Forest medicinal resources, which constitute one of the non-timber forest products, have been regarded as healthy and highly valued products. To meet the increasing demand of the medicinal resources, it is necessary to improve the propagation methods of medicinal plants. In vitro propagation not only allows an opportunity for propagating plants in large numbers but also allows for enhancing the quality and quantity of the desired functional component of a plant by altering the growth factors, such as medium, carbon source, and plant growth regulators influence plant. There have been several studies of in vitro propagation methods, such as axillary bud culture, shooting, and embryogenesis, on Kalopanax septemlobus, Eleutherococcus sessiliflorus, Hovenia dulcis, and Schisandra chinensis in Korea between from 2000 through 2010. Furthermore, there have been attempts to proliferate callus and plantlets for producing useful natural compounds by using bioreactors. Here, we provide an account of the in vitro propagation methods of medicinal trees in Korea based on a review of several micropropagation studies.
Mass production of forest medicinal plants is related to quality control of raw medicinal materials. Plant tissue culture is an important technology to produce high-quality plant materials. Numerous factors are reported to influence the success of in vitro regeneration of medicinal plants. Embryogenesis is known to be the most effective techniques and it has developed in some medicinal plant species. Various in vitro cultural condition for direct and/or indirect somatic embryogenesis systems have developed in Epimedium koreaum, Bupleurum falcatum, Paeonia lactiflora, Chrysanthemum zawadskii, Houttuynia cordata etc. In this study, we provide the present statue and information of in vitro propagation techniques that is able to apply as an efficient system for rootstock propagation system of forest medicinal plants.
Heloniopsis orientalis (Liliaceae) is an important horticultural crop native to Korea. Under natural conditions, germination is poor and plant growth is delayed. Therefore, we have developed a vegetative propagation method to produce plants with vigorous growth characteristics via tissue culture. The regenerated shoots were then initiated directly from leaf explants on an MS medium containing either 0.5 to 2.0 mg/L 2,4-D or 1.0 to 3.0 mg/L BA. Healthy plantlets with adventitious roots were formed on the medium supplemented with 1.0 mg/L BA (81%). BA triggered callus initiation without caulogenesis or rhizogenesis, and callus formation was better on the half-strength MS medium than on the full-strength medium. This in vitro propagation protocol will be useful for conservation, as well as for mass propagation.
Pear (Pyrus spp.) is a typical fruit and grown in the temperate climate regions throughout the world. Development of appropriate methods for in vitro propagation and root induction are important to increase the production rate and plant quality rapidly. This study was conducted to find the most appropriate media conditions for in vitro propagation and rooting of three pear cultivars, 'Barttlett', 'BaeYun No.3' and 'Oharabeni'. In vitro propagation was induced on Murashige and Skoog medium (MS) with 2.0 mg/L N6-benzyladenine (BA) and 0.2 mg/L indole-3-butyric acid (IBA) medium. For root induction of these cultivars, the shoot explants of the propagated plants were cultured on two different media containing 1/2 MS medium containing 0.2 mg/L IBA with 15 g/L Sucrose (Rooting Medium 1, RM1) and 1/4 Linsmaier and Skoog medium (LS) medium containing 1 mg/L IBA and 1 mg/L NAA hormone with 7.5 g/L glucose (Rooting Medium, RM2) and after 2 weeks, the plants on the RM2 medium are transferred on RM1 medium (RM2 condition). After nearly seven weeks, percentage of rooting formation were 22.2% in RM1 and 30% in RM2 conditions for Barttlett and 70% in RM1 and 60% in RM2 conditions for Oharabeni cultivars. No differences in these cultivars were observed between RM1 and RM2 conditions. However, BaeYun No.3 cultivar was observed 0% in RM1 and 72.7% in RM2 conditions. This study will help to propagation and root induction of in vitro plants for various pear cultivars.
Micropropagation is an alternative mean of propagation that can be employed in mass multiplication of plants in relatively shorter time. Recent modern techniques of propagation have been developed which could facilitate large scale production of true-to-type plants and for the improvement of the species using genetic engineering techniques in the next century. An overview on the in vitro propagation via meristem culture, regeneration via organogenesis and somatic embryogenesis is presented. The usefulness of the plants in commercial industry as well as propagation techniques, screening for various useful characteristics and the influence of different cultural conditions in the multiplication, rooting and acclimatization phases on the growth of tissue cultured plant discussed.
