This study was conducted to investigate the effects of various supplements added into maturation medium of immature porcine oocytes on quantity of cytoplasmic lipid droplets(LD), subsequent fertilization and development to the blastocyst stage in vitro. The basic maturation medium was TCM 199 + 1 ㎍/㎖ FSH, 0.57 mM cystein, 10 ng/㎖ EGF and was supplemented various supplements(10% FBS, 10% pFF, 0.4% BSA, 1.0% BSA, 0.4% PVP, 1.0% PVP). (omitted)
한우 미성숙 난자의 vitrification 동결시 발생단계별 생존성과 체외발생율을 알아보고자 난자를 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양시킨 후 vitrification 동결 융해 후의 체외발생율을 조사하였다 본 연구에서 나타난 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양시킨 난자를 vitrification 동결보존 후 MR 단계로의 발생율은 각각 33.3%, 55.0%, 68.3% 73.3%였으며, diploid로의 발생율은 26.7%, 21.7%, 6.7%, 1.7%로서 대조군의 M II 단계의 78.2%에 비해 낮게 나타났으나 diploid단계의 3.6%에 비해서는 높게 나타났다. 2. 미성숙 난자를 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양 시킨 후 vitrification 동결 응해 후의 생존율은 각각 38.0%, 30.0%, 20.0% 및 12.0%로서 비동결 대조군의 48.0%에 비해 낮은 생존율을 나타냈다. 3. 미성숙 난자를 0, 10, 14 및 20시간 성숙배양 시킨 다음 vitrification동결 응해 후 수정하였 때 체외수정율은 64.6%, 61.6%, 54.8%, 32.3% 였으며, 배 반포로의 체 외 발생 율은 각각 32.3%, 21.7%, 14.5%, 4.6%로서 대조춘의 80.0%와 55.0%에 비해 낮은 체외수정율과 체외발생율을 나타냈다.
In order to increase the pregnancy rate by means of cryopreservation of the excess oocytes in IVF-ET program, the survival rate of the frozen-thawed oocytes of mouse was examined according to the stages of maturation, cryoprotectants and their treatment. The results were summarized as follows. First, during the continuous treatment with cryoprotectant media, the survival rate of oocytes was higher in DMSO than in PROH, and higher at low temperature($4^{\circ}C$) than at room temperature($25^{\circ}C$). Second, as regard with the maturation of immature(GV-intact) oocytes after treatment with cryoprotectant media, the rate of maturation in DMSO-treated group(52%) was higher than in PROH-treated group(35%). Third, according to the treatment of cryoprotectant media, the survival rate of frozen-thawed oocytes in DMSO-treated group (45%) was higher than in PROH-treated group(29%), and that of oocytes in DMSO 4-step treated group was higher than any other groups. Finally, in the post-thaw oocytes frozen at various stage of maturation, the survival rate of immature oocytes with GV was the highest in all groups. These results suggest that in the cryopreservation of mouse oocytes, DMSO was better than PROH as cryoprotectant, in treatment of cryprotectant the multi-step treatment was better than single-step, and the post-thaw survival rate of oocytes was closely related to the maturity of oocytes. It is assumed that the highest survival rate of mouse oocytes with GV is due to the stability of the structures in nucleus and intracelluar organelles, and of physiological function.
The growing oocytes become progressively capable of resuming meiosis, and full meiotic competence appear when they are about 80% of the size of fully grown oocytes. As hormonal influences vary at different stages of reproductive cycle, the size of oocytes may vary according to the reproductive stages. The present study was designed to compare the diameter between the ovulated and freshly collected immature canine oocytes. The ovulated oocytes were collected 72 hr after ovulation by oviductal tube flushing by laparotomy under general anesthesia. Immature oocytes were collected by ovarian slicing method. Diameter of all oocytes was measured directly using epiflurescence microscope with a calibrated micro-eyepiece micrometer at ${\times}200$ magnification. The thickness of zona pellucida and diameter of cytoplasm were measured separately and recorded. A total of 2209 zona intact oocytes were collected, among them 628 from anestrus, 675 from follicular, 838 from luteal and 68 by fallopian tubes flushing methods. The average number of oocytes was 104.7, 168.8, 119.7 and 11.3 for anestrus, follicular, luteal and fallopian tubes flushing methods, respectively. The average diameters of the ooplasm and oocyte were significantly varied in different reproductive stages as well as with ovulated oocytes (P<0.05). The average diameter of ooplasm and oocyte was 115.6 and 127.7, 143.0 and 162.0, 134.6 and 150.6, 159.6 and 185.6 for anestrus, follicular, luteal and ovulated oocytes, respectively. Highest number of oocytes with larger diameter could be collected from the follicular and luteal stages. In conclusion, the follicular and luteal ovaries are the best sources of oocytes for canine IVM.
