The aim of this study was to investigate what components of porcine epididymal fluid (pEF) influences the nuclear maturation of porcine germinal vesicle oocytes. Porcine cumulus-oocytes complexes from follicles were cultured in TCM 199 containing pEF. After 48 h cultures, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. Maturation rate of oocytes was significantly increased in media supplemented with 10% pEF during in vitro maturation (IVM) than in those without pEF. When lipid component of pEF was removed by treating n-heptane, no significant difference was observed in maturation of oocytes between n-heptane treatrment and intact pEF group. However, the proportion of oocytes reaching at metaphase II (M II) was significantly (p<0.05) decreased in the oocytes cultured in media containing trypsin-treated pEF compared to those in media with intact pEF. When porcine GV oocytes were matured in the medium supplemented with intact pEF or pEF heated at $56^{\circ}C$ and $97^{\circ}C$, rates of oocytes remained at GV stage were 11.7%, 29.4% and 42.0%, respectively. However, there were no difference in proportion of oocytes reaching at MII stage among intact pEF group and $56^{\circ}C$ group. Present study suggests that 1) pEF contains an enhancing component(s) for nuclear maturation in vitro of oocytes, 2) protein(s) of pEF may be capable to promote nuclear maturation in vitro, and 3) enhancing component for nuclear maturation may consist of two factors, which are responsible for germinal vesicle breakdown (GVBD) and promotion of MII stage.
In viro fertilizatin is very important in both human clinical practice and animal breeding. However, the success rate of in vitro fertilization is not high. The purpose of this study ws to determine wheter in the vitro fertilization and culture of porcine oocyte using a hydrogel chamber were possible or not. Hydrogel chambers were made of polymerized 2-hydroxyethyl methacrylate. Matured follicular oocytes in Waymouth's medium and T L Hepes medium, tubal oocytes, and preincubated sperm in M199 medium were treansferred into the lumen of the hydrogel chambers. The chambers containing porcine oocytes and spermatozoa implanted into the mouse peritioneal cavity, and ova were examined after the recovery of the chambers at 84 hours after preservation start. The result was shown that fertilization and culture of porcine oocytes were successfully achieved inside of the hydrogel chamber.
본 연구는 보다 안정된 돼지 체외수정란 생산시스템 확립을 목적으로 체외성숙배양액 mNCSU-37, mNCSU-23 및 TCM-199 가 각각 미성숙 난포란의 체외성숙, 체외수정, 체외발달에 미치는 영향을 구명하기 위하여 수행하였다. 도축돼지의 난소에서 채취한 COCs를 10% pFF가 포함된 각각의 성숙배양액에서 최종동도가 1${\times}10^5/m{\ell}$ 의 농도로 체외수정 시킨 다음, NCSU-23 에서 체외발달을 유도한 결과는 다음과 같다. 1. TCM-199에서 성숙시킨 난자가 mNCSU-37 이나 mNCSU-23에서 성숙시킨 것보다 난핵포 붕괴율과 핵 성숙율에서 다소 낮은 경향을 보였으나 유의적인 차이는 아니었다. 2. 정자 침투율은 성숙배양액간 유의적인 차이를 나타내지 않았으나 웅성정핵 형성율은 mNCSU-37 에서 성숙시킨 난자가 88.0%로 TCM-199 에서 성숙시킨 것의 71.1%보다 유의적으로 높았다.(p<0.05). 3. 난분할율은 mNCSU-37(52.3%)이나 mNCSU-23(53.7%)에서 성숙시킨 난자가 TCM-199(43.1%)에서 성숙시킨 난자보다 유의적으로 높았다(p<0.05). 배반포발달율도 mNCSU-37이나 mNCSU-23에서 성숙시킨 것이 TCM-199에서 성숙시킨 것보다 다소 높았지만 유의적인 차이는 아니었다. 이상의 결과로 보아 돼지 미성숙 난포란 유래의 체외수정란 생산을 위한 체외성숙배양액으로 TCM-199보다 mNCSU-37이나 mNCSU-23이 적합한 것으로 사료된다.