Zingiber officinale buds from the rhizomes were used to produce in vitro shoots. These explants produced the largest number of multiple shoots, 9.8 shoots per explant, when were cultured on MS (Murashige and Skoog 1962) medium supplemented with 2.0 mg/L benzyladenine (BA) and 2.0 mg/L indole butyric acid (IBA). This medium was also found to be suitable for in vitro propagation of other Zingiberaceae species: Alpinia conchigera, Alpinia galanga, Curcuma domestica, C. zedoaria and Kaempferia galanga. Both C. domestica and C. zedoaria produced more multiple shoots when were cultured in the liquid proliferation medium, MS medium containing 2.0 mg/L BA and 2.0 mg/L IBA. To maintain the in vitro plantlets of Zingiberaceae species, they were required to subculture every four weeks. After executing proper acclimatization protocol, in vitro plantlets of Alpinia galanga, A. conchigera, Curcuma domestica, C. zedoaria, Kaempferia galanga and Zingiber officinale could be successfully planted in the field with high percentage of survival.
An effective rapid propagation method was established through in vitro cultures of the medicinal plant, Cudrania tricuspidata. In vitro plantlets were obtained from in vitro germinated seeds. The various levels of cytokinins (BAP, Kinetin and TDZ) were tested on multiple shoot formation from plantlets. BAP (1.0 mg/l) treatment induced highest number of multiple shoots. Single shoot cultures gave higher initial shoot numbers than 5 shoots per culture. Among the various culture media, the shoot elongation was optimal on 2 MS basal medium without growth regulators. The IAA (2.0 mg/l) treatment induced highest number of roots. IBA (2.0 mg/l) treatment more promoted in vitro root growth than other concentrations. Rooted shoots were transferred directly to small pots with an artificial soil and successfully acclimatized.
Jae-young Song;Jung-yoon Yi;Mun-sup Yoon;Jung-ro Lee;Young-yi Lee
한국자원식물학회:학술대회논문집
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한국자원식물학회 2020년도 춘계학술대회
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pp.43-43
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2020
Plants regenerated from in vitro cultures are associated with chromosomal variations, which have been generally found in long-term culture. Reducing plant culture age is one of the ways to reduce genetic and epigenetic changes. The present study focused on the efficient in vitro propagation of lily cultivars and has intensified to speed up bulb propagation for cryopreservation. The multiplication process applied in this experiment uses starting material, which the newly small bulb formed from bulb-scales in two lily cultivars. The adventitious bulb from bulb-scale tissue cultured on three different media following Murashige and Skoog (MS) basal medium supplemented with 1 g/L Charcoal, MS medium containing 0.3 mg/L IAA and 0.4 mg/L BA hormone with or without Charcoal, respectively. After about seven weeks, there is little change in the number of newly propagated bulbs in small bulbs of the two media. Compared to the both mediums, the number of the propagated bulbs is increased 5 times in MS medium containing 0.3 mg/L IAA and 0.4 mg/L BA hormone without Charcoal. After about seven weeks, the results of the propagation showed that the number of the propagated bulbs is increased 5 times in MS medium containing 0.3 mg/L IAA and 0.4 mg/L BA hormone without Charcoal compared to the both mediums. The number of propagated bulbs ranged from 5 to 6 and 4 to 6 with an average of 5 in Tropicalpink and Greenstar cultivars, respectively. There is little change in the number of newly propagated bulbs in small bulbs of other media. The multiplication process applied in this study may save in vitro culture period and effort.
Park, Woo-Jin;Kang, Young-Min;Min, Ji-Yun;Park, Dong-Jin;Kim, Yong-Duck;Karigar, C.S.;Choi, Myung-Suk
한국약용작물학회지
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제12권5호
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pp.384-390
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2004
An in vtro nucellar polyembryo propagation method was established with mature seed of the Citrus junos Sieb. 7-8 nucellar polyembryos per seed were induced on MS basal medium without plant growth regulators. The polyembryos developed to complete plantlets on teatment with IBA. These shoots grew further in MS medium without plant growth regulators. Rooting of shoots occurred on MS medium supplemented with IBA. These plantlets were successfully transplanted to small plastic pot containing soil mixture. Somatic embryos were induced from nucellar polyembryo and maturation occurred spontaneously from proliferating cultures on MS medium without growth regulators. Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) marker analysis of in vitro and in vivo grown junos orange showed identical polymorphism indicative of their genetic stability. The RAPD polymorphism produced revealed same banding pattern in each regenerant. Hence, propagaton of junos orange by nucellalr polyembryos was efficient and produced in genetically stable plants under in vitro conditions.
Ko Jeong-Ae;Choi Jeong-Ran;Xudong He;Kim Hyun-Soon
한국자원식물학회지
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제19권3호
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pp.432-435
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2006
A rapid and mass propagation method for multiple shoots and plant regeneration using bulb scales of Muscari comosum var. plumosum were developed. In vitro different parts of bulb scale as explants were cultured on 11 kinds of MS (1962) media supplemented with various plant growth regulators to induce shoot and callus. A combination of 2.0 mg/L 6-BA and 2.0 mg/L IBA on MS medium was the most favorable and induced the highest production (80%) of shoot formation after 30 days. We also found that the middle part of bulb scale was the best for mass propagation of Muscari comosum var. plumosum of which production could reach 64.4%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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