This study was carried out to separate ovotransferrin in chicken egg white by gel chromatography and heparin affinity chromatography. In gel filtration which was performed with 50mM Phosphate buffer (pH 7.2, 0.15M salt) at a flow rate of 2.0 ml/min, ovotransferrin and ovalbumin were eluted together in fraction number 11-16. In order to separate pure ovotransferrin, fraction No. 12-14 of them which have high concentration of ovotransferrin were concentrated and rechromatographed. However, the ovotransferrin did not separated clearly. In heparin affinity chromatography, the separation was performed with 50mM ethylaminetetraacetic acid (EDTA, pH7.2) and 50mM Phosphate buffer (pH 7.2, 0.15M salt contained) on ferrous and ferric ion saturated column at as same flow rate as gel filtration system's. Ovotransferrin and albumin were eluted together at 10-15min (fraction No.3) and 15-20min (fraction No.4), respectively. However, purified ovotransferrin was eluted at 156-165min and 165-175min (tube No.32-33) with 50 mM phosphate buffer (pH 7.2, 0.15M salt free), respectively. Heparin affinity chromatography with ferric ion saturated column was resulted in the best separation of ovotransferrin rather than separation by gel chromatography and ferrous ion saturated heparin affinity chromatography.
The lipolytic enzyme of milk from hormone treated and non treated cows was isolated and purified, It was shown that the crude lipase extract from the milk before and after a hormone treatment of the cows was different in color, foaming properties, yield and specific activity. Final purification of the lipase system was achieved by affinity chromatography on Heparin-Sepharose CL-6B. The lipase bound by Heparin-Sepharose was then characterised. The pH-optimum of the purified enzyme was 8.5 for butteroil emulsion as a substrate and the optimum temperature was $30^{\circ}C$ respectively. The molecular weight. determined by SDS-polyacrylamidegel electrophoresis, was about 70,000. The activity increased by 10% hen 0.01% bovine serum albumin was added to the substrate. The results indicate the enzymes obtained by affinity chromatography from milk before and after hormone treatment had the similar characteristics. The second lipolytic active component that was not bound by Heparin-Sepharose must be the cause of spontaneous rancidity.
Kim, Tae-Woong;Lee, Jae-Bok;Son, Heung-Soo;Kim, Sung-Wan
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.24
no.3
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pp.355-361
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1995
Lipoprotein lipase(LPL) is an acylglycerol hydrolase and is the extrahepatic enzyme responsible for the hydrolysis of triglyceride-rich plasma lipoproteins. LPL has been isolated from bovine milk by affinity chromatography on heparin-sepharose in 2M NaCl, 5mM barbital buffer, pH 7.4. Para-nitrophenyl butyrate(PNPB) was used as a substrate for the determination of LPL activity. Molecular weight of LPL was 55KD on 10% SDS-PAGE. When the effects of heparin on LPL activation were compared, LPL activity of heparin added group increased approximately 5 times higher than that of heparin non-added groups. These results indicated that heparin involved in the stabilization of LPL structure that led to increase enzyme activity. Furthermore, LPL activity increased about 4 times compared to the absence of heparin at various pH. LPL was stabilized when heparin was added either low or high salt concentrations. With the presence of heparin, NaCl concentration did not affect LPL activity at pH range 6∼9.
Acetolactate synthase (ALS) catalyzes the first common step in the biosynthesis of valine, leucine, and isoleucine. ALS is the target site for several classes of herbicides, including sulfonylureas, imidazolinones, and triazolopyrimidines. Two forms of ALS (designated ALS I and ALS II) were separated from barley shoots by heparin affinity column chromatography. The molecular masses of native ALS I and ALS II were determined to be 248 kDa and 238 kDa by nondenaturing gel electrophoresis and activity staining. Similar molecular masses of two forms of ALS were confirmed by a Western blot analysis. SDS-PAGE and Western blot analysis showed that the molecular masses of the ALS I and ALS II subunits were identical - 65 kDa. The two ALS forms exhibited different properties with respect to the values of $K_m$, pI and optimum pH, and sensitivity to inhibition by herbicides sulfonylurea and imidazolinone as well as to the feedback regulation by the end-product amino acids Val, Leu, and Ile. These results, therefore, suggest that the two ALS forms are not different polymeric forms of the same enzyme, but isozymes.
