Kim, Su-Ill;Na, Jee-Yeong;Jo, Do-Hyun;Lee, Chun-Yung
Applied Biological Chemistry
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v.30
no.1
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pp.88-94
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1987
To investigate ginseng oligopeptides with biological activities, the water extract was purified by ultra-filtration, gel filtration, ion-exchange and thin layer chromatography. Ultra-filtered water extract exhibited antilipolytic activity, inhibiting epinephrine-induced lipolysis in the isolated fat cells of rat epididymal adipose tissue. The filtrate was separated into 3 fractions by Sephadex G-25 gel filtration. Peptides were found only in the first fraction(S-FI). Saponine and sugars were also detected in tie fraction. S-FI fraction resolved further into 6 fractions by Dowex 50 ion-exchange chromatography. The sugar and saponine depleted fraction(P-F2) from the second chromatography showed antilipolytic activity. The P-F2 fraction revealed 6 spots on TLC. The 6 spots were isolated by TLC and identified as peptides.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1993.04a
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pp.45-45
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1993
괄루근으로부터 분리된 다당류에 대하여 continuous gel electrophoresis, SDS-Polyacrylamide gel eletrophoresis, ion exchange column chromatography, Hydroxyapatite column chromatography 및 Gel filtration등의 방법을 이용하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 1) 황산암모늄 분별침전법에 의한 렉틴의 정제도는 초추출물의 4.85배이며 DEAE Sephadex A-50 column chromatography법에 의한 정제도는 24.17배로 나타났고, 마지막 정제단계인 Sephacryl S-200 gel filtration에 의한 정제도는 47.34배로 나타났다. 2) 정제된 렉틴의 분자량은 60,000da1ton으로 나타났다. 3) 사람의 혈액형에 따른 응집효과는 90-100%로 특이성은 없었다.
Extracellular $\beta$-galactosidase from the culture broth of L. sporogenes was purified to apparent homogeniety by procedures including ammonium sulfate fractionation, Sephadex G-200 gel filtration, DEAE-Sephadex A-50 ion exchange chromatography, and Hydroxyapatite adsorption chromatography. The purifying procedures resulted in 347-fold purification with the overall yield of 39.5% The purified enzyme had a specific activity(using ONPG as a substrate) of about 1, 585 units per mg protein. The molecular weight of the enzyme protein was estimated to be 140, 000 by gel filtration on Sephadex G-200, and SDS-polyacrylamide gel electorphoresis showed that the enzyme consisted of two identical subunits with a molecular weight of 72, 000.
The cell cultures and crude extracts of Bacillus sphaericus 1593 K-5 and its mutant Spo-Dl216 were respectively bioassayed against Culex pipiens var. pollens mosquito larvae. The B. sphaeriucs 1593 K-5 showed toxic activity against the larvae. LC$_{50}$ values (cells/$m\ell$) was 2.6$\times$10$^2$. Also the LC$_{50}$ ($\mu\textrm{g}$ Protein/$m\ell$) of the crude extract was 10.26. However, B. sphaericus Spo-Dl216 didn't show toxic activity against the larvae. The soluble cytoplasmic toxin in broken B. sphaeriucs 1593k-5 cells was partially purified by gel permeation chromatography and ion exchange chromatography. Among the fractions of the gel permeation chromatography only a single fraction was found to be toxic. LC$_{50}$ values ($\mu\textrm{g}$ protein/$m\ell$) of the active fraction was 0.182. The active fraction of the gel permeation was subjected to ion exchange chromatography. Only a single fraction showed toxic activity and its LC$_{50}$ values ($\mu\textrm{g}$ protein/$m\ell$) was 0.02..02.
This study was carried out to separate ovotransferrin in chicken egg white by gel chromatography and heparin affinity chromatography. In gel filtration which was performed with 50mM Phosphate buffer (pH 7.2, 0.15M salt) at a flow rate of 2.0 ml/min, ovotransferrin and ovalbumin were eluted together in fraction number 11-16. In order to separate pure ovotransferrin, fraction No. 12-14 of them which have high concentration of ovotransferrin were concentrated and rechromatographed. However, the ovotransferrin did not separated clearly. In heparin affinity chromatography, the separation was performed with 50mM ethylaminetetraacetic acid (EDTA, pH7.2) and 50mM Phosphate buffer (pH 7.2, 0.15M salt contained) on ferrous and ferric ion saturated column at as same flow rate as gel filtration system's. Ovotransferrin and albumin were eluted together at 10-15min (fraction No.3) and 15-20min (fraction No.4), respectively. However, purified ovotransferrin was eluted at 156-165min and 165-175min (tube No.32-33) with 50 mM phosphate buffer (pH 7.2, 0.15M salt free), respectively. Heparin affinity chromatography with ferric ion saturated column was resulted in the best separation of ovotransferrin rather than separation by gel chromatography and ferrous ion saturated heparin affinity chromatography.
