Stem cells have self-renewal capacity, long-term viability, and multiline age potential. Adult bone marrow contains mesenchymal stem cells. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BMSCs) are progenitors of skeletal tissue components and can differentiate into adipocytes, chondrocytes, osteoblasts, and myoblasts in vitro and undergo differentiation in vivo. However, the clinical use of BMSCs has presented problems, including pain, morbidity, and low cell number upon harvest. Recent studies have identified a putative stem cell population within the adipose tissue. Human adipose tissue contains pluripotent stem cells simillar to bone marrow-derived stem cells that can differentiate toward the osteogenic, adipogenic, myogenic, and chondrogenic lineages. Human adipose tissue-derived stem cells (ATSCs) could be proposed as an alternative source of adult bone marrow stem cells, and could be obtained in large quantities, under local anesthesia, with minimal discomfort. Human adipose tissue obtained by liposuction was processed to obtain ATSCs. In this study, we compared the osteogenic differentiation of ATSCs in a specific osteogenic induction medium with that in a non-osteogenic medium. ATSCs were incubated in an osteogenic medium for 28 days to induce osteogenesis respectively. Osteogenic differentiation was assessed by von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific bone sialoprotein, osteocalcin, collagen type I and alkaline phosphatase, bone morphogenic protein 2, bone morphogenic protein 6 was confirmed by RT-PCR. ATSCs incubated in the osteogenic medium were stained positively for von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific genes was also detected. Since this cell population can be easily identified through fluorescence microscopy, it may be an ideal source of ATSCs for further experiments on stem cell biology and tissue engineering. The present results show that ADSCs have an ability to differentiate into osteoblasts. In the present study, we extend this approach to characterize adipose tissue-derived stem cells.
Emphysema, a pathologic component of the chronic obstructive pulmonary disease, causes irreversible destruction of lung. Many researchers have reported that mesenchymal stem cells can regenerate lung tissue after emphysema. We evaluated if spheroid human adipose-derived mesenchymal stem cells (ASCs) showed greater regenerative effects than dissociated ASCs in mice with elastase-induced emphysema. ASCs were administered via an intrapleural route. Mice injected with spheroid ASCs showed improved regeneration of lung tissues, increased expression of growth factors such as fibroblast growth factor-2 (FGF2) and hepatocyte growth factor (HGF), and a reduction in proteases with an induction of protease inhibitors when compared with mice injected with dissociated ASCs. Our findings indicate that spheroid ASCs show better regeneration of lung tissues than dissociated ACSs in mice with elastase-induced emphysema.
Ko, Minho;Lee, Kwon Young;Kim, Sae Hoon;Kim, Manho;Choi, Jung Hoon;Im, Wooseok;Chung, Jin Young
Korean Journal of Veterinary Research
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v.58
no.1
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pp.33-37
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2018
Various trials have been conducted to develop therapies for serious untreatable diseases. Among these, those using stem cells have shown great promise, and adipose-derived mesenchymal stem cells (ADMSCs) are easier to obtain than other types of stem cells. Prior to clinical trials, characterization of ADMSCs with monoclonal antibodies should be performed. However, it is difficult to use species-specific antibodies for veterinarians. This study was conducted to confirm the panel of human antibodies applicable for use in immunophenotypic characterization of canine adipose-derived stem cells and feline ADMSCs extracted from subcutaneous adipose tissue collected during ovariohysterectomy. For flow cytometric immunophenotyping, the third passages of canine ADMSC and feline ADMSC and human CD31, CD34, CD42, CD44, CD62 and CD133 antibodies were used. Of these, CD133 reacted with canine cells (3.74%) and feline cells (1.34%). CD133 is known as a marker related with more primitive stem cell phenotype than other CD series. Because this human CD133 was not a species-specific antibody, accurate percentages of immunoreactivity were not confirmed. Nevertheless, the results of this study confirmed human CD133 as a meaningful marker in canine and feline ADMSCs.