Effect of hyperosmotic pressure on growth of recombinant Chinese hamster 。 vary cells and Erythropoietin (EPO) production was investigated. Cells were cultivated in batch modes at various osmolalities. When the osmolality increased from 314 to 463mOsm/Kg, specific EPO productivity (qp) was increased up to 1.6-fold but cell growth was inhibited. EPO has a complex oligosaccharide structure that plays an important role in biological activity in vivo. To investigate the influence of hypoerosmotic pressure on the glycosylation, structural analysis of oligosaccharide was calTied out. Recombinant human EPO was produced by CHO cells grown under various osmotic pressure and purified from culture supernatants by heparin-sepharose affinity column and immunoaffinity column. N-linked oligosaccharides were released enzymatically and isolated by paper chromatography. The isolated oligosaccharides were labeled with fluorescent dye, 2-aminobenzamide and analyzed with MonoQ anion exchange chromatography and GlycosepN amide chromatography for the assignment of GU (glucose unit) value. Glycan analysis by HPLC showed that neutral (asialo) oligosaccharide was increased slightly with an increase in osmolality. In portion of sialylated glycan, total relative amount of mono- and di-sialyated glycan was increased but that of tri- and tetra-sialylated glycan decreased as osmolality was increased.
The effect of Sodium Butyrate (NaBu) on the N-linked oligosaccharide structure of Erythropoietin (EPO) was investigated. Recombinant human EPO was produced by CHO cells grown in an $MEM{\alpha}$ medium with or without 5 mM NaBu, and purified from the culture supernatants using a heparin-sepharose affinity column and immunoaffinity column. The N-linked oligosaccharides were released enzymatically and isolated by paper chromatography. The isolated oligosaccharides were then labeled with a fluorescent dye, 2-aminobenzamide, and analyzed with MonoQ anion exchange chromatography and GlycosepN amide chromatography for the assignment of a GU (glucose unit) vague. A glycan analysis by HPLC showed that the most significant characteristic effect of NaBu was a reduction in the proportion of glycans with Sri-and tetrasialylated oligodaccharides from $21.30\%$ (tri-) and $14.86\%$ (tetra-) in the control cultures (without NaBu) to $8.72\%$ (tri-) and $1.25\%$ (tetra-) in the NaBu-treated cultures, respectively. It was also found that the proportion of asialo-glycan increased from $12.54\%\;to\;23.6\%$ when treated with NaBu.
Kim, Kee-Sung;Kim, Ji-Sun;Shin, Mi-Soon;Noh, Hae-Won;Lim, Sang-Dong;Suvd, Duvjir;Alimaa, J.
Food Science of Animal Resources
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v.29
no.2
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pp.164-167
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2009
The lactoferrin from mongolian mare colostrum has been purified by gel filtration (Sephadex G-100), affinity chromatography (Toyopear1-AF-Heparin-650M) in two steps. Mare lactoferrin-containing fractions were identified in the first peak among 3 peaks on Sephadex G-100 as first step, and purified lactoferrin was eluted with a step gradient of 0.5M NaCl as a 3 step (gradient 0.1,0.3, 0.5M). Eluted fractions were analyzed by 12% SDS-PAGE, and showed a single protein. Its molecular weight was estimated to be 82kDa. N-terminal amino acid sequence was determined as APRKSVRWCTISPAEXAKXA.
