This experiment was investigated the effect of presence of granulosa cells from follicles of different size on bovine oocyte maturation, cleavage and development to late stage. The nuclear and cytoplasmic maturation of oocytes in the IVM-IVF system are critical for subsequent embryo development. Granulosa cells when the co-cultured with oocytes may interact with cumulus-oocytes complexes and influence the development competence of the oocytes. Granulosa cells from medium (2~6 mm) and large(>1O mm) size follicles were recovered by aspiration, washed 3 times by centrifugation at 500 x g for 5 min. and used for co-culture at a concentration of 2~3 x 106 cells/mi. The oocytes were matured in vitro (IVM) for 24 hrs. in TCM-199 supplemented with 35 $\mu$g/ml FSH, 10 $\mu$g/ml LH, 1 $\mu$g/ml estradiol-17$\beta$ and granulosa cells at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air. They were fertilized in vitro (IVF) by epididymal spermatozoa treated with heparin for 24 hrs., and then the zygotes were co-cultured in vitro (I VC) with bovine oviductal epithelial cells for 7 to 9 days. The assessment of maturation revealed that Grade J oocytes showed significantly(P
This study was undertaken to investigate the effects of ITS and EGF on embryonic development of in vitro matured and fertilized bovine oocytes in culture medium su, pp.ementing with or without calf serum. When fertilized oocytes were cultured in TCM-199 containing 0, 0.1, 0.5 and 1.0\ulcorner/ml ITS with 5% calf serum, the rates of development to blastocyst stage and the cell number of blastocysts were not significantly different among all treatments. And also monolayer of cumulus/granulosa cells prepared in containing calf serum and ITS were no beneficial effects of embryonic development. On the other hand, when EGF was su, pp.imented to TCM-199 containing calf serum or calf serum free, embryonic development rates(24.0 2.8% to 29.2 1.7% or 8% to 9%) and cell number of blastocysts(p<0.05) were significantly increased compared with EGF-free(22.1 2.1 or 1.0%, p<0.05). But when fertilized oocytes were cultured with cumulus/granurosa cells in TCM-199 containing EGF and calf serum, the rate of embryos development to the blastocyst stage and cell number of blastocysts were not significantly different compared with EGF-free and any concentrations. These results showed that ITS and EGF was not improved the development of bovine embryo in vitro matured and in vitro fertilized with calf serum and/or monolayer of cumulus/granulosa cells.
This study was conducted to examine the condition of activation of the nuclear transplant bovine embryos. In vitro fertilized(IVF) and nuclear transplant embryos(NTs) were co-cultured with bovine oviduct epithelial tissue(BOET). NTs were treated with cycloheximide(CHXM) for 0 to 6 h after electrofusion to investigate the activation conditin of recipient ooplast. Then, the infljence of the CHXM treatment timing on the cleavage and development of NTs were investigated in relation to the nuclear transplant time. The cleavage rates of NTs were increased with the increasing time of the CHXM treatment from 0 to 6 h (54.7 to 91.3%, P<0.01). Similar trend was shown in the development into the morula or blastocyst stage, but very limitted. Activation of enucleated oocytes prior to fusion enhanced development of NTs compared with that post fustion. This result suggests that the frequency of activation of NTs can be greatly enhanced by treating with CHXM for 6 h. The result also suggests that if blastomeres of unknown cell cycle stage are used, activation of enucleated oocytes prior to fusion enhances development of NTs.
The studies were carried out to investigate the effects of co-culture with cumulus cell, oviduct epithelial cells and uterine endometrial cells on the in-vitro fertilization and cleavage rate of porcine follicular oocytes. The ovaries were obtained from slaughtered swine. The follicular oocytes surrounded with cumulus cells were recovered by aspirating follicular fluids from the visible follicles of diameter 3~5 mm. The follicular oocytes were cultured in TCM-199 medium containing hormones and 10% FCS for 24~48 hrs in a incubator with 5% CO2 in air at 38.5$^{\circ}C$ and then matured oocytes were again cultured for 12~18 hrs with motile capacitated sperm by preincubation. The results obtained in these experiments were summarized as follows : 1. The in-vitro maturation and fertilization rate of porcine oocytes co-cultured with cumulus cells in TCM-199 meidum were 64.6%~74.5% and 37.5%~55.3%, respectively. And in-vitro fertilization rate of cumulus-enclosed oocytes(51.5%) were significantly(p<0.05) higher than cumulus-denuded oocytes(21.7%). 2. The in-vitro maturation and fertilization rate of porcine oocytes co-cultured with 1$\times$104 cells/ml, 1$\times$106 cells/ml, 1$\times$108 cells/ml and 1$\times$1015 cells/ml oviduct epithelial cells in TCM-199 medium were 53.5% and 37.2%, 61.7% and 46.8%, 54.5% and 31.8%, 42.2% and 26.7%, respectively. 3. The in-vintro maturation and fertilization rate of porcine oocytes co-cultured with 1$\times$106/ml, 1$\times$108/ml, 1$\times$1015/ml uterine endometrial cells in TCM-199 medium were 54.3% and 39.1%, 58.3% and 43.8%, 55.5% and 33.3%, and 45.7% and 30.4%, respectively. 4. When the in-vitro fertilized oocytes were co-cultured with porcine cumulus cells, ovdiduct epithelial cells and uterine endometrial cells, the development rate to the blastocyst stage was 9.5%, 10.7% and 11.8%, respectively and the rates were higher than that of control, 2.1%(p<0.05).
