Caesalpinia sappan L. has long been commonly used in oriental folk medicines to treat diseases. To investigate the antibacterial effects from C. sappan L. heart wood, the MeOH soluble extract was successively fractionated by using hexane, $CHC1_3$, EtOAc, BuOH, MeOH, and $H_2O$. Among of these extracts, the EtOAc fraction which partitioned to 3.94% of the highest yields was to be the most active against all human pathogenic bacteria in this experiment. In addition, the antibacterial activities of the EtOAc fraction were more effective against Gram (+) bacteria compared to those against Gram (-) bacteria, which showed difference of the antibacterial activities against Gram (-) bacteria. To confirm the identity of the active substances, the EtOAc fraction was further separated by silica gel adsorption column, high performance liquid chromatography, and 98.48% purity of brazilin (1.67 mg)/EtOAc (10 mg) fraction was obtained from 300 g of C. sappan L. heart wood. The isolated active substance was a single compound of yellow crystalline, and was identified as brazilin ($C_{16}H_{14}O_5$) by MS, and $^lH$-NMR and $^{13}C$-NMR. These results suggest that the brazilin in the EtOAc fraction from MeOH extract of C. sappan L. has a potential as a natural therapeutic agent against human pathogenic Gram (+) bacteria such as Staphylococcus aureus.
We investigated novel antibacterial and synergistic activities of isocryptomerin isolated from Selaginella tamariscina. Isocryptomerin showed potent antibacterial activity against Gram-positive and Gram-negative bacterial strains including clinical isolates of antibiotic-resistant species such as methicillin-resistant Staphylococcus aureus(MRSA). Additionally, we further investigated the synergistic activity of isocryptomerin with a conventional antibiotic against MRSA. The result indicated that isocryptomerin had considerable synergistic activity in combination with cefotaxime. In summary, the present study suggests that isocryptomerin may have potential as a novel therapeutic agent for treatment of infectious diseases by not only human pathogenic bacteria but also multidrug-resistant bacteria.
A number of bacterial species coexist in oral cavities as a biofilm rather than a planktonic arrangement. By forming an oral biofilm with quorum sensing properties, microorganisms can develop a higher pathogenic potential and stronger resistance to the host immune system and antibiotics. Hence, the inhibition of biofilm formation has become a major research issue for the future prevention and treatment of oral diseases. In this study, we investigated the effects of pentose on biofilm formation and phenotypic changes using wild type oral bacteria obtained from healthy human saliva. D-ribose and D-arabinose were found to inhibit biofilm formation, but have no effects on the growth of each oral bacterium tested. Pentoses may thus be good candidate biofilm inhibitors without growth-inhibition activity and be employed for the future prevention or treatment of oral diseases.
Pathogenic bacteria that colonize the human intestinal tract have evolved strategies to overcome acidic conditions when they pass through the gastrointestinal tract. Amino acid-mediated acid resistance systems are effective survival strategies in a stomach that is full of amino acid substrate. The amino acid antiporter, amino acid decarboxylase, and ClC chloride antiporter are all engaged in these systems, and each one plays a role in protecting against or adapting to the acidic environment. The ClC chloride antiporter, a member of the ClC channel family, eliminates negatively charged intracellular chloride ions to avoid inner membrane hyperpolarization as an electrical shunt of the acid resistance system. In this review, we will discuss the structure and function of the prokaryotic ClC chloride antiporter of amino acid-mediated acid resistance system.
Kim, Dong-Hun;Oh, Yong Hwa;Lee, Bong-Joo;Lee, Jung-Yun
Journal of Soil and Groundwater Environment
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v.27
no.2
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pp.61-75
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2022
This study evaluated the potential threat of agricultural and human activities to groundwater in the Noseong stream watershed, a typical agricultural area, through hydrogeochemical characteristics and microbial community analyses. The groundwater in the study area was Ca-SO4 and Ca-HCO3 types alluvial aquifer mainly used for agricultural and living purposes, and contained high levels of NO3- and Cl- ions generated from anthropogenic sources such as fertilizer, livestock wastewater, and domestic sewage. Proteobacteria was most abundant in all samples with an average of 46.1% while Actinobacteria, Bacteroidetes, and Cyanobacteria were dominant on an occasional basis. The prevalence of aerobic bacteria such as the genus Mycobacterium, Flavobacterium, and Sphingomonas suggests that groundwater was well connected with the surface layer. The potential pathogen Mycobacterium was detected in most samples, and other pathogenic bacteria were also widely distributed, indicating the vulnerability to contamination. Therefore, an integrated management system is required to secure the sustainable use of groundwater in agricultural areas with high groundwater dependence.