Human eyelid adipose-derived stem cells (hEAs) and amniotic mesenchymal stem cells (hAMs) are very valuable sources for the cell therapeutics. Both types of cells have a great proliferating ability in vitro and a multipotency to differentiate into adipocytes, osteoblasts and chondrocytes. In the present study, we evaluated their stem cell characteristics after long-time cryopreservation for 6, 12 and 24 months. When frozen-thawed cells were cultivated in vitro, their cumulative cell number and doubling time were similar to freshly prepared cells. Also they expressed stem cell-related genes of SCF, NANOG, OCT4, and TERT, ectoderm-related genes of NCAM and FGF5, mesoderm/endoderm-related genes of CK18 and VIM, and immune-related genes of HLA-ABC and ${\beta}$2M. Following differentiation culture in appropriate culture media for 2-3 weeks, both types of cells exhibited well differentiation into adipocyte, osteoblast, and chondrocyte, as revealed by adipogenic, osteogenic or chondrogenic-specific staining and related genes, respectively. In conclusion, even after long-term storage hEAs and hAMs could maintain their stem cell characteristics, suggesting that they might be suitable for clinical application based on stem cell therapy.
Bone marrow derived mesenchymal stem cells (BMSCs) are largely studied for their potential clinical use. But it is hard to get enough number of those cells for clinical trials and give serious pain to the patients. Adipose tissue is derived from the embryonic mesenchyme and contains a stroma that is easily isolated with large amount. This cell population (adipose derived stem cells: ADSCs) can be isolated from human lipoaspirates and like MSCs, differentiate toward the osteogenic, adipogenic, myogenic and chondrogenic lineages. To confirm whether adipose tissue contains stem cells, the ADSCs extracted from omental or subcutaneous fat tissue were expanded during third to fifth passages. The phenotype of the ADSCs was identified by the conventional cell surface markers using flow cytometry: positive for CD29 and CD44, but negative for CD34, CD45, CD117 and HLA-DR that similar to those observed on BMSCs. The ADSCs were able to differentiate into the osteoblast or adipocytes with induction media. Finally, ADACs expressed multiple CD marker antigens similar to those observed on BMSCs and differentiated into osteoblast, adipocyte. With this, human adipotissue contains multipotent cells and may represent an alternative stem cell source to bone marrow-derived MSCs.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.32
no.4
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pp.327-333
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2006
Future cell-based therapies such as tissue engineering will benefit from a source of autogenous pluripotent stem cells. There are embryonic stem cells (ESC) and autologous adult stem cells, two general types of stem cells potentilally useful for these applications. But practical use of ESC is limited due to potential problems of cell regulation and ethical considerations. To get bone marrow stem cells is relatively burden to patients because of pain, anesthesia requirement. The ideal stem cells are required of such as the following advantages: easy to obtain, minimal patient discomfort and a capability of yielding enough cell numbers. Adipose autologus tissue taken from intraoral fatty pad or abdomen may represent such a source. Our study designed to demonstrate the ability of human adipose tissue-derived stromal cells (hATSC) from human abdominal adipose tissue diffentiating into osteocyte and adipocyte under culture in vitro conditions. As a result of experiment, we identified stromal cell derived adipose tissue has the multilineage potentiality under appropriate culture conditions. And the adipose stromal cells expressed several mesenchymal stem cell related antigen (CD29, CD44) reactions. Secondary, we compared the culture results of a group of hATSC stimulated with TGF-${\beta}$1, bFGF with a hATSC group without growth factors to confirm whether cytokines have a important role of the proliferation in osteogenic differentiation. The role of cytokines such as TGF-${\beta}$1, bFGF increased hATSC's osteogenic differentiation especially when TGF-${\beta}$1 and bFGF were used together. These results suggest that adipose stromal cells with growth factors could be efficiently available for cell-based bone regeneration.