Lipoprotein lipase (LPL) I san enzyme that catalyzed the hydrolysis of triacylglycerols of chylomicrons and VLDL to produce 20acylglycerols and fatty acids. The enzyme, LPL, is localized on the surface of the capillary endothelium and is widely distributed in extrahepatic tissues including heart, skeletal muscle and adipose tissue. LPL has been isolated from boving milk by affinity chromatography on heparin-separose in 2 M NaCL, 5mM barbital buffer, pH 7.4. To elucidate the lipid-binding regin, LPL was digested with trypsin and then separated by gel filtration. Lipid binding region of LPL has been investigated by recombining LPL peptides with DMPC vesicles. Proteolytic LPL fragments with DMPC were reassembled and stabilized by cholate. Lipid-binding region of LPL was identified by a PTH-automated protein sequencer, as AQQHYPVSAGYTK. The analysis of the secondary structure of the lipid-binding peptides revealed a higher probability of $\alpha$-helix structure compared to the whole LPL protein. The prediction of hydrophobicity of lipid -binding region was highly hydrophobic (-1.1) compared to LPL polypetide(-0.4).
The use of antihemophilic factor IX complex has been associated with a variety of thrombotic complications, the major cause of which was the contamination of thrombogenic proteins such as vitamin K-dependent clotting factors II, VII, and X. In order to produce a commercial factor IX (GreenNine VF) free from thrombogenic potential, industrial-scale production process for high-purity factor IX from human plasma has been developed. The purification process contains cryo-precipitation, DEAE-sephadex A-50 anion-exchange chromatography, DEAE-toyopearl 650M anion-exchange column chromatography, heparin-sepharose 6FF affinity column chromatography, and CM-sepharose FF cation-exchange column chromatography. Also the process includes two viral inactivation and removal procedures, solvent/detergent treatment and nanofiltration using Viresolve NFP filter. The purification yield was 35.4%. The specific activity in the purified concentrate was 190.8 IU/mg which exceeded that in the factor IX complex (FacNine) by a factor of 48. The activities of factor II, VII, and X were not detected in GreenNine VF. SDS-PAGE analysis showed that GreenNine VF had the highest purity in comparison with commercially available high purity factor IX concentrates, Mononine, Octanyne, Berinin HS, and Immunine STIM plus 600. One batch size of the production was 2,400 vials of 250 IU product or 1,200 vials of 500 IU product from 1,600 L cryo-poor plasma.
Heparin binding proteins (HBPs) are produced by accessory glands. These are secreted into the seminal fluid, bind to the spermatozoa at the time of ejaculation, favour capacitation, acrosome reaction, and alter the immune system response toward the sperm. The present study was conducted with an objective to assess the effect of purified seminal plasma-HBPs (SP-HBPs) on cross bred cattle bull sperm attributes during two phases of cryopreservation: Pre freezing and freezing-thawing. SP-HBPs were purified from pooled seminal plasma by heparin affinity chromatography. Three doses of SP-HBPs i.e. 10, 20, $40{\mu}g/mLs$ semen were standardized to find out the optimum dose and $20{\mu}g/mLs$ was found to be an optimum dose. Semen as such and treated with SP-HBPs was diluted with sodium citrate-egg yolk diluter and cryopreserved as per the standard protocol. Sperm parameters i.e. motility, viability, Hypo-osmotic swelling test (HOST), acrosome damage, in vitro capacitation and lipid peroxidation were evaluated in SP-HBP treated and untreated (control) semen at both phases of cryopreservation. A considerable variation in percent sperm motility, viability, membrane integrity (HOST), acrosome damage, acrosome reaction and lipid peroxidation was observed at both phases among the bulls irrespective of the treatment. Incubation of neat semen with $20{\mu}g/mL$ SP-HBP before processing for cryopreservation enhanced the average motility, viability, membrane integrity by 7.2%, 1.5%, 7.9%, and 5.6%, 6.6%, 7.4% in pre-frozen and frozen-thawed semen in comparison to control. There was also an average increase of 4.1%/3.9% in in vitro capacitation and acrosome reaction in SP-HBPs-treated frozen-thawed semen as compared to control. However, binding of SP-HBPs to the sperm declined acrosome damage and lipid peroxidation by 1.3%/4.1% and 22.1/$32.7{\mu}M$/$10^9$ spermatozoa in SP-HBP treated pre-frozen/frozen-thawed semen as compared to control, respectively. Significant (p<0.05) effects were observed only in motility, HOST and in vitro acrosome reaction. It can be concluded that treatment of neat semen with SP-HBPs before cryopreservation minimized the cryoinjury by decreasing the generation of reactive oxygen species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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