Transactions of the Korean hydrogen and new energy society
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v.33
no.5
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pp.507-514
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2022
There is growing interest in sustainable energy sources that can reduce fossil fuel dependence and environmental pollution while meeting rapidly growing energy demands. Hydrogen have been investigated as one of the ideal alternative energies because it has relatively high efficiency without emitting pollutants. The light-sensitized enzymatic (LSE) system, which uses hydrogenase-enzymes, is one of the methods towards economically feasible system configurations that enhance the rate of hydrogen generation. Hydrogenase is an enzyme that catalyzes a reversible reaction that oxidizes molecular hydrogen or produces molecular hydrogen from protons and electrons. In this paper, utilization of [NiFe]-hydrogenase (from Pyrococcus furiosus) in photoelectrochemical hydrogen production system such as handling, immobilization, physicochemical and electrochemical analysis, process parameters, etc. was introduced.
Transactions of the Korean hydrogen and new energy society
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v.19
no.2
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pp.124-131
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2008
Crude cytoplasmic fraction of phototrophic purple sulfur bacterium, Thiocapsa roseopersicina NCIB 8347, were initially prepared and purified by sonication, ultracentrifugation, ammonium sulfate fractionation and heat-treatment and it has been previously reported. Using various applications of chromatography far the purification of membrane-bound and soluble hydrogenases from heat-treated enzyme fraction were studied at present report. When the heat-treated enzyme preparation was applied to the anion column chromatography using Q-sepharose, Fraction I and II, which were extracted with the KCl 0-0.5 M gradient, showed the specific evolution hydrogenase activity 3.86 and 2.27 U/mg-protein respectively. Specific hydrogenase activitys of Fraction I and II were further increased to 4.35 and 7.46 U/mg-protein for Fraction I and to 2.49 and 4.41 U/mg-protein fur Fraction II respectively, when hydrophobic interaction column, Phenyl superose, and anion exchange column, Mono-Q, were applied. Size exclusion chromatography using superdex 200 concentrated the hydrogenase Fraction I and II to 9.19 and 7.84 U/mg-protein respectively at the final step of purification.
For biohydrogen production, hydrogenase is a key enzyme. In the present work we performed search of [NiFe]-hydrogenases from hydrogen producing microorganisms using degenerate polymerase chain reaction (PCR) strategy. Degenerate primers were designed from the conserved region of [NiFe]-hydrogenase group I especially on structural genes encoding for catalytic subunit of [NiFe]-hydrogenase from bacteria producing hydrogen. Most of [NiFe]-hydrogenase (group I) are expressed via complex mechanism with aid of auxiliary protein and localized through twin-arginine translocation pathway. [NiFe]-hydrogenase is composed of large and small subunits for catalytic activity. It is known that only small subunit has signal peptide for periplasmic localization and large & small subunitscome together before localization. During this process, large subunit is treated by endopeptidase for maturation. Based on these information we used signal peptide sequence and C-terminal of large subunit by recognized by endopeptidase as templates for degenerate primers. About 2,900 bp of PCR products were successfully amplified using the designed degenerate primers from genomic DNAs of several microorganisms. The amplified PCR products were inserted into T-vector and then sequenced to confirm.
Transactions of the Korean hydrogen and new energy society
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v.17
no.4
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pp.371-378
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2006
Effect of $(NH_4)_2SO_4$ precipitation and heat-treatment on hydrogenase which was extracted from the cytoplasmic fraction of the phototrophic purple sulfur bacterium Thiocapsa roseopersicina NCIB 8347 was studied. Crude enzyme extract was prepared by centrifugation($28,000{\times}g$, $400,000{\times}g$) after sonication of cells grown under photosynthetic condition for 96 hrs. Various conditions of $(NH_4)_2SO_4$ precipitation and heat-treatment were examined and the effect of protein concentration was analyzed by SDS-electrophoresis between the treatments. Optimum conditions for $(NH_4)_2SO_4$ precipitation and heat-treatment for evolution hydrogenase activity were 40-60% saturation and $60^{\circ}C$ for 20 min, respectively, which exhibited the specific hydrogenase activity of 0.78 U/mg-protein. Specific hydrogenase activity was decreased to 31.6% when the heat-treatment at $60^{\circ}C$ increased from 20 min to 5 hrs.
Kim, Yong-Seok;Song, Hyun-Ouk;Choi, Ik-Hwa;Park, Soon-Jung;Ryu, Jae-Sook
Parasites, Hosts and Diseases
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v.44
no.4
s.140
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pp.373-378
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2006
To evaluate whether iron concentration in TYM medium influence on hydrogenosomal enzyme gene expression and hydrogenosomal membrane potential of Trichomonas vaginalis, trophozoites were cultivated in iron-depleted, normal and iron-supplemented TYM media. The mRNA of hydrogenosomal enzymes, such as pyruvate ferredoxin oxidoreductase (PFOR), hydrogenase, ferredoxin and malic enzyme, was increased with iron concentrations in T. vaginalis culture media, measured by RT-PCR. Hydrogenosomal membrane potentials measured with $DiOC_6$ also showed similar tendency, e.g. T. vaginalis cultivated in iron-depleted and iron-supplemented media for 3 days showed a significantly reduced and enhanced hydrogenosomal membrane potential compared with that of normal TYM media, respectively. Therefore, it is suggested that iron may regulate hydrogenosomal activity through hydrogenosomal enzyme expression and hydrogenosomal membrane potential.
