Recent advances in intracytoplasmic sperm (ICSI) and round spermatid injection (ROSI) would provide exciting opportunities not only for the male infertility but also for studying gamete physiology during fertilization and early development. Furthermore, intracytoplasmic sperm injection could be used to produce transgenic animal (Perry et al., 1999). However, it is not clear in the fertilization processes in mammalian oocytes following intracytoplasmic injection of spermatozoon, isolated sperm head or round spermatid. (omitted)
Objective: The purpose of this study was to evaluate outcome of intracytoplasmic sperm injection (ICSI) using epididymal and testicular sperm in patients with azoospermia. Methods: From March, 1993 to May, 1999, a retrospective clinical analysis was done of a total of 140 cycles in 112 patients who underwent ICSI. Subjects were divided into three groups: ejaculated-ICSI group included 42 cycles in 34 patients with ejaculated sperm who underwent ICSI due to severe oligospermia and past history of failed or poor fertilization in the previous in vitro fertilization and embryo tranfer (IVF-ET) cycles, microsurgical epididymal sperm aspiration and intracytoplasmic sperm injection (MESA-ICSI) group included 50 cycles in 42 patients with congenital absence of the vas deferens (CAVD) or unreconstructable obstructive azoospermia and testicular sperm extraction and intracytoplasmic sperm injection (TESE-ICSI) group included 48 cycles in 36 patients with no spermatozoa which can be retrieved from epididymis or non-obstructive azoospermia. Results: Normal two-pronuclear fertilization rates were similar in three groups: 64.4% for ejaculated-ICSI group, 59.4% for MESA-ICSI group and 60.4% for TESE-ICSI group. The pregnancy rates were 26.2%, 26.0% and 25.0% respectively. There were no significant differences in the fertilization, cleavage, and clinical pregnancy rates among ICSI cycles using ejaculated, epididymal and testicular sperm. Conclusion: Epididymal and testicular sperm obtained in azoospermic patients can fertilize oocyte successfully and may lead to be similar fertilization rates and clinical pregnancy rates to ejaculated sperm.
Kim, Hyung Jun;Yoon, Hye Jin;Jang, Jung Mi;Oh, Hwa Soon;Lee, Yong Jun;Lee, Won Don;Yoon, San Hyun;Lim, Jin Ho
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제41권1호
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pp.9-14
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2014
Objective: The aim of this study was to evaluate the efficiency of the intracytoplasmic morphologically selected sperm injection (IMSI) technique compared with conventional ICSI and previous ICSI attempts in oligo-astheno-teratozoospermia (OAT) patients. Methods: The sperms were selected under high magnification ($6,600{\times}$) and used to induce fertilization in previous ICSI patients by IMSI. These results were compared with previous conventional ICSI cycles in patients with OAT infertility. Results: These results demonstrated no significant difference in the fertilization rate between IMSI and previous ICSI cycles (67.7% vs. 65.0%). However, the pregnancy and implantation rates with IMSI were significantly higher than those of the ICSI cycles (33.3% vs. 12.5% and 14.6% vs. 5.4%, respectively; p<0.05). The miscarriage rate among pregnant patients (18.2% vs. 37.5%) showed no statistically significant difference between groups. Conclusion: Compared to conventional ICSI, this study found that IMSI increased the IVF-ET success rates in patients with OAT.
Shim, Sang Woo;Kim, Young Ha;Lee, Hoon Taek;Shim, Hosup
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제21권3호
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pp.358-363
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2008
The intracytoplasmic sperm injection (ICSI) procedure has recently been utilized to produce transgenic animals and may serve as an alternative to the conventional pronuclear microinjection in species such as pigs whose ooplasm is opaque and pronuclei are often invisible. In this study, the effects of sperm membrane disruption and electrical activation of oocytes on in vitro development and expression of transgene green fluorescent protein (GFP) in ICSI embryos were tested to refine this recently developed procedure. Prior to ICSI, sperm heads were treated with Triton X-100+NaCl or Triton X-100+NaCl+NaOH, to disrupt membrane to be permeable to exogenous DNA, and incubated with linearized pEGFP-N1 vector. To induce activation of oocytes, a single DC pulse of 1.3 kV/cm was applied to oocytes for $30{\mu}sec$. After ICSI was performed with the aid of a micromanipulator, in vitro development of embryos and GFP expression were monitored. The chemical treatment to disrupt sperm membrane did not affect the developmental competence of embryos. 40 to 60% of oocytes were cleaved after injection of sperm heads with disrupted membrane, whereas 48.6% (34/70) were cleaved without chemical treatment. Regardless of electrical stimulation to induce activation, oocytes were cleaved after ICSI, reflecting that, despite sperm membrane disruption, the perinuclear soluble sperm factor known to mediate oocyte activation remained intact. After development to the 4-cell stage, 11.8 (2/17, Triton X-100+NaCl+NaOH) to 58.8% (10/17, Triton X-100+NaCl) of embryos expressed GFP. The expression of GFP beyond the stage of embryonic genome activation (4-cell stage in the pig) indicates that the exogenous DNA might have been integrated into the porcine genome. When sperm heads were co-incubated with exogenous DNA following the treatment of Triton X-100+NaCl, GFP expression was observed in high percentage (58.8%) of embryos, suggesting that transgenic pigs may efficiently be produced using ICSI.
