1-Deoxynojirimycin which is a potent intestinal ${\alpha}$-glucosidase inhibitor was purified from the culture broth by ion exchange chromatography, Sephadex LH20 column chromatography, TSK gel chromatography and HPLC respectively. Acute toxicity of 1-deoxynojirimycin, which was loaded through the oral as dose of 200mg/kg, was investigated in IRC mouse. None of the tested IRC mice were not dead and increase of body weight showed also the same results in comparison with control mice. The antimicrobial susceptibility of 20 pathogenic strains against 3 antidiabetic compounds (1-deoxynojirimycin, AO-128, acarbose) were obtained by agar dilution method. All of the three antidiabetic compounds has very weak antimicrobial activity (MIC>100$\mu\textrm{g}$/ml).
Glyoxalase I (Ee 4.4.1.5, lactoylglutathione lyase) from Chlamydomonas reinhardtii was purified to homogeneity by ammonium sulfate fractionation, anion-exchange chromatography, hydrophobic interaction chromatography, and affinity chromatography on S-hexylglutathione agarose. The purified enzyme was judged to be homogeneous on SDS-PAGE, and consisted of a single polypeptide chain with a relative molecular weight of 24,000. The enzyme was most active at $40^{\circ}C$ and pH 7.5. It was catalytically most active with methylglyoxal as substrate. A number of properties of the Chlamydomonas glyoxalase I enzyme, such as substrate specificity, molecular mass, kinetic parameters, pi, metal ion effect, have been determined and compared with those reported for preparations from other sources. It had somewhat different characteristics from mammalian enzymes.
Iron is an essential nutrient for most organisms, which supplied to them in a protein-iron complex known as ferritin. Ferritins are multimeric proteins those are consisted of spherical shell of 24 subunits defining a cavity of about 8nm in diameter. Soluble form of ferritin was separated from disrupted cells, followed by silica powder adsorption. Ferritin was recovered from silica-poweder by distiiled water, which was applied to DEAE anion exchage chromatography. Collected fractions from the DEAE column were assayed to gain the amount and the purity of ferritin by using GF-HPLC.
An angiotensin converting enzyme (ACE) inhibitory substance was isolated and purified from Lycium chinense Miller. A crude water extract of Lycium chinense Miller was prepared by adding it to water shaking at $25^{\circ}C$ for 1 hr, followed by centrifugation at 8000 ${\times}$ g for 30 min. The crude extract was then filtered using YM-3 and YM-1 membranes. An ACE inhibitor was isolated using consecutive chromatographic methods including: ion exchange chromatography, gel permeation chromatography, and FPLC. The inhibitor was identified to have a molecular mass of 862 daltons by mass spectrometry.
본 연구는 중금속에 의한 생체내 독성기전을 연구하고자 흰쥐간의 상층액에서 카드뮴과 잘 결합하는 HMWP들을 분리, 정재하고 나아가 생화학적 특성을 밝히고 이단백질이 카드뮴에 의해 생성되는 것인지 아니면 간의 기존 단백질인지를 밝히고자 함을 연구의 목적으로 하였다. CdCl %2 (3mg/kg body wt.)을 3일간 ip injection시킨 후 흰쥐의 간을 적출하고 균질화하여 원심분리한 crude extract를 직접 Sephacryl S-100에 흡착시켜 10mM phosphate buffer(pH 7.0)으로 용출시켰다. 용출된 fraction tube를 UV spectrometer로 흡광도를 측정하고 atomic absorption spectrophotometer로 카드뮴량을 측정하여 카드뮴량이 높은 분획을 모아서 ion exchange column chromatography(DEAE-Sepharose)에 흡착시켜 염농도 구배로 chromatography를 실시하고, 음이온 교환수지에서 흡착되지 않고 용출된 분획을 ultrafiltration으로 농축시킨 후 S-Sepharose에 흡착시켜 염농도 구배로 chromatography를 실시한 결과 두 종류의 카드뮴 결합 단백질(Cd-BP)를 분리, 정제하였다.
Lactoferrin was isolated from the colostrum of Korean native cow by using several purification steps such as batch extraction, ion exchange chromatography, gel filtration chromatography and affinity chromatography. Other whey protein components that having similar molecular weight and affinity to lactoferrin were gradually removed from crude Korean native cow's lactoferrin during the purification steps. The amount of lactoferrin collected from a liter of Korean native cow's colostrum was 65mg and the recovery rate was 29.4%. The molecular weight of the purified Korean native cow's lactoferrin was estimated approximately 81,000dalton.