This study was conducted to determine the effects of biophoton treatment during in vitro maturation (IVM) and/or in vitro culture (IVC) on oocyte maturation and embryonic development in pigs. An apparatus capable of generating homogeneous biophoton energy emissions was placed in an incubator. Initially, immature pig oocytes were matured in the biophoton-equipped incubator in medium 199 supplemented with cysteine, epidermal growth factor, insulin, and gonadotrophic hormones for 22 h, after which they were matured in hormone-free medium for an additional 22 hr. Next, IVM oocytes were induced for parthenogenesis (PA) or provided as cytoplasts for somatic cell nuclear transfer (SCNT). Treatment of oocytes with biophoton energy during IVM did not improve cumulus cell expansion, nuclear maturation, intraoocyte glutathione content, or mitochondrial distribution of oocytes. However, biophoton-treated oocytes showed higher (p < 0.05) blastocyst formation after PA than that in untreated oocytes (50.7% vs. 42.7%). In an additional experiment, SCNT embryos produced from biophoton-treated oocytes showed a greater (p < 0.05) number of cells in blastocysts (52.6 vs. 43.9) than that in untreated oocytes. Taken together, our results demonstrate that biophoton treatment during IVM improves developmental competence of PA- and SCNT-derived embryos.
Four types of serum supplements viz. estrus cow serum (ECS), estrus buffalo serum (EBS), pro-estrus buffalo serum (PrBS) and post-estrus buffalo serum (PtBS), added to TCM-199, were evaluated for in vitro maturation and fertilization of buffalo follicular oocytes. The oocytes were recovered from buffalo ovaries after slaughter, using either aspiration or scoring (multiple incisions) method. The recovered oocytes were categorized as A, B and C based on their cumulus investment and ooplasm homogeneity and cultured in four media. The in vitro matured oocytes were inseminated with $1{\times}10^6$ spermatozoa washed in 2.9% sodium citrate solution. The scoring method yielded greater number of morphologically good oocytes than the aspiration method (3.85 vs 1.76 per ovary, p < 0.01). The maturation rates of three categories of oocytes did not differ from one another. The maturation rates of 80.00, 82.08, 78.77 and 66.23%, while the fertilization rates of 54.54, 55.38, 52.80 and 36.76% were recorded for media containing ECS, EBS, PrBS, and PtBS, respectively. The medium containing PtBS gave lower maturation, as well as fertilization, rates than the other three media (p < 0.05). Thus, the scoring method was better than the aspiration method for the recovery of follicular oocytes. The oocytes categorized A, B and C had similar maturation capabilities. The TCM-199 containing buffalo/cow serum collected at pro-estrus or estrus appeared better for in vitro maturation and fertilization of buffalo follicular oocytes than that containing serum collected at post estrus.
Recent 2 decades, including in vitro maturation (IVM), assisted reproductive technologies (ARTs) achieved noteworthy development. However the efficiency of ARTs with in vitro matured oocytes is still lower than that with in vivo oocytes. To overcome those limitations, many researchers attempted to adapt co-culture system during IVM and consequently maturation efficiency has been increased. The beneficial effects of applying co-culture system is contemplated base on communication and interaction between various somatic cells and oocytes, achievement of paracrine factors, and spatial effects of extracellular matrix (ECM) from somatic cell surface. The understanding of co-culture system can provide some information to narrow the gap between in vitro and in vivo. Here we will review current studies about issues for understanding cu-culture system with various somatic cells to improve in vitro maturation microenvironment and provide bird view and strategies for further studies.
The aim of this study was to evaluate if oocytes, aspirated from postovulatory ovarian follicles of superovulated rabbits 14 h post-hCG administration, could be efficiently used as ooplasm recipients for somatic cell nuclear transfer (SCNT). Within a common SCNT protocol, a comparison between oocytes recovered by direct aspiration (aspirated) from available ovarian follicles and oocytes flushed out from oviducts (flushed) was carried out. The results showed that maturation and enucleation rates of aspirated oocytes were 70.7% and 69.2%, significantly lower than 95.3% (p<0.01) and 83.6% (p<0.05), respectively, from flushed oocytes. However, following enucleation of matured oocytes as ooplasm recipients for SCNT, no difference was recorded in fusion and cleavage rates, as well as blastocyst development from cleaved embryos or hatching of blastocysts between aspirated and flushed groups. Additionally, some matured aspirated and flushed oocytes were also used for immediate parthenogenetic activation and the resulting embryo development was not significantly different. Results from this study show the following: i) the majority of oocytes aspirated from postovulatory ovarian follicles of superovulated rabbits 14 h post-hCG administration are matured and can be used directly as ooplasm recipients for SCNT; ii) the reconstructed embryos derived from these oocytes have similar in vitro developmental ability to those flushed from the oviducts.
