoring (SIM) 방법을 이용하여 담즙내 23종의 지방산 동시 분석을 시도하였다. 전처리 과정의 첫 단계로 유리 지방산과 인지질 지방산을 분리하기 위해 aminopropyl column을 사용하였고 GC-MS에서의 검출을 위하여 유리 지방산은 MSTFA/TMCS 혼합액으로 유도제화를 실시하였으며 인지질 지방산의 경우는 염기를 이용한 가수분해를 실시한 뒤 위와 동일한 과정으로 유도제화하였다. 이 때의 회수율은 61.1-99.0% 이었으며 각각 3.1-25.6%와 3.8-27.0%의 within-a-day와 day-to-day 분석의 RSD 값을 얻었다. 이 방법을 적용하여 정상인과 담석증 환자의 담즙내에 존재하는 유리 및 인지질 지방산의 농도를 알아보았으며 이 때 각 물질들의 농도와 분포가 두 군간에 차이를 나타냄을 알 수 있었다.
에스트로겐처럼 행동하여 호르몬 수용체와 결합하거나 세포의 신호전달 과정에 영향을 미침으로서 내분비계를 교란시킬 수 있는 환경 에스트로겐 19종 (phytoestrogen: 12종, mycoestrogen: 5종, synthetic estrogen: 2종)의 동시 프로필 분석을 시도하였다. Gas Chromatography/Mass Spectrometry (GC/MS)의 selected ion monitoring (SIM) 방법을 기본으로 하였으며, 액체-고체 추출, 효소 기수분해, 액체-액체 추출 그리고 trimethylsilyl (TMS)-ether 형태의 유도체화를 거치는 비교적 간편한 전처리 방법으로 47.6~99.5%의 회수율과 0.66~9.33%, 1.66~16.14%의 within-a-day 및 day-to-day 분석의 RSD 값을 얻었다. 이 방법을 적용하여 정상 성인 여성과 남성의 뇨 시료에 존재하는 대상 물질들의 농도범위를 결정함으로서 환경 에스트로겐의 영향을 평가하는데 기준이 될 수 있는 한국인 정상인 참고치를 설정하였다.
An angiotensin converting enzyme (ACE) inhibitory substance was isolated and purified from Lycium chinense Miller. A crude water extract of Lycium chinense Miller was prepared by adding it to water shaking at $25^{\circ}C$ for 1 hr, followed by centrifugation at 8000 ${\times}$ g for 30 min. The crude extract was then filtered using YM-3 and YM-1 membranes. An ACE inhibitor was isolated using consecutive chromatographic methods including: ion exchange chromatography, gel permeation chromatography, and FPLC. The inhibitor was identified to have a molecular mass of 862 daltons by mass spectrometry.
청미래덩굴 뿌리(Smilacis rhizoma)로부터 칼슘과 결합하는 물질을 분리하고자 열수로 추출한 추출물을 ion exchange, normal-phase HPLC 및 gel filtration chromatogarphy를 이용하여 칼슘 결합 물질을 순차적으로 분리하였다. 그 결과 ion exchange chromatography에서 7개의 major peaks를 얻었으며, 이 중 F6 fraction이 0.083 mM로 칼슘과 가장 높은 결합력을 가졌다. 또한 F6를 $NH_2$ column으로 분획한 결과 F61에서 0.130 mM의 가장 높은 칼슘함량을 나타내었으며, 최종적으로 $Superdex^{TM}$를 이용하여 F611 fraction으로 분리하였다. 따라서 청미래덩굴 뿌리 추출물 중 F611 fraction을 이용하여 biomineral을 제조함으로써 칼슘 보충제나 기능성 성분의 원료로써 식품산업에 활용될 수 있다고 판단된다.
Ascorbic acid(AsA)의 산화 안정성 증진을 목적으로 효소적 배당화를 시도하였다. 본 실험에서 사용한 6종의 ${\beta}-galactosidase$에 대한 당 전이 생성물의 수율을 분석 비교한 결과 Asp. oryzae에서 분리한 ${\beta}-galactosidase$의 당 전이활성이 가장 높았으며, 당 공여체인 lactose와 당 수용체인 AsA 함유용액에서 당 전이 수율은 약 30% 수준이었다. 당 전이 생성물은 $Dowex\;1{\times}8$(Cl-형) 수지에 의한 ion exchange chromatography와 Toyopearl 40S gel chromatography에 의해 분리한 다음 동결건조하였다. Asp. oryzae 유래의 ${\beta}-galactosidase$ 존재 하에서 AsA와 lactose의 반응액에서 분리한 생성물은 UV, IR, CI-MS, $^1H-NMR,\;^{13}C-NMR$ 등을 이용한 기기분석, 산 및 ${\beta}-galactosidase$에 의한 가수분해 특성을 조사한 결과 AsA에 galactose 1분자가 결합된 $6-O-{\beta}-_D-galactopyranosyl-_L-ascorbic\;acid$로 판명되었다.
Kim, Hyun-Ji;Kim, Seung-Woo;Lee, Ja-Kyeong;Yoon, Sung-Hwa
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제32권4호
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pp.1221-1227
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2011
Ethyl pyruvate (EP) is known as a scavenger of reactive oxygen species (ROS) in the body through its role in the donation of diketone groups to metals to form an EP-metal complex. In order to develop a method for the quantification of EP in biological media, a sensitive and specific, high-performance liquid chromatographyelectrospray ionization-mass spectrometry (HPLC-ESI/MS) method is used to determine the EP-alkali metal ion binding species. The analyte was separated on a ZORBOX SB-C8 ($3.5{\mu}m$, $30mm{\times}2.1mm$ I.D.) column and analyzed in selected ion monitoring (SIM) mode with a positive ESI interface using the m/z 255 $[2M + Na]^+$ ion. The method was validated over the concentration range of $0.5-60.0\;{\mu}g$/mL under 1/9 (v/v) of acetonitrile/methanol solvent system with flow rate 0.05 mL/min. The limit of quantification (LOQ) was $0.5{\mu}g$/mL.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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