Finding new antimicrobial activities by functional metagenomics has been shown to depend on the heterologous host used to express the foreign DNA. Therefore, efforts are devoted to developing new tools for constructing metagenomic libraries in shuttle vectors replicatable in phylogenetically distinct hosts. Here we evaluated the use of the Escherichia coli-Bacillus subtilis shuttle vector pHT01 to construct a forest-soil metagenomic library. This library was screened in both hosts for antimicrobial activities against four opportunistic bacteria: Proteus vulgaris, Bacillus cereus, Staphylococcus epidermidis, and Micrococcus luteus. A new antibacterial activity against B. cereus was found upon screening in B. subtilis. The new antimicrobial agent, sensitive to proteinase K, was not active when the corresponding DNA fragment was expressed in E. coli. Our results validate the use of pHT01 as a shuttle vector and B. subtilis as a host to isolate new activities by functional metagenomics.
As a first step for developing Lactobacillus strains capable of fermenting starch directly, the $\alpha$-amylase gene (amyL) from Bacillus licheniformis (Kim et al., 1988. Kor. J. Appl. Microbiol. Bioeng. 16: 369-373) was introduced into Lactobacillus casei strains and the level of $\alpha$-amylase expression in transformants was examined. 3 kb EcoRI fragments encompassing amyL were subcloned into the suitable lactococcal cloning vectors (pSA3, pMG36e, and p1L2530) and then recombinant plasmids were introduced into E. coli and L. casei strains by electroporation. Only one recombinant plasmid, $pIL2530\alpha$ was able to transform few L. casei strains tested at low efficiencies. The transformation efficiencies with the plasmid into L. casei YIT 9018 and L. casei A Tee 4646 were less than $10^2/\mu$ g pIL2530\alpha$. The level of amylase activities in L. casei was five to ten-fold lower than that in E. coli cells. $p1L2530\alpha$ was stably maintained in Lactobacillus strains in the presence of Em (5 $\mu $g/ml) but without antibiotic selection, it was unstable so more than 95$%$ of cells lost plasmids after a week of daily subculturing.
Thomas Juretzek;Hui-Jie wang;Nicaud, Jean-Marc;Stephan Mauersberger;Gerold Barth
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제5권5호
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pp.320-326
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2000
Promoters of the genes G3P, ICL1, POT1, POX1, POX2 and POX5 of the yeast Y. lipolytica were studied in respect to their regulations and activities during growth on different carbon sources. The aim of this study was to select suitable promoters for high expression of heterologous genes in this yeast. For this purpose the promoters were fused with the reporter gene lacZ of E. coli and integrated as single copies into the genome of Y. lipolytica strain PO1d. The measurement of expressed activities of ${\beta}$-galactosidase revealed that pICL1, pPOX2 and pPOT1 are the strongest regulable promoters available for Y. lipolytica, at present. pPOX2 and pPOT1 were highly induced during growth on oleic acid and were completely repressed by glucose and glycerol. pICL1 was strongly inducible by ethanol besides alkanes and fatty acids, however, not completely repressible by glucose or glycerol. Ricinoleic acid methyl ester appeared as a very strong inducer for pPOT1 and pPOX2, in spite of that it inhibited growth of Y. lipolytica transformants.
As an efffort ot construct LAB (latice acid bacteria), capable of utilizing starch as fermentation substrate without the aid of externally supplied enzymes, plasmid vectors containing the amyL($\alpha$-amylase/pullulansase gene) from Clostridium thermophydrosulfuricum, and glucoamylase cDNA from Asperigillus shirousamii were constructed and introduced itno E. coli and L. lactis. For expression in procaryotes , 1.9kb glucoamylase cDNA encoding the mature form of enzyme was PCR amplified and translationaly fused to a PCR amplified 260 bp fragment containing the promotor and secretion signals of amyl in the same reading frame. The production of $\alpha$-amylase, Apu, and glucoamlase in E. coli and L. lactis was confirmed by enzyme assay and zymography . Enzymeswere detected in both cellpellets and supernatants, indicating theworking of scretion signals in heterologous hosts. The efficiencies of secretion were varibale depending on the gene and host. The highest $\alpha$- amylase acitivity observed was 1.1 units and most activiity was detected from thecell pellets. The degree of gene expression in both hosts and the effect on the growth of hosts were examined.
In order to use nervous necrosis virus (NNV) virus-like particles (VLPs) as a delivery tool for heterologous antigens or plasmids, we attempted to produce red-spotted grouper nervous necrosis virus (RGNNV) VLPs displaying a partial region of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) glycoprotein at the surface and VLPs that are harboring DNA vaccine plasmids within the VLP. A peptide encoding 105 amino acids of VHSV glycoprotein was genetically inserted in the loop region of NNV capsid gene, and VLPs expressing the partial part of VHSV glycoprotein were successfully produced. However, in the transmission electron microscope analysis, the shape and size of the partial VHSV glycoprotein-expressing NNV VLPs were irregular and variable, respectively, indicating that the normal assembly of capsid proteins was inhibited by the relatively long foreign peptide (105 aa) on the loop region. To encapsulate by simultaneous transformation with both NNV capsid gene expressing plasmids and DNA vaccine plasmids (having an eGFP expressing cassette under the CMV promoter), NNV VLPs containing plasmids were produced. The encapsulation of plasmids in the NNV VLPs was demonstrated by PCR and cells exposed to the VLPs encapsulating DNA vaccine plasmids showed fluorescence. These results suggest that the encapsulation of plasmids in NNV VLPs can be done with a simple one-step process, excluding the process of disassembly-reassembly of VLPs, and NNV VLPs can be used as a delivery tool for DNA vaccine vectors.
