Plants regenerated from in vitro cultures carry chromosomal variations, especially in long-term culture. Reducing the duration of plant tissue culture is one of the ways to reduce genetic and epigenetic changes. In this study, we reduced the duration of long-term culture and repeat subculture using small bulblets derived from bulb scales in two lily cultivars. The adventitious bulblets derived from bulb-scale tissue were cultured on three different media containing Murashige and Skoog (MS) basal medium supplemented with 1 g/L Charcoal, MS medium containing 0.3 mg/L IAA and 0.4 mg/L BA hormone with or without Charcoal, respectively. About seven weeks later, the number of newly propagated multiple shoots in the two media, A and B media, showed little differentiation. Compared to both media, the number of propagated multiple shoots increased 5-fold in MS medium containing 0.3 mg/L IAA and 0.4 mg/L BA hormone without Charcoal (C medium). The number of propagated multiple shoots ranged from 5 to 6 and 4 to 6 with an average of 5 in TropicalPink and GreenStar cultivars, respectively. The flow cytometric measurements indicated no variation in the ploidy level between control and in vitro propagated plants.
Objective: This study investigated whether adding outer-well medium to inhibit osmotic changes in culture media in a dry-type incubator improved the clinical outcomes of in vitro fertilization-embryo transfer (IVF-ET) cycles. Methods: In culture dishes, the osmotic changes in media (20 µL)-covered oil with or without outer-well medium (humid or dry culture conditions, respectively) were compared after 3 days of incubation in a dry-type incubator. One-step (Origio) and G1/G2 (Vitrolife) media were used. Results: The osmotic changes in the dry culture condition (308 mOsm) were higher than in the humid culture conditions (285-290 mOsm) after 3 days of incubation. In day 3 IVF-ET cycles, although the pregnancy rate did not significantly differ between the dry (46.2%) and humid culture (51.0%) groups, the rates of abortion and ongoing pregnancy were significantly better in the humid culture group (1.5% and 49.5%, respectively) than in the dry culture group (8.3% and 37.8%, respectively, p<0.05). In day 5 IVF-ET cycles, the abortion rate was significantly lower in the humid culture group (2.2%) than in the dry culture group (25.0%, p<0.01), but no statistically significant difference was observed in the rates of clinical and ongoing pregnancy between the dry (50.0% and 25.0%, respectively) and humid culture groups (59.5% and 57.3%, respectively) because of the small number of cycles. Conclusion: Hyperosmotic changes in media occurred in a dry-type incubator by evaporation, although the medium was covered with oil. These osmotic changes were efficiently inhibited by supplementation of outer-well medium, which resulted in improved pregnancy outcomes.
This study was carried out investigate the effect of water quality and the kind of media on the in vitro development of 1-cell and stage mouse embryos. $F_1$ hybrid mice were superovulated and timely mated. 1-cell stage and 2-cell stage mouse embryos were recruited and taken into Ham's F-10 or m-KRB media which was made of two of two kinds of water having different quality, highly purified water and tap water. 2-cell stage embryos grew up well in vitro to blastocyst or hatching blastocyst regardless of the composition of culture media, but 1-cell stage mouse embryo didn't develop well to blastocyst or hatching blastocyst in simple media like m-KRB. These results meant in vitro devleopment of 1-cell stage mouse embryo neded complex media like Ham's F-10 which contained abundant protein components. In case of quality control for water, in vitro fertilization program. observation of in vitro development of 2-cell mouse embryos up to blastocyst or hatching blastocyst media such as m-KRB would be efficatious in detecting the difference of water quality.