Fifteen cyclic dipeptides (CDPs) containing proline, one cyclo(Phe-Ala) without proline, and a non-peptidyl ᴅⳑ-3-phenyllactic acid were previously identified in the culture filtrates of Lactobacillus plantarum LBP-K10, an isolate from kimchi. In this study, we used Japanese quail (Coturnix japonica) eggs to examine the effects of probiotic supplementation on the antimicrobial CDPs extracted from quail eggs (QE). Eggshell-free QE were obtained from two distinct groups of quails. The first group (K10N) comprised eggs from unsupplemented quails. The second group (K10S) comprised eggs from quails supplemented with Lb. plantarum LBP-K10. The QE samples were extracted using methylene chloride through a liquid-liquid extraction process. The resulting extract was fractionated into 16 parts using semi-preparative high-performance liquid chromatography. Two fractions, Q6 and Q9, were isolated from K10S and identified as cis-cyclo(ⳑ-Ser-ⳑ-Pro) and cis-cyclo(ⳑ-Leu-ⳑ-Pro). The Q9 fraction, containing cis-cyclo(ⳑ-Leu-ⳑ-Pro), has shown significant inhibitory properties against the proliferation of highly pathogenic multidrug-resistant bacteria, as well as human-specific and phytopathogenic fungi. Some of the ten combinations between the remaining fourteen unidentified fractions and two fractions, Q6 and Q9, containing cis-cyclo(ⳑ-Ser-ⳑ-Pro) and cis-cyclo(ⳑ-Leu-ⳑ-Pro) respectively, demonstrated a significant increase in activity against multidrug-resistant bacteria only when combined with Q9. The activity was 7.17 times higher compared to a single cis-cyclo(ⳑ-Leu-ⳑ-Pro). This study presents new findings on the efficacy of proline-containing CDPs in avian eggs. These CDPs provide antimicrobial properties when specific probiotics are supplemented.
Members of the genus Bifidobacterium are prevalent in the human colon and represent up to 90% of all bacteria in fecal samples of breast-fed infants, and 3~5% of adult fecal microbiota. Bifidobacteria produce organic acids, thus reducing the colon pH to a level inhibitory for pathogenic bacteria. They can also detoxify a number of toxic compounds and adhere to the colon mucosa, thus preventing the adherence of pathogens and induction of colon cancer. Recently, we identified a novel Bifidobacterium longum subsp. longum strain, KACC 91563, in a fecal sample of a Korean neonate, and demonstrated its functional properties. We showed that B. longum KACC 91563 alleviates food allergy through mast cell suppression and produces antioxidative and antihypertensive peptides by casein hydrolysis. Dairy products are considered as an ideal food system for the delivery of probiotic cultures to the human gastrointestinal tract. Cheese affords protection to probiotic microbes during gastric transit due to its relatively high pH, more solid consistency, higher fat content, and higher buffering capacity. Incorporation of B. longum KACC 91563 into cheese making is currently under study.