A partially purified preparation of L-galactonolactone oxidase which catalyzes the last step of L-ascorbic acid biosynthesis was obtained from Saccharomyces cerevisiae ATCc 26787. The purification procedures included Triton X-100 treatment, protamine sulfate precipitation, ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sepharose CL-6B ion exchange chromatography, Sephadex G-150 gel filtration chromatography, and Phenyl-Sepharose CL-4B hydrophobic interaction chromatography. The optimum temperature for the enzyme activity was about $34^{\circ}C$ and the optimum pH was 6.8-7.0. The substrate specificity was confined to L-aldonolactones, L-galactono-1,4-lactone and L-gulono-1,4-lactone. An apparent Km value of 0.294mM with L-galactono-1,4-lactone as a substrate was found. By comparing the substrate specificities of this enzyme with those of isofunctional enzymes of higher plants and animals, it becomes evident that the enzyme of S. cerevisiae ATCC 26787 is rather similar to the L-gulonolactone oxidase of animals than the galactonolactone dehydrogenase of higher plants.
To isolate a calcium-binding peptide from chlorella protein hydrolysates, chlorella protein was extracted and hydrolyzed using Flavourzyme, a commercial protease. The degree of hydrolysis and calcium-binding capacity were determined using trinitrobenzenesulfonic acid and orthophenanthroline methods, respectively. The enzymatic hydrolysis of chlorella protein for 6 hr was sufficient for the preparation of chlorella protein hydrolysates. The hydrolysates of chlorella protein were then ultra-filtered under 5 kDa as molecular weight. The membrane-filtered solution was fractionated using ion exchange, reverse phase, normal phase chromatography, and fast protein liquid chromatography to identify a calcium-binding peptide. The purified calcium-binding peptide had a calcium binding activity of 0.166 mM and was determined to be 700.48 Da as molecular weight, and partially identified as a peptide containing Asn-Ser-Gly-Cys based on liquid chromatography/electrospray ionization tandem mass spectrum.
본 연구에서는 HPLC-ICP-MS를 이용하여 여러 식품에 포함된 셀레늄의 화학종을 분리하고 정량 하였다. 양이온 교환 크로마토그래피를 사용할 때에 무기셀레늄 화학종의 분리는 효율적이나 유기셀레늄 화학종은 분리가 완전하지 못한 반면, 역상 이온쌍 크로마토그래피에서는 유기와 무기 셀레늄 화학종들을 모두 잘 분리 할 수 있었다. $C_8$ 컬럼($Symmetryshield^{TM}\;RP_8$, 3.5 ${\mu}m$, $4.6{\times}150$ mm)을 이용하여 최적조건(이동상; 5% 메탄올, ion-pairing reagent; 0.05% nonafluorovaleric acid, 흐름속도; 0.9 mL $min^{-1}$)하에서 표준물 Se(IV), Se(VI), SeCys (selenocystein), SeMet (selenomethionine), Se-M-C (seleno methyl cystein)를 성공적으로 분리하였다. 시료에서의 셀레늄화학종의 추출은 마이크로파를 이용한 추출과 효소(protease I, trypsin, protease XIV)를 이용한 추출을 사용하였는데 시료에 따라 서로 다른 효율과 결과를 보여주었다. 식물성 시료인 마늘 시료는 protease I, 동물성 시료인 돼지고기와 고등어 시료는 protease I + trypsin이 가장 효율적인 추출을 보여주었다. 각 시료의 최적 조건을 선택하여 셀레늄 화학종을 추출하고 분리 정량한 결과 이들에는 주로 무기 Se, SeCys, SeMet이 수 ${\mu}g$$g^{-1}$ 내지 수 십 ${\mu}g$$g^{-1}$ 수준으로 포함되어 있음을 알 수 있었다.
핵전이에 의해 형성된 잡종의 유도 배양액으로부터 glucoamylase를 정제하고 몇몇의 효소 특성을 조사하였다. 효소는 76배 정제하였고, ammonium sulfate fractionation, Sephadex G-150 gel permeation chromatography 그리고 DEAE-Sephadex A-50 ion exchange chromatography의 순서 배양액으로부터 정제한 결과 전반적인 수율은 16%를 나타내었다. SDS-polyacrylamide gel electrophoresis와 Sephadex G-150 gel permeation chromatography에 의하여 정제된 glucoamylase의 분자량을 측정한 결과 57.5 kDa를 나타내었으며, 정제된 효소의 최적 pH와 온도는 각각 5.0과 $40^{\circ}C$로 나타났다. 또한 가용성 전분에 대한 Km값은 2.6 mg/ml을 나타내었으며, 정제된 효소는 $Ca^{2+}$, EDTA, $Co^{2+}$, $Mg^{2+}$, 그리고 $Mn^{2+}$의 존재하에 활성이 중진됨을 알수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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