This experiment was carried out to evaluate the effect of early mouse embryonic development in vitro by co-culture with bovine and porcine oviductal epithelial cells (BOEC and POEC). The 2-cell embryos were collected from the oviducts of the superovulated and mated cultured in D-PBS /15% FCS at 48 hours after hCG injection. The in vitro developmental rate of blastocyst formation in the embryos were examined under the fllowing treatments; 1) TCM 199 added 15% HCS, 2) Ham's F-10 added 15% HCS, 3) MediCult IVF medium, 4) TCM 199 added 15% HCS + BOEC, 5) TCM 199 added 15% HCS + POEC, 6) Ham's F40 added 15% HCS + BOEC, 7) Ham's F-10 added 15% HCS + POEC,8) MediCult IVF medium + BOEC, 9) MediCult IVF medium + POEC. For a comparative study of in vitro development for 96 hours after hCG injection, were cultured with oviductal epithelial cell and media only. The obtained results were 2-cell embryos developed to the blastocyst stage in TCM 199, Ham's F-10 and MediCult IVF medium at the rates of 84.4,83.2 and 81.6%. respectively. The higher developmental rates(91~97%) of blastocyst formation was appeared when the embryos were co-cultured with a monolayer of bovine or porcine oviductal epithelial cells in TCM 199 or Ham's F-10 and MediCult IVF media. No significant difference in developmental rates was shown between bovine and porcine oviductal epithelial cells but significant difference in co-culture system in comparison between media only system and co-cultures. In conclusions, oviductal epithelial cells, BOEC and POEC, when co-culture with mouse early embryos improved the rates of development, blastocyst and hatching. Therefore, it is suggested that co-culture system using oviductal epithelial cells improve early embryonic developtnent in mouse.
Protocols for in vitro conservation was developed for Coleus forskohlii. Plants maintained both in field served as explant source. Shoot tips and single node cuttings were used to optimize protocols for in vitro multiplication. MS basal medium supplemented with $0.54\;{\mu}M$ naphthalene acetic acid (NAA) and $8.87\;{\mu}M$ benzy-ladenine (BA) induced multiple shoots in shoot tips and nodes. Shoot multiplication was amplified with a gradual decrease of BA concentration, leading to its final omission after 4 months. Concomitant rooting on multiplication media enabled successful establishment extra vitrum. For in vitro conservation studies, experiments were carried out with 2-3 week maintained in vitro plants under standard and reduced culture conditions (SCC, RCC). In vitro plants could be successfully conserved in full strength MS medium (FMS) under SCC for 6 months without subculture with full potential to regenerate, producing viable shoots and nodes. The root production remained unaffected due to conservation, showing high rooting activity in mannitol and low temperature treatments. Preset low temperature (15 and $10^{\circ}C$) and reduction in media constituents does not appear to favour conservation, although the former accomplished conservation levels equal to (FMS) under SCC.
Three experiments were conducted with follicular oocytes, to compare some somatic cells, growth factors and media for in vitro maturation of bovine oocytes. In the first experiment, the type of somatic cells had no effects on in vitro maturation of bovine follicular ooctyes. In the second experiment, oocytes were matured in TCM199 su, pp.emented with growth factors on IVM of bovine follicular oocytes, then all were co-cultured with cumulus cells. The proportion of used oocytes that developed to expanding blastocysts was 22.2%, 20.2%, 17.7%, 22.2%, 24.4% and 20.2% after maturation in TCM199 su, pp.emented with control, insulin, IGF-I, IGF-Ⅱ, FGF and EGF, respectively. In the third experiment, oocytes were matured in BO, Ham's F10 and TCM199, then all were fertilized in BO, and embryos cultured in BO, Ham's F10 and TCM199, respectively. Cleavage rates in BO were 90%, had higher than in Ham's F10(80%) or in TCM199(64%). But production of expanding blastocysts in TCM199(21%) or Ham's F10(20.6%), had higher than in BO(4.6%).
As a simple and economical method for in vitro produced embryos, we have used BSA instead of serum for the production and embryo transfer of Hanwoo in vitro fertilized (IVF) embryos and obtained the following results: 1) When using serum (FBS; fetal bovine serum) or BSA-containing culture media as the initial culture media for immature oocytes, it is regarded as inappropriate to add only BSA to the culture solutions from maturation of the immature oocytes to development stage culture, but serum still needs be added though there is no significant difference in the concentration, with a change from 5% to 10%. 2) The results of culturing IVF embryos after development (4 cell stage) in the Medium199 solutions containing BSA instead of serum (FBS) showed that 0.3% BSA concentration is not optimal and 0.5% or higher BSA concentration has no significant difference among 0.5%, 0.7%, 1% and 2% (p > 0.05). 3) The post-freezing survival ratio after development in 5% FBS-Medium199 showed that 1% BSA concentration of the culture solution is the most suitable in the BSA concentrations of 0.3% (51%), 0.5% (67%), 0.7% (69%), 1% (77%) and 2% (75%). 4) The pregnancy rates of the transplanted fresh(not frozen) blastocyst had no significant concentration dependency (p > 0.5), and the average pregnancy rate was 63.8%. 14% of overweight calves were found among the calves given birth to by the transfer of IVF blastocysts cultured in the serum-added culture solution, but none was found in the experimental groups in which BSA was added instead of serum.