The initial growth of Clostridium acetobutylicum was not inhibited by 1 atm of H$_2$ while H$_2$ reduced glucose consumption in a solventogenic culture of a phosphate limited 2-stage chemostat. Under 1 atm of H$_2$, a solventogenic culture consumed hydrogen, but an acidogenic culture produced hydrogen. H$_2$ consumption by the solventogenic culture was enhanced by the addition of 5 mM neutral red, an artificial electron carrier with a redox potential of -325 mV. Hydrogenase activity, measured in both directions of production and consumption, showed that activity coupled with methyl viologen is higher in an acidogenic culture than in a solventogenic culture, and that the two cultures have similar activities for methylene blue reduction. The solventogenic culture showed a higher activity coupled with neutral red than the acidogenic culture. From these results, it is hypothesized that hydrogen producing hydrogenase activity is high during the acidogenic phase, and decreases as solventogenesis starts, and that the solventogenic culture produces a second hydrogenase which uses an electron carrier other than ferredoxin. This hypothesis was supported by the fact that enzyme activities involved in electron flow can be coupled to neutral red, indepedent of ferredoxin, and that neutral red addition to the fermentation system increased butanol yield, with a decrease in production of less reduced fermentation products, and $H^2$.
Kim, Young-Mog;Lee, Yun-Kyoung;Kim, Kyoung-Lan;Lee, Eun-Woo;Lee, Myung-Suk
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.41
no.2
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pp.102-106
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2008
Formaldehyde, an indoor volatile organic compound, is considered toxic due to its carcinogenic risk. Recently, we isolated a formaldehyde-degrading bacterium Pseudomonas sp. YK-32. A crude enzyme prepared from YK-32 also degraded formaldehyde, suggesting that YK-32 cells have formaldehyde hydrogenase activity which is one of the important factors in formaldehyde degradation. The formaldehyde hydrogenase activity was increased 1.25 fold by adding 0.1 % glucose and formaldehyde to the culture medium. In addition, treatment with 1 mM EDTA as a permeabilizer promoted the degradation of formaldehyde and increased the enzymatic activity.
Overexpression of the genes encoding phosphoeneolpyruvate carboxykinase (pckA) and NAD-dependent malic enzyme (maeA) facilitates higher intracellular ATP and NAD(P)H concentrations, respectively, under aerobic conditions in Escherichia coli. To verify a hypothesis that higher intracellular energy reserves might contribute to H2 fermentation, wild-type E. coli strains overexpressing pckA and maeA were cultured under anaerobic conditions in a glucose minimal medium. Overexpression of pckA and maeA enabled E. coli to produce 3-times and 4-times greater H2 (193 and 284 nmol, respectively) than the wild type (66 nmol H2). The pckA and maeA genes were further overexpressed in a hydrogenase-3-enhanced E. coli strain. The hydrogenase-3-enhanced strain (W3110+fhlA) produced 322 nmol H2, whereas the ATP-enhanced strain (W3110+fhlA+pckA) produced 50% increased H2 (443 nmol). Total H2 in the NAD(P)H-enhanced strain (W3110+fhlA+maeA) was similar to that in the control strain at 319 nmol H2. Possible explanations for the contribution of the increased cellular energy reserves to the enhanced hydrogen fermentation observed are discussed based on the viewpoint of metabolic engineering strategy.
Esophageal cancer represents the fourth most common gastrointestinal cancer and generally confers a poor prognosis. Prostaglandin-producing cyclo-oxygenase has been implicated in the pathogenesis of esophageal cancer growth. Here we report that prostaglandin dehydrogenase, the major enzyme responsible for prostaglandin degradation, is significantly reduced in expression in esophageal cancer in comparison to normal esophageal tissue. Reconstitution of PGDH expression in esophageal cancer cells suppresses cancer cell growth, at least in part through preventing cell proliferation and promoting cell apoptosis. The tumor suppressive role of PGDH applies equally to both squamous cell carcinoma and adenocarcinoma, which enriches our understanding of the pathogenesis of esophageal cancer and may provide an important therapeutic target.
Extracts of CO-autotrophically grown cells of Acinetobacter sp. 1 were shown to use thionin, methylene blue, or 2,6-dichlorophenol-indophenol, but not NAD, NADP, FAD, or FMN, as electron acceptors for the oxidation of CO under strictly anaerobic conditions. The CO dehydrogenase (CO-DH) in the thes bacterium was found to be an inducible enzyme. The enzyme activity was determined by an assay based on the CO-dependent reduction of thionin. Maximal reaction rates were found at pH 7.5 and $60^{\circ}C$, and the Arrhenius plot revealed an activation energy of 6.1 kcal/mol(25.5kJ/mol). THe $K_m$ m/ for CO was $154{\mu}M$. Known metalchelating agents tested had no effects on the CO-DH activity. No divalent cations tested affect the enzyme activity significantly escept $Cu^{2+}$ which suppressed the activity completely. The enzyme was inhibited by glucose and succinate. The same extracts catalyzed oxidation of hydrogen gas and formate with thionin as electron acceptor. The CO-DH of Acinetobacter sp. 1 was to have no immunological relationship with that of Pseudomonas carboxydohydrogena.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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