An intracellular protease form cells of Pseudomonas carboxydovorans DSM 1227 grown on carbon monoxide was purified 57-fold in six steps to homogeneity with a yield of 4.3% using azocoll as a substrate. The molecular weight of the enzyme was determined to be 150,000. Sodium dodecyl sulfate-gel electrophoresis revealed the purified enzyme to be a dimer with two identical subunits of molecular weight 72,000. The enzyme was stimulated by $Mg^{2+}$ but was inhibited completely by $Cd^{2+}$$Fe^{2+}$$Hg^{2+}$, and $^Zn{2+}$ The enzyme activity was also inhibited by EDTA, EGTA, phenylmethylsulfonyl fluoride, and phenyl glyoxal, but was increased by 1-ethyl-3(dimethyl aminopropyl fluoride, and phenyl glyoxal, but was increased by 1-ethyl-3(dimethyl aminopropyl)carbodiimide, iodoacetamide and dithiothereitol. The optimal pH and temperature for the enzyme reaction were found to be 7-8 and 50.deg.C, respectively. Casein and bovine serum albumin were hydrolyzed by the enzyme, but carbon monoxide dehydrogenase was not.
An intracellular protease from cells of Pseudomonas carboxydohydrogena grown on nutrient broth was purified to better than 95% homogeneity in five steps using azocaseine as a substrate. The molecular weight of the native enzyme was determined to be 125, 000. Sodium dodecyl sulfate-gel electrophoresis revealedat least two non-identical subunits of molecular weight 70, 000 and 56, 000. The enzyme activity was completely ingibited by phenylmethylsulfonyl fluoride and diisopropyl fluorophosphate. The enzyme was also inhibited by $Mg^{2+}$ , $Zn^{2+}$ , $Cd^{2+}$, $Cu^{2+}$ , and $Fe^{2+}$ , but was stimulated by iodoacetamide. Maximal reaction rate of the enzyme was observed at pH8.0 and 30.deg.C. The isoelectric point of the enzyme was found to be 7.5. The enzyme was unable to hydrolyze carbon monoxide dehydrogenase.
Azocasein을 기질로 사용하여 nutrient broth에서 성장한 Pseudomonas carboxydovorans로부터 다섯 단계의 순화 과정을 거쳐 68배 순화된 세포내 가용성 단백질 가수 분해 효소를 얻었다. Pyruvate나 succinate, acetate, 또는 일산화탄소를 이용하여 성장한 세균들은 이 효소의 활성을 나타내지 않았다. 순화된 효소의 크기는 약 53,000이었고, 한개의 polypeptide로 구성되어 있었다. 이 효소는 serinerp통의 단백질 가수분해 효소로 $Cd^{2+}, Cu^{2+}, Hg^{2+}$, 등의 2가 양이온과 EGTA에 의해 활성이 완전히 억제되었고 iodoacetamide에 의해 활성이 증가되었다. 이 효소는 pH 8.0과 $50^{\circ}C$에서 최대 활성을 나타내었으며, 일산화탄소 산화효소를 가수분해 시키지 못하였다.
In this study, a 107 kDa protease from psychrophilic Janthinobacterium lividum PAMC 26541 was purified by anion-exchange chromatography. The specific activity of the purified protease was 264 U/mg, and the overall yield was 12.5%. The J. lividum PAMC 25641 protease showed optimal activity at pH 7.0-7.5 and $40^{\circ}C$. Protease activity was inhibited by PMSF, but not by DTT. On the basis of the N-terminal sequence of the purified protease, the gene encoding the cold-adapted protease from J. lividum PAMC 25641 was cloned into the pET-28a(+) vector and heterologously expressed in Escherichia coli BL21(DE3) as an intracellular soluble protein.
Epithin/PRSS14 is a membrane serine protease that plays a key role in tumor progression. The protease exists on the cell surface until its ectodomain shedding, which releases most of the extracellular domain. Previously, we showed that the remaining portion on the membrane undergoes intramembrane proteolysis, which results in the liberation of the intracellular domain and the intracellular domain-mediated gene expression. In this study, we investigated how the intramembrane proteolysis for the nuclear function is initiated. We observed that ectodomain shedding of epithin/PRSS14 in mouse breast cancer 4T1 cells increased depending on environmental conditions and was positively correlated with invasiveness of the cells and their proinvasive cytokine production. We identified selenite as an environmental factor that can induce ectodomain shedding of the protease and increase C-C motif chemokine ligand 2 (CCL2) secretion in an epithin/PRSS14-dependent manner. Additionally, by demonstrating that the expression of the intracellular domain of epithin/PRSS14 is sufficient to induce CCL2 secretion, we established that epithin/PRSS14-dependent shedding and its subsequent intramembrane proteolysis are responsible for the metastatic conversion of 4T1 cells under these conditions. Consequently, we propose that epithin/PRSS14 can act as an environment-sensing receptor that promotes cancer metastasis by liberating the intracellular domain bearing transcriptional activity under conditions promoting ectodomain shedding.