The present study was performed to investigate the survival and subsequent embryonic developmental rate of immature and mature oocytes after vitrification and pronuclear stage embryos after slow-freezing and vitrification. We have also tried to examine the dependency of concentrations (7.5, 15%) and exposure time (5, 10, 20 min) of ED cryoprotectant on developmental rate of pronuclear stage embryos. The developmental rates of 2-ce1l and blastocyst embryos at mature oocytes were significantly (p<0.05) higher than immature oocytes. After slow freezing, vitrification and thawing of pronuclear stage embryo, the survival and developmental rates of blastocysts and hatched blastocysts were significantly (p<0.05) higher after vitrification than after slow-freezing. On contrary, the developmental rates of 2-cell embryos were significantly (p<0.05) higher after slow freezing than after vitrification. The cryopreservation methods of pronuclear stage embryos vitrified by exposed to 7.5% ED solution for 5 minutes was significantly (p<0.05) higher than other experimental group. The results of our study suggest 1hat the developmental rates of mature oocytes have been more successful than immature oocytes during vitrification. Vitrification was more efficient than slow freezing in case of pronuclear stage embryos. The effective cryopreservation method of pronuclear stage embryos was vitrified by exposed to 7.5% ED solution for 5 minutes.
This study was carried out to verify the incidence of oocytes when vitrified at various maturation stages. Bovine cumulus-oocyte complexes were recovered from ovaries at a slaughter and then divided into five groups: control group(unvitrified oocytes), 0 hr. group(composed of oocytes vitrified before the onset of maturation) and 10, 14, and 20 hrs groups (vitrified respectively at 10, 14 and 20 hrs after the onset of maturation). (omitted)
In the present study, effects of concentration of cryoprotectant solutions on the nuclear maturation of vitrifiedthawed bovine oocytes were examined. Also, the developmental capacity of vitrified-thawed immature oocytes following ICSI was investigated. Oocytes were cultured in TCM-199 medium supplemented with 5% FBS at $38^{\circ}$C in 5% $CO_2$ and air. The in vitro maturation rate of vitrified oocytes was 24.5 ${\pm}$ 4.2%. The in vitro maturation rate of vitrified oocytes was lower than that of the control (72.0 ${\pm}$ 3.5%, p<0.05). The in vitro maturation rate of vitrified${\sim}$thawed oocytes incubated in TCM-199 medium supplemented with 1.0${\sim}$5.0 ug CB were 26.7 ${\pm}$ 3.2%, 35.7 ${\pm}$ 3.2%, 54.0 ${\pm}$ 3.0%, 42.5 ${\pm}$ 3.6%, respectively. The in vitro maturation rate (57.0 ${\pm}$ 3.0%) of the vitrified-thawed oocytes treated with 3.0 ${\mu}$g CB for 20 min was the highest of all vitrification groups, although the maturation rate were significantly (p<0.05) lower than those of fresh oocytes. The in vitro maturation rates of the vitrified-thawed (with EDS and EDT) oocytes were 53.8 ${\pm}$ 3.4%, 51.1 ${\pm}$ 3.5%, respectively. This results were lower than the control group (72.0 ${\pm}$ 3.0%). The in vitro developmental rates of the vitrified-thawed oocytes following ICSI were 28.6 ${\pm}$ 4.5%, 25.6 ${\pm}$ 4.3%, respectively. This results were lower than the control group (40.0 ${\pm}$ 4.0%).