During fertilization, morphological and molecular events in male and female chromatin are precisely controlled in time. However, little information is available on onset of pronuclear formation and first S-phase entry in the pig following intracytoplasmic sperm injection. To assess species specific paternal effect on the pronuclear formation and initiation of first S-phase in the pig, we examined time of onset of male and female pronuclear formation and onset of DNA synthesis in the oocytes following pig or mouse sperm injection. (omitted)
To get insight into the nature of foreign mitochondria and syngamy during mammalian fertilization we compared fertilization processes in porcine oocytes following microinjection of porcine or mouse spermatozoa. Pronuclear movement, sperm mitochondria, and DNA synthesis were imaged with propidium iodide, mitotracker, and BrdU under confocal laser scanning microscope. Intracytoplasmic injection of either porcine or mouse spermatzoon activated porcine oocytes without additional parthengenetic stimulation. Foreign mitochondria in either mouse or porcine sperm midpiece were introduced into porcine oocytes following sperm injection, but rapidly disappeared from the actively developing porcine oocytes. BrdU experiment showed new DNA synthesis in porcine oocytes following injection of mouse spermatozoon or sperm head. At 24 h after injection of mouse isolated sperm head or a spermatozoon, mitoic metaphase was seen in oocyte, but they did not go to normal cell division (Table). These results suggest that pronuclear formation, foreign mitochondria disruption, DNA synthesis and syngamy formation during fertilization are not species specific processes.(Table Omitted).
Moubasher, Alaa El din-Abdel Aal;Taha, Emad Abdelrehim;Elnashar, Ehab Mohamed;Maged, Ahmed Abdel Aal Abdel;Zahran, Asmaa Mohamed;Sayed, Heba Hassan;Gaber, Hisham Diab
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제48권1호
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pp.61-68
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2021
Objective: This study was conducted to investigate the relationship of semen parameters in samples used for intracytoplasmic sperm injection (ICSI) with fertilization and pregnancy rates in infertile couples. Methods: In this prospective study of Infertile couples with male factor infertility that had undergone ICSI, fractions of the same semen samples obtained for microinjection (to ensure the best predictability) were evaluated to determine the semen parameters and sperm DNA fragmentation index (DFI) on the day of oocyte recovery. Results: In total, 120 couples completed the study and were subdivided into fertilized (n=87) and non-fertilized couples (n=33). The fertilized couples were further classified into pregnant (n=48) and non-pregnant (n=39) couples. Compared to non-fertilized and non-pregnant couples, fertilized and pregnant couples showed statistically significantly higher sperm viability and percentage of normal sperm morphology, as well as significantly lower sperm DFI values. A receiver operating characteristic curve analysis of data from the 120 ICSI cycles showed that sperm viability, normal sperm morphology percentages, and sperm DFI were significant prognostic indicators of fertilization at cutoff values of 40%, 7%, and 46%, respectively. A sperm DFI of 46% showed sensitivity and specificity of 95% and 90%, respectively, for predicting fertilization, and no clinical pregnancies occurred in couples with a sperm DFI above 46%. Conclusion: Semen parameters from the ICSI day sample, especially sperm viability, normal morphology, and DFI, had an impact on fertilization and pregnancy outcomes in ICSI cycles.
Objective: This study investigated the mRNA expression of gamma-aminobutyric acid (GABA) receptors in the sperm of oligoasthenoteratozoospermic (OAT) and teratozoospermic (TER) men compared to normozoospermic (NOR) men, as well as the relationships between GABA receptor expression and sperm parameters, fertilization rate, and embryo quality. Methods: The mRNA expression of GABA A-α1 and GABA B-R2 receptors in sperm was examined using reverse transcription-polymerase chain reaction in three groups of patients: NOR (n=32), OAT (n=22), and TER (n=45). The fertilization rate and embryo quality were assessed in 35 patients undergoing intracytoplasmic sperm injection (ICSI; 10 NOR, 10 OAT, and 15 TER men). Results: OAT men had significantly higher mRNA expression of GABA A-α1 and GABA B-R2 receptors in sperm than NOR men; however, the difference between TER and NOR men was not significant. High levels of these receptors were significantly correlated with low sperm concentration, motility, and morphology, as well as the rate of good-quality embryos (GQEs) at the cleavage stage after ICSI. Patients whose female partners had a >50% GQE rate at the cleavage stage had significantly lower levels of GABA A-α1 receptor expression than those whose partners had a ≤50% GQE rate. Conclusion: Our findings indicate that mRNA levels of GABA receptors in human sperm are correlated with poor sperm quality and associated with embryo development after ICSI treatment. The GABA A-α1 receptor in sperm has a stronger relationship with embryo quality at the cleavage stage than the GABA B-R2 receptor.
Objectives: This study was to investigate the fertilization rate after intracytoplasmic sperm injection (ICSI) or partial zona dissection (PZD) of human and hamster sperm into hamster oocyte in in vitro fertilization (IVF). In addition, the possibility of clinical application was evaluated by the comparison of usefulness and difference of these method. Materials and Methods: Hamster immature oocytes were obtained from oviducts superovulated by PMSG and hCG, and hamster sperms were obtained from epididymis. The freezed human sperms were thawed before use. Fertilization were confirmed by two pronuclei, one pronucleus, swollen sperm head or/and two polar bodies at $7{\sim}8$ hour after ICSI or PZD. Results: The fertilization rates after ICSI and PZD of human sperm to hamster oocyte were 3.6%, 64.2%,73.6%, and 55.6% for negative control, positive control, ICSI, and PZD respectively, suggesting that ICSI only showed improved fertilization rate (p<0.01). The fertilization rates after ICSI and PZD of hamster sperm to hamster oocyte were 11.1%, 51.2%, 39.6%, and 72.7% for negative control, positive control, ICSI, and PZD respectively, suggesting that PZD only showed improved fertilization rate (p<0.01). PZD showed significantly higher fertilization rate than ICSI (p<0.05). Conclusions: As for the fertilization rate by ICSI and PZD using hamster oocyte in IVF, ICSI technique was considered to be more useful for human sperm and PZD technique for hamster sperm. Therefore, ICSI technique was considered more appropriate for experimental application using human sperm and hamster oocyte.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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