As a step towards discovering novel pathogenesis-related proteins, we performed a genome scale computational identification and characterization of secreted and transmembrane (TM) proteins, which are mainly responsible for bacteria-host interactions and interactions with other bacteria, in the genomes of six representative Burkholderia species. The species comprised plant pathogens (B. glumae BGR1, B. gladioli BSR3), human pathogens (B. pseudomallei K96243, B. cepacia LO6), and plant-growth promoting endophytes (Burkholderia sp. KJ006, B. phytofirmans PsJN). The proportions of putative classically secreted proteins (CSPs) and TM proteins among the species were relatively high, up to approximately 20%. Lower proportions of putative type 3 non-classically secreted proteins (T3NCSPs) (~10%) and unclassified non-classically secreted proteins (NCSPs) (~5%) were observed. The numbers of TM proteins among the three clusters (plant pathogens, human pathogens, and endophytes) were different, while the distribution of these proteins according to the number of TM domains was conserved in which TM proteins possessing 1, 2, 4, or 12 TM domains were the dominant groups in all species. In addition, we observed conservation in the protein size distribution of the secreted protein groups among the species. There were species-specific differences in the functional characteristics of these proteins in the various groups of CSPs, T3NCSPs, and unclassified NCSPs. Furthermore, we assigned the complete sets of the conserved and unique NCSP candidates of the collected Burkholderia species using sequence similarity searching. This study could provide new insights into the relationship among plant-pathogenic, humanpathogenic, and endophytic bacteria.
Shiga toxins (Stxs) are the main virulence factors expressed by the pathogenic Stx-producing bacteria, namely, Shigella dysenteriae serotype 1 and certain Escherichia coli strains. These bacteria cause widespread outbreaks of bloody diarrhea (hemorrhagic colitis) that in severe cases can progress to life-threatening systemic complications, including hemolytic uremic syndrome (HUS) characterized by the acute onset of microangiopathic hemolytic anemia and kidney dysfunction. Shiga toxicosis has a distinct pathogenesis and animal models of Stx-associated HUS have allowed us to investigate this. Since these models will also be useful for developing effective countermeasures to Stx-associated HUS, it is important to have clinically relevant animal models of this disease. Multiple studies over the last few decades have shown that mice injected with purified Stxs develop some of the pathophysiological features seen in HUS patients infected with the Stx-producing bacteria. These features are also efficiently recapitulated in a non-human primate model (baboons). In addition, rats, calves, chicks, piglets, and rabbits have been used as models to study symptoms of HUS that are characteristic of each animal. These models have been very useful for testing hypotheses about how Stx induces HUS and its neurological sequelae. In this review, we describe in detail the current knowledge about the most well-studied in vivo models of Stx-induced HUS; namely, those in mice, piglets, non-human primates, and rabbits. The aim of this review is to show how each human clinical outcome-mimicking animal model can serve as an experimental tool to promote our understanding of Stx-induced pathogenesis.
Background: Nano-biotechnology is recognized as offering revolutionary changes in various fields of medicine. Biologically synthesized silver nanoparticles have a wide range of applications. Materials and Methods: Silver nanoparticles (AgNPs) were biosynthesized with an aqueous extract of Pterocladiella (Pterocladia) capillacea, used as a reducing and stabilizing agent, and characterized using UV-VIS spectroscopy, Fourier Transform Infra red (FT-IR) spectroscopy, transmission electron microscopy (TEM) and energy dispersive analysis (EDX). The biosynthesized AgNPs were tested for cytotoxic activity in a human hepatocellular carcinoma ($HepG_2$) cell line cultured in Dulbecco's modified Eagle medium supplemented with 10% fetal bovine serum, 1% antibiotic and antimycotic solution and 2 mM glutamine. Bacterial susceptibility to AgNPs was assessed with Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis [Gram+ve] and Pseudomonas aeruginosa and Escherichia coli [Gram-ve]. The agar well diffusion technique was adopted to evaluate the bactericidal activity of the biosynthesized AgNPs using Ampicillin and Gentamicin as gram+ve and gram-ve antibacterial standard drugs, respectively. Results: The biosynthesized AgNPs were $11.4{\pm}3.52$ nm in diameter. FT-IR analysis showed that carbonyl groups from the amino acid residues and proteins could assist in formation and stabilization of AgNPs. The AgNPs showed potent cytotoxic activity against the human hepatocellular carcinoma ($HepG_2$) cell line at higher concentrations. The results also showed that the biosynthesized AgNPs inhibited the entire panel of tested bacteria with a marked specificity towards Bacillus subtillus. Conclusions: Cytotoxic activity of the biosynthesized AgNPs may be due to the presence of alkaloids present in the algal extract. Our AgNPs appear more bactericidal against gram-positive bacteria (B. subtillus).
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