Background and Objectives: Many preclinical studies have been conducted using animal disease models to determine the effectiveness of human mesenchymal stem cells (hMSCs) for treating immune and inflammatory diseases based on the belief that hMSCs are not immunogenic across species. However, several researchers have suggested xenogeneic immune responses to hMSCs in animals, still without detailed features. This study aimed to investigate a xenogeneic humoral immune response to hMSCs in mice in detail. Methods and Results: Balb/c mice were intraperitoneally injected with adipose tissue-derived or Wharton's jelly-derived hMSCs. Sera from these mice were titrated for each isotype. To confirm specificity of the antibodies, hMSCs were stained with the sera and subjected to a flow cytometic analysis. Spleens were immunostained for proliferating cell nuclear antigen to verify the germinal center formation. Additionally, splenocytes were subjected to a flow cytometric analysis for surface markers including GL-7, B220, CD4, CD8, CD44, and CD62L. Similar experiments were repeated in C57BL/6 mice. The results showed increased IgG1 and IgG2a titers in the sera from Balb/c mice injected with hMSCs, and the titers were much higher in the secondary sera than in the primary sera. These antibodies were specifically stained the hMSCs. Germinal centers were observed in the spleen, and flow cytometric analysis of the splenocytes showed higher frequencies of centroblasts (B220+ GL7+) and memory T cells (CD62L+ CD44+) both in CD4+ and CD8+ subsets. Similar results were obtained for C57BL/6 mice. Conclusions: hMSCs induced a humoral immune response in mice, with characters of T cell-dependent immunity.
Park, Seul-Ki;Lee, Jung Shin;Choi, Eun Kyung;You, Dalsan;Kim, Choung-Soo;Suh, Nayoung
BMB Reports
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v.47
no.8
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pp.469-474
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2014
Cell therapies utilizing mesenchymal stem cells (MSCs) have a great potential in many research and clinical settings. The mechanisms underlying the therapeutic effects of MSCs have been studied previously and the paracrine effects elicited by their production of various growth factors and cytokines were recognized as being crucial. However, the molecular controls that govern these paracrine effects remain poorly understood. To elucidate the molecular regulators of this process, we performed a global knockdown of microRNAs (miRNAs) in human adipose-derived mesenchymal stem cells (hADSCs) by inhibiting DGCR8, a key protein in miRNA biogenesis. Global disruption of miRNA biogenesis in hADSCs caused dramatic changes in the expression of subsets of growth factors and cytokines. By performing an extensive bioinformatic analysis, we were able to associate numerous putative miRNAs with these genes. Taken together, our results strongly suggest that miRNAs are essential for the production of growth factors and cytokines in hADSCs.
In most clinical applications, human mesenchymal stem cells (hMSCs) are expanded in large scale before their administration. Prolonged culture in vitro results in cellular senescence-associated phenotypes, including accumulation of reactive oxygen species (ROS) and decreased cell viabilities. Profiling of stem cell-related genes during in vitro expansion revealed that numerous canonical pathways were significantly changed. To determine the effect of selenocysteine (Sec), a rare amino acid found in several antioxidant enzymes, on the replicative senescence in hMSCs, we treated senescent hMSCs with Sec. Supplementation of Sec in the culture medium in late-passage hMSCs reduced ROS levels and improved the survival of hMSCs. In addition, a subset of key antioxidant genes and Sec-containing selenoproteins showed increased mRNA levels after Sec treatment. Furthermore, ROS metabolism and inflammation pathways were predicted to be downregulated. Taken together, our results suggest that Sec has antioxidant effects on the replicative senescence of hMSCs.
Jo, Jung-Youn;Kang, Sung-Keun;Choi, In-Su;Ra, Jeong-Chan
Development and Reproduction
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v.13
no.4
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pp.227-237
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2009
Recently, adipose mesenchymal stem cells (AdMSC) that are similar to bone marrow MSC and blood derived MSC are thought to be another source for stem cell therapy. However, the diseases that can be applied for stem cells therapy are age-dependent degenerative diseases. Accordingly, the present study investigated the growth and differentiation potential to neural cells of human AdMSC (hAdMSC) obtained from aged thirty, forty and fifty. The growth of cells and cell viability were measured by passage and neural differentiation of hAdMSC was induced in neural differentiation condition for 10 days. Our results demonstrated that cell number, viability and morphology were not different from hAdMSC by age and passage. Immunofluorescence analysis of neural cell marker (TuJ1, NSE, Sox2, GFAP or MAP2) demonstrated no significant differences in neural cell differentiation by age and passage. As the number of passage was increased, the mRNA level of MAP2 and Sox2 was decreased in hAdMSC from age of 50 compared to hAdMSC from age of 30. In conclusion, the present study demonstrated that ability of neural cell differentiation of hAdMSC was maintained with ages, suggesting that autologous stem cells from aged people can be applied for stem cell therapy with age-dependent neural disease with the same stem cell quality and ability as stem cell derived from young age.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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