계배 근원세포의 배양 배지에 calcium ionophore A23187이나 EGTA를 배양 24시간에 첨가함으로서 초래된 세포내 칼슘 농도의 변화는 근원세포의 분화과정에 상당한 영향을 미쳤다. 배양 24시간에 A23187이나 EGTA를 첨가한 후 배양 48시간, 72시간, 및 96시간에 각각 세포를 [35S]methionine으로 1시간 표지시킨 후 수확하여 2차원 전기영동법으로 단백질을 분리시켰을 때, 일부 단백질은 배양 조건에 따라 합성 양상을 달리함을 보였다. 배양 24시간에 처리한 A23187과 calcium-activated neutral protease는 대조군에 비해 세포융합을 촉진시켰으나 동일 시기에 처리된 phosphoprotein을 정량함으로써 조사하였을 때, A23187이 배양 초기에는 대조군에 비해 약간 이 효소의 활성도를 높이는 효과를 보였으나 세포융합이 완성된 시기인 96시간에는 대조군에 비해 활성도를 높이는 효과를 보였으나 세포융합이 완성된 시기인 96시간에는 대조군에 비해 활성도의 차이를 나타내지 않았다. A23187 및 calcium-activated neutral protease에 의한 세포융합의 촉진, 그리고 A23187에 의한 protein kinase C 활성도의 증가가 모두 근원세포의 융합이 활발히 진행되는 시기인 배양 48-72 시간에 관찰됨을 볼 때, 세포내 칼슘의 농도는 protein kinase C 및 calcium-activated neutral protease와 상호연관을 가지면서 세포분화에 관여하는 것으로 사료된다.
This study was designed to evaluate the mechanism by which reactive nitrogen intermediates (RNI) induced the cytotoxicity of human doparminergic neuroblastoma SH-SY5Y cells. 3-Morpholino-sydnonimine (SIN-l), a donor of peroxynitrite (ONOO) and sodium nitroprusside (SNP), a donor of nitric oxide (NO) induced cell detachment and apoptotic death, as characterized by chromatin condensation, the ladder pattern fragmentation of genomic DNA and morphological nuclear changes. SIN-l also induced the activation of caspase 3-like protease in a time-dependent manner. Exogenous antioxidants, such as reduced glutathione (GSH), N-acetylcysteine (NAC), and selenium protected the cells from apoptotic death and reduced the activation of caspase 3-like protease by SIN-1. Furthermore, SIN-l directly reduced the intracellular levels of glutathione. Taken together, these data suggested that RNI including NO and peroxynitrite decrease the concentration of intracellular antioxidant such as GSH, which lead to the apoptotic death of human neuroblastoma SH-SY5Y cells.
Recent studies have implicated reactive oxygen species (ROS) as determinants of the pathological pain caused by the activation of peripheral neurons. It has not been elucidated, however, how ROS activate the primary sensory neurons in the pain pathway. In this study, calcium imaging was performed to investigate the effects of NaOCl, a ROS donor, on the intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]i$) in acutely dissociated dorsal root ganglion (DRG) neurons. DRG was sequentially treated with 0.2 mg/ml of both protease and thermolysin, and single neurons were then obtained by mechanical dissociation. The administration of NaOCl then caused a reversible increase in the $[Ca^{2+}]i$, which was inhibited by pretreatment with phenyl-N-tertbuthylnitrone (PBN) and isoascorbate, both ROS scavengers. The NaOCl-induced $[Ca^{2+}]i$ increase was suppressed both in a calcium free solution and after depletion of the intracellular $Ca^{2+}$ pool by thapsigargin. Additionally, this increase was predominantly blocked by pretreatment with the transient receptor potential (TRP) antagonists, ruthenium red ($50\;{\mu}M$) and capsazepine ($10\;{\mu}M$). Collectively, these results suggest that an increase in the intracellular calcium concentration is produced from both extracellular fluid and the intracellular calcium store, and that TRP might be involved in the sensation of pain induced by ROS.
Thrombin is a serine protease that participates in a variety of biological signaling through protease-activated receptors. Intestinal myofibroblasts play central roles in maintaining intestinal homeostasis. In this study, we found that thrombin-induced apoptosis is mediated by the calcium-mediated activation of cytosolic phospholipase A2 in the CCD-18Co cell. Thrombin reduced cell viability by inducing apoptosis and proteinase-activated receptor-1 antagonist attenuated thrombin-induced cell death. Endogenous ceramide did not affect the cell viability itself, but a ceramide-mediated pathway was involved in thrombin-induced cell death. Thrombin increased intracellular calcium levels and cytosolic phospholipase A2 activity. The ceramide synthase inhibitor Fumonisin B1, intracellular calcium chelator BAPTA-AM, and cytosolic phospholipase A2 inhibitor AACOCF3 inhibited thrombin-induced cell death. Thrombin stimulated arachidonic acid release and reactive oxygen species generation, which was blocked by AACOCF3, BAPTA-AM, and the antioxidant reagent Trolox. Taken together, thrombin triggered apoptosis through calcium-mediated activation of cytosolic phospholipase A2 in intestinal myofibroblasts.
Among the AAA+ proteases in bacteria, FtsH is a membrane-bound ATP-dependent metalloprotease, which is known to degrade many membrane proteins as well as some cytoplasmic proteins. In the intracellular pathogen Salmonella enterica serovar Typhimurium, FtsH is responsible for the proteolysis of several proteins including MgtC virulence factor and MgtA/MgtB Mg2+ transporters, the transcription of which is controlled by the PhoP/PhoQ two-component regulatory system. Given that PhoP response regulator itself is a cytoplasmic protein and also degraded by the cytoplasmic ClpAP protease, it seems unlikely that FtsH affects PhoP protein levels. Here we report an unexpected role of the FtsH protease protecting PhoP proteolysis from cytoplasmic ClpAP protease. In FtsH-depleted condition, PhoP protein levels decrease by ClpAP proteolysis, lowering protein levels of PhoP-controlled genes. This suggests that FtsH is required for normal activation of PhoP transcription factor. FtsH does not degrade PhoP protein but directly binds to PhoP, thus sequestering PhoP from ClpAP-mediated proteolysis. FtsH's protective effect on PhoP can be overcome by providing excess ClpP. Because PhoP is required for Salmonella's survival inside macrophages and mouse virulence, these data implicate that FtsH's sequestration of PhoP from ClpAP-mediated proteolysis is a mechanism ensuring the amount of PhoP protein during Salmonella infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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