본 연구는 소 미성숙난자를 electron microscope (EM) grid와 동해제인 EFS30을 이용하여 초급속 동결하였을 때 정상적인 배 발달의 유도가능성 여부를 조사하고자 실시하였다. 동해제는 30% ethylene glycol, 18% ficoll, 0.5 M sucrose와 10% FBS 등이 PBS에 첨가되어 제작된 EFS30을 사용하였다. 난자 생존의 평가기준으로는 성숙, 수정 및 배발달을 조사하였다. 본 연구에서 얻어진 결과는 다음과 같다. 초급속동결-융해 후, 소 미성숙란의 생존율은 43.2%을 나타내었다. 동결-융해군의 체외 성숙 (84.1%)과 정상 자웅전핵 형성율 (57.5%)은 대조군의 결과 (92.5, 65.0%)와 비교하여 볼 때 유의한 차이는 없었다. 또한, 동결군의 체외수정 이후의 $\geq2$-세포기 형성 (65.0%)과 배반포형성율 (30.8%)도 대조군(73.7, 35.7%)의 결과와 유의한 차이를 나타내지 않았다. 따라서 소 미성숙난자는 EM grid와 EFS30 동결액을 이용한 초급속 동결방법에 의해 정상적인 배발달이 유도될 수 있다는 것을 알 수 있었다.
본 연구는 개의 미성숙난자의 낮은 성숙율을 개선하기 위하여 자연발정온 개의 생식기관에 미성숙 난자를 이식하여 체내 배양 난자를 회수하여 회수된 난자의 핵 성숙율을 조사한 결과는 다음과 같다. 1. 미성숙난자를 24, 48 및 72시간 동안 체외성숙을 유도하였을 때 성숙시간에 따른 체외성숙율에는 유의적 차이는 인정되지 않았다. 2. 체내 배양 기간에 따른 난자의 회수율은 배양기간이 길어질수록 유의적으로 낮은 회수율을 보였으며, 배양기간이 증가할수록 난자의 생존율은 유의적으로 (P<0.05) 저하되었고 사멸된 난자의 비율도 또한 증가하였다. 3. 회수된 난자는 4, 5, 6일간의 체내 배양기간에 관계없이 대부분 GV상태로 (20/34; 6/15; 4/7)존재하였으며, 성숙된 난자는 체내 배양 4일째 회수된 난자에서 $5.8\%(2/34)$의 난자가 M II까지 발달한 것으로 조사되어 개의 미성숙난자의 체내 배양은 개 난자의 핵성숙을 개선하지 못하였다. 이상의 결과에서와 같이 개의 미성숙난자의 체내 배양은 M II 단계까지의 발달에 기여하지 못한 것으로 판단되며, 이는 개 미성숙난자의 핵발달은 난포에서의 자극과 활성화가 요구되는 것으로 판단된다.
Purine has been identified in the preparation of follicular fluid and shown an activity in maintaining oocyte meiotic arrest. Therefore this study was performed to examine the inhibitory effect of purine on germinal vesicle break down(GVBD) in the presence and absence of human fetal cord serum(HFCS) or human mature follicular fluid(HMFF), as a protein source, in vitro culture. Immature oocytes(GV stage) were collected from ovaries of 21∼28 days old ICR mice by puncturing the antral follicles with a fine needle, at 48 hrs after PMSG injection. Some of the oocytes were denuded by drawing the cumulus-enclosed(complex) oocytes in and out of a pasteur pipet. Complex oocytes and denuded oocytes were cultured 3 hrs. in T6 media containing 0.75mM adenosine or/and 4mM hypoxanthine, with HFCS or HMFF. Their GVBD rates were observed at every 1 hr. during the culture time. Both adenosine and hypoxanthine have shown a time-dependent inhibitory effect on GVBD in complex and denuded oocytes and the inhibitory effect was maximized in culture medium containing hypoxanthine and adenosine. HFCS and HMFF increased the GVBD rates in the presence of the purines, thus HFCS and HMFF may contain a factor that could reverse the inhibitory effect of purines. Also complex oocytes were more sensitive to not only the inhibitory effect of purines but the promoting action of HMFF on GVBD than denuded oocytes. Therefore it was reconfirmed that granulosa cells play an important part in meiotic arrest and resumption.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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