Bovine follicular oocytes were matured in two different conditions, TCM 199+10% FBS with or without hormones (0.01 unit/ml ovine follicle stimulating hormone, 0.01 unit/ml ovine luteinizing hormone and 1$\mu\textrm{g}$/ml $\beta$-estradiol). There was no significant difference in maturation and fertilization rates of the oocytes between two groups. The result indicates that hormonal treatment does not have beneficial effect on in vitro maturation and fertilization of follicular oocytes. IVF-derived cone-cell bovine embryos were injected with foreign DNA (CChcLf) by microinjection method and then co-cultrued with bovine oviductal epithelial cells. Developmental rate of microinjected embryos to blastocyst stage (21%) was similar to that of non-injected embryos(29%). This result represents that microinjected bovine embryos produced in vitro have a potential of development to normal blastocysts.
These experiments were carried out to investigate the effect of a co-culture with granulosa cells on in vitro maturation, fertilization and development of bovine follicular oocytes. The bovine ovaries were obtained at a slaughter house and the follicular oocytes were recovered by aspirating the follicular fluid from the visible follicles of diameter 2-6mm. Bovine oocytes were matured in vitro for 24-26 hr and then fertilized in vitro using epididymal spermatozoa capacitated by preincubation for 2-3hr in BO solution containing BSA(5mg/ml) and caffein(25mM). Eight hours after insemination, the oocytes were cultured in a co-culture system with granulosa cells. The rates of maturation of the follicular oocytes cultured in a co-culture system with granulosa cells were 83.1%, the rate of fertilization of the follicular oocytes culture in a co-culture in a co-culture system with granulosa cells were 76.9%, respectively. No significant difference are observed between control and treatment in maturation and fertilization rates. The rates of embryos developed to 2-, 4-, 8-, 16-cell and monula stages after co-cultured with granulosa cells were 65.8, 57.9, 39.5, 34.2 and 34.2%, respectively. The value for 16-and morula stages were significantly higher (P<0.05) than those of the embryos cultured in the basic medium.
본 연구는 난자의 성숙시간, PHA-P 처리 또는 활성화 방법이 소 미수정란의 탈핵, 재구축란의 융합, 활성화 또는 체외발육에 미치는 영향을 검토하였다. 미수정란은 성숙 후 16∼24시간에 탈핵을 실시하고, PHA-P 처리 또는 무처리된 귀 피부세포를 이식 후 전기융합을 실시하였다. 후자의 경우는 융합 전에 PHA-P로 15분간 배양하였다. 융합란은 A23187과 CHXM 혹은 DMAP의 병용처리에 의해 활성화를 유기하고, 7∼9일간 체외배양하였다. 탈핵율은 성숙 후 16∼18시간에 실시한 경우(70.2∼92.3%)가 성숙 후 20∼24시간(44.3∼3.4%)에 비하여 유의적으로 높았다(P<0.05). M-II기 염색체의 위치는 성숙배양 시간이 길어짐에 따라 제 1 극체와의 간격이 멀어졌다. Donor 세포 혹은 재구축란에 PHA-P를 처리한 경우는 무처리구에 비하여 융합율이 향상되었다(P<0.05). 핵이식배의 분할율 및 배반포 발달율은 A23187+DMAP 처리구에서 78.6%와 32.9%로, A23187+CHXM 처리구에 비하여 유의적으로 높았다(P<0.05). 본 실험 결과는 성숙후 18시간에 탈핵을 실시하는 것이 효과적이며, donor세포 또는 융합 전 재구축란의 PHA-P 처리가 융합율 향상시킬 수 있고, 또한, 융합란을 A23187과 DMAP으로 병용처리 함으로써 난자의 활성화 및 배반포 발육율을 향상시켜, 결과적으로 핵이식기술의 효율성을 증진시킬 수 있을 것으로 사료된다.