Surface-enhanced laser desorption and ionization time-of-flight mass spectrometry (SELDI-TOF MS) is one of the recently developed proteomic technologies which is based on capturing proteins and peptides by chemically modified surfaces and highly sensitive for the analysis of complex biological samples. In the present study, to gain insights into oocyte maturation and early embryo development, SELDI-TOF-MS was used to find the protein candidates that are specifically or prominently expressed in porcine oocytes at the in vitro matured metaphase II (MIIl) and germinal vesicle (GV) stages. By selected CM10 chip, 16 candidates were found to be up-regulated in GV stage oocytes compared with in MII stage oocytes, their molecular weights were 8,180 (2 candidates), 10,226 (5 candidates), 15,767 (5 candidates) and 16,770 (4 candidates) Da respectively. And the expression of 29 candidates were higher in MII than in GV stage oocytes, their molecular weight were 10,832 (3 candidates), 17,743 (8 candidates), 20,122 (3 candidates), 22,131 (3 candidates), 24,857 (7 candidates) and 33,507 (5 candidates) Da, respectively. The expression of selected 13 candidates (0.2 and 1.0 % error tolerances) were analyzed using real time RT-PCR. The proteins that differentially regulated during oocyte in vitro maturation in the pigs may be potential biomarkers of oocyte maturation and quality.
These studies were carried out ot investigate the effects of estrous cow serum(ECS), fetal calf serum(FCS), bovine follicular fluid(BFF) and matured cumulus cell(MCC) on in vitro maturation and fertilization of bovine follicular oocytes. The ovaries were obtained from slaughtered Korean native cows. The follicular oocytes surrounded with cumulus cells were recovered by aspirating follicular fluid from the visible follicles of diameter 3-5mm. The follicular oocytes were cultured in TCM-199 medium containing hormones, FCS, ECS, BFF and MCC for 24~48 hrs. in a incubator with 5% CO2 in air at 38.5$^{\circ}C$ and then matured oocytes were again cultured for 18$^{\circ}C$20 hrs. with motile capacitated sperm in the TCF(Tyrode calcium-free) solution containing 200$\mu\textrm{g}$/ml of heparin. The results obtained in these experiments were summarized as follows : 1. The oocytes classified as "A, B, C, D and Degenerative" depending morphological integrity and those were 61.4%, 12.1%, 19.2%, 4.2% and 3.0% of the total oocytes harvested, respectively. The maturation and fertilization rate of the A, B, C class follicular oocytes, cultured in the TCM-199 medium supplemented with 10% FCS were 89.1%, 78.0%, 52.6% and 78.1%, 33.3%, respectively. 2. The maturation and fertilization rate of the follicular oocytes cultured in TCM-199 medium supplemented with 5%~20% ECS and FCS were 74.0%~80.6, 26.2%~30.0% and 71.7%~76.9%, 51.9%~58.0%, and those values were higher the supplement of ECS than FCS. 3. The maturation rate(68.0%~64.6%) and fertilization rate(59.6%~60.4%) of follicular oocytes cultured in TCM-199 medium supplemented with 10% FCS and 20~30% BFF were higher than those of follicular oocytes cultured TCM-199 medium supplemented with 10% FCS and 10% and 50% BFF. 4. The maturation rate(76.5%) and fertilization rate(61.7%) of follicular oocytes cultured in TCM-199 medium supplemented with 10% FCS and 1$\times$106/ml cumulus cells were higher than those of follicular oocytes cultured in TCM-199 medium supplemented with 10% FCS and 1$\times$104~5/ml and 1$\times$108/ml cumulus cells.lus cells.
This study was conducted to find out the effect of follicle size and oocyte type on in vitro maturation of poricine follicular oocytes. TCM-HEPEAS medium was used to basic medium, and the oocyte matured in vitro was stained with the Rapid staining method. The results obtained were summarized as follows; 1. The number of follicles an ovary was 20.5. The number of A-and B-typed oocytes an ovary was 2.34. The proportion of A-and b-types oocytes was 40% of the recovery oocytes. 2. Cumulus expanison indexes(CEI) by the follicle size were 1.62∼2.34(<2mm), 1.27∼2.28(2∼5mm) and 1.46∼2.75(>5mm). It was no differ to maturation rate by the follicle size. 3. The degree of oocyte maturation based on oocyte type did not differ for B-and C-typed oocyted but the index of oocyte type A was higher than that of b-and C-typed oocytes. 4. When follicluar oocytes were cultured for 42 hours, the proportion of the Met-II(second metaphase) stage were 22.5% (degree 1), 35.4%(degree 2) and 65.5% (degree 3).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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