Current developments in IVF and animal cloning have resulted in increasing demand for large quantities of oocytes and ovarian follicles at specific stages of development. These medical and scientific needs may be met by developing an optimal culture system for preantral follicles. In this study, we investigated the growth of porcine preantral follicle cultures in different media and in the presence and absence of serum. Follicles were manually dissected from ovaries obtained from prepubertal gilts at a local slaughterhouse, and cultured for 3 days in M199 or NCSU23 medium supplemented with porcine FSH, transferrin, L-ascorbic acid and insulin. Follicle diameters were measured on day 1 and 3 of culture. In Experiment 1, the effect of supplementing culture medium with fetal calf serum (FCS) on porcine preantral follicle growth was examined. In the group of cultures supplemented with FCS, follicle diameter after 3 days of culture, survival rate and antrum formation rate in the FCS group were significantly higher than those of the control group. In Experiment 2, the effects of culture medium (M199 and NCSU23) on follicle growth were compared. Follicle diameters were increased in the M199 group, compared with those in NCSU23 (p<0.05), but we observed no significant differences in survival and antrum formation rates between cultures grown in the two media. In conclusion, supplementation of the culture medium with serum enhances preantral follicle growth and antrum formation, and M199 is superior to NUSU23 for porcine preantral follicle culture in vitro.
The purpose of this study was to investigate the effects of the collection time, co-culture and sperm penetration of canine oocytes on in vitro maturation and fertilization. The oocytes were cultured in TCM-199 media containing hormonal supplements (10% FCS, 10 IU/ml HCG, 10 IU/ml PMSG) at 5% $CO_2$, 95% air, $38^{\circ}C$. The in vitro maturation rate to MII stage of in vitro oocytes recovered from ovaries that collected at follicular, luteal and inactive phases of the reproductive phase for 44~72 hrs were 19.2%, 12.2%, and 6.0%, respectively. Follicular phases oocytes had a significantly higher in vitro maturation rate than oocytes collected at luteal and anestrus stage (p<0.05). The in vitro maturation rates to the MII stage of canine oocytes after 48 hrs of culture with glutathione, pyruvate, or glutathione + pyruvate were 12.5%, 10.7%, and 17.5%, respectively. This was higher than that in both alone or the combination of the two compared to the control group (19.0%). The sperm penetration rates of in vitro matured oocytes by fresh and frozen semen were 29/80 (36.3%) and 18/80 (22.5%), respectively. Although there are limited reports about canine oocytes co-culture and in vitro fertilization, our results on in vitro maturation is comparable to the results from other researches.
In this study, we investigated the culture conditions of four ectomycorrhizal fungi, namely, Amanita spissacea NIFoS 2719, Pisolithus arhizus NIFoS 2784, Suillus spraguei NIFoS 2848, and Xanthoconium affine NIFoS 2716, in solid and liquid culture media. In addition, we attempted to induce in vitro mycorrhization of the fungi with Pinus densiflora. Prior to liquid culture, we determined the optimal culture conditions for each species in solid media. The results revealed that all species examined are capable of growth in potato dextrose agar (PDA), malt extract agar (MEA), and modified Melin-Norkran's medium (MMN), although their preferred growth media were different. Liquid culture experiments showed that inorganic nitrogen did not enhance the mycelial growth of all four species. Therefore, we used MMN-based liquid inocula to promote the growth of ectomycorrhizal fungi in our symbiosis culture system. Mycorrhization was observed in Xanthoconium affine NIFoS 2716. Morphological analysis revealed that fungi-inoculated roots of P. densiflora form simple and dichotomous lateral roots with dense mycelia. In addition, inoculation with X. affine NIFoS 2716 promoted root and shoot developments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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