The present study was undertaken to assess the influence of dimethyl-sulfoxide plus sucrose solution as a cryoprotectant on the adenosine triphosphate (ATP) content, the ultrastructure and the embryonic development of bovine oocytes matured in vitro. We measured the amount of ATP in cumulus cells enclosed oocytes (CO) or denuded oocytes (DO) equilibrated with or removed from the cryoprotectant (1.5 M DMSO + 0.25 M sucrose + 20% fetal bovine serum in physiological saline). As a result, the ATP contents in both CO and DO, equilibrated with the cryoprotectant, were significantly lower (p<0.05) than that of the each control group. However, ATP content of DO was recovered to the level of the control group ailer removal of the cryoprotectant, but failed to restore for CO. In the observation of the ultrastructure by a transmission electron microscope, all of the mitochondria in the ooplasm of CO and DO equilibrated with the cryoprotectant were swollen with peripherally located cristae following decreased electron density. However, a large proportion of these swollen mitochondria were restored to the normal shape which can be observed usually in the control group after removal from the cryoprotectant. To the contrary, the morphology of many mitochondria of the cumulus cells in CO were not recovered to that of the control group after removal of the cryoprotectant. CO with removed cryoprotectant had significantly lower embryonic development up to the blastocysts stage (p<0.05) after in vitro fertilization compared with that in the control group. These results suggest that the addition and removal of a cryoprotectant has a negative effect for the ATP content of cumulus enclosed oocytes. One of the factor(s) causing the lower embryonic development after removal of cryoprotectant, may be associated with ATP metabolism.
In the last few years, methods for in vitro culture of early embryo stages from oocytes matured and fertilized in vitro using suitable cell culture systems have been established. But the factors affecting pregnancy rates following transfer of bovine embryos produced in vitro were not evaluated enough. So this study was performed to investigate the effects of quality and stage of embryos, parity and Corpus Luteum quality of recipients on pregnancy rates following non-surgical transfer of bovine embryos produced in vitro. Oocytes aspirated from small antral follicles of ovaries obtained at a local slaughter house were matured, fertilized with frozen-thawed semen and co-cultured for 6-7 days by utilizing co-culture system with bovine oviduct epithelial cell in vitro. After co-culture, embryos were transfered to recipients on day 7 (estrus=day 0). Recipients were monitored by ultrasonic scanning method or observation for estrus and rectal palpation after 50 days from transfer. The results of this study are follows. 1. Of the 70 recipients, 70%(49 of 70) had not showed estrus sign between day 0 and day 50, but 22.9%(16 of 70) was diagnosed not pregnant. Therefore the overall pregnancy rate of this study was 47.1%(33 of 70). 2. The pregnancy rate of recipients transfered with excellent(66.7%) and good(54.5%) embryos were higher than that of recipients transfered with fair embryos(15.8%) (p<0.05). 3. The pregnancy rate of recipients transfered with morula, compacted morula, blastocyst and expanded blastocysts were 46.2, 55.0, 62.5 and 50.0%, respectively. 4. The pregnancy rates of recipients transfered to heifer and cow were 54.5 and 55.2%, respectively. 5. The pregnancy rates of recipients with CL score I, II(66.7, 63.6%) were higher than those of recipients with CL score III (10%), (p<0.05). Success of transfer of embryos produced in vitro depends on many variables. The important factors identified in this study were the quality of embryos and the CL score of recipient animals after non-surgical transfer of embryos matured, fertilized and cultured in vitro.
The aim of this study was to investigate what components of porcine epididymal fluid (pEF) influences the nuclear maturation of porcine germinal vesicle oocytes. Porcine cumulus-oocytes complexes from follicles were cultured in TCM 199 containing pEF. After 48 h cultures, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. Maturation rate of oocytes was significantly increased in media supplemented with 10% pEF during in vitro maturation (IVM) than in those without pEF. When lipid component of pEF was removed by treating n-heptane, no significant difference was observed in maturation of oocytes between n-heptane treatrment and intact pEF group. However, the proportion of oocytes reaching at metaphase II (M II) was significantly (p<0.05) decreased in the oocytes cultured in media containing trypsin-treated pEF compared to those in media with intact pEF. When porcine GV oocytes were matured in the medium supplemented with intact pEF or pEF heated at $56^{\circ}C$ and $97^{\circ}C$, rates of oocytes remained at GV stage were 11.7%, 29.4% and 42.0%, respectively. However, there were no difference in proportion of oocytes reaching at MII stage among intact pEF group and $56^{\circ}C$ group. Present study suggests that 1) pEF contains an enhancing component(s) for nuclear maturation in vitro of oocytes, 2) protein(s) of pEF may be capable to promote nuclear maturation in vitro, and 3) enhancing component for nuclear maturation may consist of two factors, which are responsible for germinal vesicle breakdown (GVBD) and promotion of MII stage.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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