본 연구실에서 개발한, 김치에서 분리한 Leu. mesenteroides SY2 유래 pFMBL1 을 바탕으로 구축한 셔틀벡터인, pSJE[7]를 외래유전자 발현에 적합하게 개량한 발현벡터를 구축하였다. Lactococcus lactis LM0230에서 분리한 프로모터 P6C를 pSJE에 도입하였다. P6C 염기서열을 지닌 oligonucleotide 쌍을 따로 제조한 후 annealing을 통해 짧은 DNA 단편을 얻어서 제한효소 처리후 pSJE에 도입하여 pSJE6c를 구축하였다. PSJE6c 효능 검증을 위해서 외래 유전자인 aga와 lacZ를 각각 pSJE6c에 도입하였다. P6C 프로모터와 비교를 위해 고유 프로모터를 지닌 유전자들도 각각 pSJE에 도입하였다. 재조합 plasmid들을 electroporation 방법으로 Lactobacillus brevis 2.14 균주에 도입하고 재조합균주들의 생육곡선과 효소역가 그리고 slot blot으로 전사체 농도를 측정하였다. 결과를 보면 PSJE6c에 클로닝 된 유전자들이 pSJE상의 유전자보다 효소역가들이 약 1.5배에서 2배 정도로 높았다. 전사체 농도 측정 결과도 pSJE6c 들에서 더 많은 전사체가 생성됨을 보여주었다. 이상 결과들은 효율적인 발현벡터들의 사용을 통해서 김치유산균에서 외래유전자 발현 효율을 높일 수 있음을 보여준다.
본 연구에서는 유도성 promoter인 GAL1과 상시성 promoter인 GPD와 ADH1 promoter 하류에 사람 ferritin H-chain 유전자(hfL) 및 사람 ferritin L-chain 유전자(hfL)를 연결하여 재조합 plasmid를 구축하고 이들을 S. cerevisiae 2805에 형질 전환시켜 외래 유전자를 성공적으로 발현시켰다. Ferritin 발현에 미치는 promoter의 영향을 비교한 바, 이 두 단백질 생간에 있어서 GAL1 promoter가 GPD나 ABH1 promoter 보다 더 효율적이었다. GAL1 promoter를 사용한 형질 전환체 (YG-H와 YG-L)에서 H-chain의 발현율은 전체 수용성 단백질 중 4.5%에 해당하였고, L-chain의 발현율은 9.8%에 이르렀다. 각 균주에서 발현된 H 및 L subunit은 비변성 젤은 사용한 전기 영동의 결과 대장균에서 생산된 재조합 단백질과 마찬가지로 자발적으로 holoprotein으로 조합되어졌다. 재조합 H-와 L-ferritin들은 단백질 내공에 철을 축적할 수 있음이 Prussian blue 염색으로 확인되었다. 그리고 효모 세포를 10 mM ferric citrate를 함유한 배지에서 배양했을 때, H-ferritin과 L-ferritin을 생산하는 재조합 효모 균주에 있어서의 펄의 농도는 각각 174.9 $\mu\textrm{g}$ Per gram(dry cell weight)과 148.8 $\mu\textrm{g}$ Per gram(dry cell weight)이었고 야생형 효모 균주에 있어서의 털의 농도는 49.4 $\mu\textrm{g}$ Per gram(dry cell weight)이었다. 이것은 사람 ferritin 유전자를 효모 균주에 발현시킴으로써 효모의 철 함량이 증진되었음을 유추하는 결과이다.