B-Amylase was obtained from sweet potato extract in a crystalline state by dialysis against water after precipitated with acetone according to the method reported previously followed by DEAE Sephadex A-50 ion exchange chromatography plus gel chromatography of Sephadex G-200. The purified enzyme was homogeneous by SDS PAGE. The efforts had done to remove the miner bands in SDS PAGE by Sephadex G-200 gel chromatography, DATE Sephadex A-50 ion exchange chromatography. isoelectrophocusing, affinity chromatography, hydroxyapatite chromatography, recrystallizstion and HPLC on a column of TSK gel SW 3000 but have given any result. But, N -terminal amino acid of the enzyme was revealed mainly alanine and trace of glycine and glutamic acid. Therefore, it seems that the miner bands in SDS PAGE have a role of subunit.
Methionine aminopeptidase (MetAP) catalyzes the removal of an amino-terminal methionine from a newly synthesized polypeptide. The enzyme was purified to homogeneity from Bacillus stearothermophilus (KCTC 1752) by a procedure that involves heat precipitation and four sequential chromatographs (including DEAE-Sepharose ion exchange, hydroxylapatite, Ultrogel AcA 54 gel filtration, and Reactive red 120 dye affinity chromatography). The apparent molecular masses of the enzyme were 81,300 Da and 41,000 Da, as determined by gel filtration chromatography and sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), respectively. This indicates that the enzyme is comprised of two identical subunits. The MetAP specifically hydrolyzed the N-terminal residue of Met-Ala-Ser that was used as a substrate, and exhibited a strong preference for Met-Ala-Ser over Leu-Gly-Gly, Leu-Ser-Phe, and Leu-Leu-Tyr. The enzyme has an optimal pH at 8.0, an optimal temperature at $80^{\circ}C$, and pI at 4.1. The enzyme was heat-stable, as its activity remained unaltered when incubated at $80^{\circ}C$ for 45 min. The Km and Vmax values of the enzyme were 3.0mM and 1.7 mmol/min/mg, respectively. The B. stearothernmophilus MetAP was completely inactivated by EDTA and required $Co^{2+}$ ion(s) for activation, suggesting the metal dependence of this enzyme.
The effects of initial cadmium ion concentrations (50, 100, 200, 300ppm), and feeding velocities (30, 45, 60mL/hr) on the removal ratio of cadmium ion by Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 immobilized in Ca-alginate gel beads in a packed-bed column reactor were investigated at operating temperature $37^{\circ}C$. The removal ratio of cadmium ion with variable initial concentration was decreased in the following order : 50ppm > 100ppm > 200ppm > 300ppm. The optimum removal conditions of cadmium ion by Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 were initial concentration 50ppm, feeding velocity 30mL/hr.
The characteristics of aqueous lithium recovery by ion exchange were studied using three commercial cation exchange resins: CMP28 (porous type strong acid exchange resin), SCR-B (gel type strong acid exchange resin) and WK60L (porous type weak acid exchange resin). CMP28 was the most effective material for aqueous lithium recovery; its performance was even enhanced by modifying the cation with $K^+$. A comparison to $Na^+$ and $H^+$ form resins demonstrated that the performance enhancement is reciprocally related to the electronegativity of the cation form. Further kinetic and equilibrium isotherm studies with the $K^+$ form CMP28 showed that aqueous lithium recovery by ion exchange was well fitted with the pseudo-second-order rate equation and the Langmuir isotherm. The maximum ion exchange capacity of aqueous lithium recovery was found to be 14.28 mg/g and the optimal pH was in the region of 4-10.
The properties of polygalacturonase by Ganoderma lucidum in liquid culture were investigated. The enzyme was composed of an endo- and an exo-polygalacturonase. The endo- and exo-polygalacturonase were purified approximately 56 and 9.2-fold, respectively, through ammonium sulfate fractionation, gel filtration on Biogel P-100, anion exchange chromatography on DEAE-cellulose, gel chromatography on Sephadex G-150 and re-gel chromatography on Sephadex G-150. The endo- and exo-polygalacturonase had higher affinity for apple pectin than for citrus pectin or pectic acid. The Km values of the endo- and exo-polygalacturonase for apple pectin, determined on the Lineweaver-Burk plot, were 1.44 and 10.6 mg $ml^{-1}$ for apple pectin, respectively. Purified endo-polygalacturonase was found to be homogeneous electrophoretically and had a molecular weight of 54,000 estimated on SDS polyacrylamide gel. The optimal pH for the activity of the enzymes was 4.0. The endo- and exo-polygalacturonase were stable in the pH range of 4.0 to 6.0 and 3.5 to 5.5, respectively. The optimal temperatures of the endo- and exo-polygalacturonase were 40 and $60^{\circ}C$, respectively. The exo-polygalacturonase was more resistant to heat than the endo-polygalacturonase, requiring heating for 40 min at $80^{\circ}C$ for complete inactivation. The activity of the endo-polygalacturonase was increased by $Ca^{++}$ and $Mn^{++}\;ions$, while that of the exo-polygalacturonase was increased by $Ca^{++}\;ion$ only, and was not affected by $Mn^{++}\;ion$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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