Park Sun-Hee;Won Sung Yong;Park Soo-Young;Yoon Sung Wook;Han Jin Hyun;Jeong Yong Seok
한국미생물학회:학술대회논문집
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한국미생물학회 2000년도 International Meeting 2000
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pp.23-36
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2000
Japanese encephalitis virus (JEV) is the causative agent of a mosquito-borne encephalitis and is transmitted to human via persistently infected mosquito vectors. Although the virus is known to cause only acute infection, there were reports that showed neurological sequelae, latent infection in peripheral mononuclear cells, and recurrence of the disease after acute encephalitis. Innate resistance of certain cell lines, abnormal SN1 expression of the virus, and anti-apoptotic effect of cullular bcl-2 have been suggested as probable causes of JEV persistence even in the absence of defective interfering (DI) particles. Although possible involvement of DI particles in JEV persistence was suggested, neither has a direct evidence for DI presence nor its molecular characterization been made. Two questions asked in this study are whether the DI virus plays any role in JEV persistent infection if it is associated with and what type of change(s) can be made in persistently infected cells to avoid apoptosis even with the continuous virus replication, DI-free standard stock of JEV was infected in BHK-21, Vero, and SW13 cells and serial high multiplicity passages were performed in order to generate DI particles. There different-sized DI RNA species which were defective in both structural and nonstructural protein coding genes. Rescued ORFs of the DI genome maintained in-frame and the presence of replicative intermediate or replicative form RNA of the DI particles confirmed their replication competence. On the other hand, several clones with JEV persistent infection were established from the cells survived acute infections during the passages. Timing of the DI virus generation during the passages seemed coincide to the appearance of persistently infected cells. The DI RNAs were identified in most of persistently infected cells and were observed throughout the cell maintenance. One of the cloned cell line maintained the viral persistence without DI RNA coreplication. The cells with viral persistence released the reduced but continuous infectious JEV particle for up to 9 months and were refractory to homologous virus superinfection but not to heterologous challenges. Unlike the cells with acute infection these cells were devoid of characteristic DNA fragmentation and JEV-induced apoptosis with or without homologous superinfection. Therefore, the DI RNA generated during JEV undiluted serial passage on mammalian cells was shown to be biologically active and it seemed to be responsible, at least in part, for the establishment and maintenance of the JEV persistence in mammalian cells. Viral persistence without DI RNA coreplication, as in one of the cell clones, supports that JEV persistent infection could be maintained with or without the presence of DI particles. In addition, the fact that the cells with JEV persistence were resistant against homologous virus superinfection, but not against heterologous one, suggests that different viruses have their own and independent pathway for cytopathogenesis even if viral cytopathic effect could be converged to an apoptosis after all.
KIM , YOON-HEE;CHOI, SI-SUN;KANG, DAE-KYUNG;KANG, SANG-SOON;JEONG, BYEONG-CHUL;HONG, SOON-KWANG
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제14권6호
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pp.1350-1355
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2004
The sprA and sprB genes, encoding the chymotrypsin-like proteases Streptomyces griseus protease A (SGPA) and Streptomyces griseus protease B (SGPB), and the sprT gene that encodes Streptomyces griseus trypsin (SGT) were cloned from S. griseus and were overexpressed in various strains of S. griseus. When the sprT gene was introduced into S. griseus, trypsin activity increased 2-fold in the A-factor deficient mutant strain, S. griseus HH1, and increased 4-fold in the wild strain, S. grise us IFO 13350. However, there was no detectable increase of chymotrypsin activity in the transformants of S. griseus with either sprA or sprB, in contrast to the results obtained from S. lividans as a heterologous host. To solve the negative gene dosage effects in S. griseus, either the sprA or the sprB genes with their own ribosome binding sites were linked to the downstream of the entire sprT gene, and the coexpression efficiency was examined in S. lividans and S. griseus. The transformants of S. lividans with either pWHM3-TA (sprT+sprA) or pWHM3TB (sprT+sprB) showed 3-fold increase of trypsin activity over that of the control, however, only the transformant of pWHM3-TB demonstrated 7-fold increase in chymotrypsin activity, indicating that the pWHM3-TB has a successful construction for the overexpression of chymotrypsin in Streptomyces. When the coexpression vectors were introduced into S. griseus IFO 13350, the trypsin level sharply increased by more than 4-fold, however, the chymotrypsin level did not increase. These results strongly suggest that the overexpression of the sprA and sprB genes is tightly regulated in S. griseus.
A Sulfolobus-E. coli shuttle vector for an efficient expression of the target gene in S. acidocaldarius strain was constructed. The plasmid-based vector pSM21 and its derivative pSM21N were generated based on the pUC18 and Sulfolobus cryptic plasmid pRN1. They carried the S. solfataricus P2 pyrEF gene for the selection marker, a multiple cloning site (MCS) with C-terminal histidine tag, and a constitutive promoter of the S. acidocaldarius gdhA gene for strong expression of the target gene, as well as the pBR322 origin and ampicillin-resistant gene for E. coli propagation. The advantage of pSM21 over other Sulfolobus shuttle vectors is that it contains a MCS and a histidine tag for the simple and easy cloning of a target gene as well as one-step purification by histidine affinity chromatography. For successful expression of the foreign genes, two genes from archaeal origins (PH0193 and Ta0298) were cloned into pSM21N and the functional expression was examined by enzyme activity assay. The recombinant PH0193 was successfully expressed under the control of the gdhA promoter and purified from the cultures by His-tag affinity chromatography. The yield was approximately 1 mg of protein per liter of cultures. The enzyme activity measurements of PH0913 and Ta0298 revealed that both proteins were expressed as an active form in S. acidocaldarius. These results indicate that the pSM21N shuttle vector can be used for the functional expression of foreign archaeal genes that form insoluble aggregates in the E. coli system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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