Background: Biological and pharmacological activities of dryocrassin ABBA, a phloroglucinol derivative extracted from Dryopteris crassirhizoma, have attracted attention. In this study, the apoptotic effect of dryocrassin ABBA on human hepatocellular carcinoma HepG2 cells was investigated. Materials and Methods: We tested the effects of dryocrassin ABBA on HepG2 in vitro by MTT, flow cytometry, real-time PCR, and Western blotting. KM male mice were used to detect the effect of dryocrassin ABBA on H22 cells in vivo. Results: Dryocrassin ABBA inhibited the growth of HepG2 cells in a concentration-dependent manner. After treatment with 25, 50, and $75{\mu}g/mL$ dryocrassin ABBA, the cell viability was 68%, 60% and 49%, respectively. Dryocrassin ABBA was able to induce apoptosis, measured by propidium iodide (PI)/annexin V-FITC double staining. The results of real-time PCR and Western ting showed that dryocrassin ABBA up-regulated p53 and Bax expression and inhibited Bcl-2 expression which led to an activation of caspase-3 and caspase-7 in the cytosol, and then induction of cell apoptosis. In vivo experiments also showed that dryocrassin ABBA treatment significantly suppressed tumor growth, without major side effects. Conclusions: Overall, these findings provide evidence that dryocrassin ABBA may induce apoptosis in human hepatocellular carcinoma cells through a caspase-mediated mitochondrial pathway.
Alginates are polysaccharides isolated from brown algae with gel-forming properties composed of 1,4-linked beta-D-mannuronic acid (M), alpha-L-guluronic acid (G), and alternating (MG) blocks. In this study, we have examined the toxic effects of high M-alginate to activate HepG2 human liver cells. Alginate enhanced the NO production and iNOS protein expression in HepG2 cells. In addition, alginates stimulated the HepG2 to induce IL-1 release and expression of TGF-beta1, which could influence the liver inflammation and chirrhosis. These findings suggest that high M-alginate form brown algae may have toxic effects on liver cells.
In the search for a novel cytotoxic substance from medicinal plants, HY53 ($C_{17}H_{32}O_2N_2$; molecular weight 296) was isolated from the leaves of Pata de Vaca (Bauhinia forficata). The growth of the HepG2 cells was inhibited in a dose-dependent manner when treated with 0.07 to 0.40 mM HY53 for 24 h (IC$_{50}$: 0.13 mM). Furthermore, nuclear DAPI staining revealed the typical nuclear features of apoptosis in the HepG2 cells exposed to 0.27 mM HY53, whereas a flow cytometric analysis of the HepG2 cells using propidium iodide showed that the apoptotic cell population increased gradually from 8% at 0 mM to 23% at 0.14 mM and 45% at 0.40 mM after being exposed to each concentration of HY53 for 24 h. Moreover, a TUNEL assay also exhibited the apoptotic induction of the HepG2 cells treated with HY53. To obtain further information on the HY53-induced apoptosis, the expression level of certain apoptosis-associated proteins was examined using a Western blot analysis. Treatment of the HepG2 cells with HY53 resulted in the activation of caspase-3, and subsequent proteolytic cleavage of poly(ADP-ribose) polymerase (PARP). Consequently, the results confirmed that the apoptosis in the HepG2 cells was induced by HY53 and the involvement of caspase-3-mediated PARP cleavage in the apoptotic process.
Although ascorbate (vitamin C) has been shown to have anti-cancer actions, its effect on human hepatoma cells has not yet been investigated, and thus, the exact mechanism of this action is not fully understood. In this study, the mechanism by which ascorbate induces apoptosis using HepG2 human hepatoblastoma cells is investigated. Ascorbate induced apoptotic cell death in a dose-dependent manner in the cells, was assessed through flow cytometric analysis. Contrary to expectation, ascorbate did not alter the cellular redox status, and treatment with antioxidants (N-acetyl cysteine and N,N-diphenyl-p-phenylenediamine) had no influence on the ascorbate-induced apoptosis. However, ascorbate induced a rapid and sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration. EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator did not significantly alter the ascorbate-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase and apoptosis, whereas dantrolene, an intracellular $Ca^{2+}$ release blocker, completely blocked these actions of ascorbate. In addition, phospholipase C (PLC) inhibitors (U-73122 and manoalide) significantly suppressed the intracellular $Ca^{2+}$ release and apoptosis induced by ascorbate. Collectively, these results suggest that ascorbate induced apoptosis without changes in the cellular redox status in HepG2 cells, and that the PLC-coupled intracellular $Ca^{2+}$ release mechanism may mediate ascorbate-induced apoptosis.
Kim, Yu Gon;Kim, Jae Hyeon;Jo, Yong Wan;Kwun, Min Jung;Han, Chang Woo
The Journal of Korean Medicine
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v.36
no.4
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pp.74-79
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2015
Objectives: Here we investigated the anti-lipogenic potential of kaurenoic acid (KA), a diterpene derived from Aralia continentalis, in a cellular model of non-alcoholic fatty liver disease. Methods: HepG2 cells were treated with palmitate for 24h to induce intracellular lipid accumulation. To assess the influence of KA on steatotic HepG2 cells, various concentration of KA was co-administered. After palmitate treatment, Intracellular triglyceride content was measured. Expression level of several lipogenic genes, sterol regulatory element-binding transcription factor-1c (SREBP-1c), acetyl-CoA carboxylase (ACC), fatty acid synthase (FAS), and stearoyl-CoA desaturase-1 (SCD-1) were measured using Western-blot analyses or RT-PCR. Results: Palmitate markedly increased intracellular triglyceride level and expression of related lipogenic genes in HepG2 cells, and which was relieved by co-administered KA. Conclusions: It is conceivable that that KA may have a pharmacological potential to reduce lipid accumulation in non-alcoholic fatty liver disease.
Propolis is a resinous substance that is collected by Apis mellifera from plant sources and is used in traditional medicine. To study the phytochemical constituents and apoptotic potential of Jordanian propolis extract against different cancer cell lines, propolis was extracted using methanol, hexane, and ethyl acetate and was fractionated using chromatographic methods. Cytotoxicity was assessed using MTT and LDH assays. The apoptotic potential was investigated using florescence microscopy, multicaspase assay, Annexin-V and dead cell assay, and cell cycle assay. The phytochemical constituents were analyzed using GC-MS. The methanol extract of propolis exhibited cytotoxic potential against all cell lines tested. The IC50 values of the methanol extract were 47.4, 77.8, 91.2, and 145.0 ㎍/ml for HepG2, LoVo, MDAMB231, and MCF7 cell lines, respectively. The IC50 values of the F1 fraction were 31.6 (MDAMB231), 38.9 (HepG2), 36.7 (LoVo) and 75.5 (MCF7) ㎍/ml. On further purification using thin-layer chromatography, the IC50 values of the F1-3 fraction were found to be 84.31(HepG2), 79.2 (MCF7), 70.4 (LoVo), and 68.9 (MDAMB231) ㎍/ml, respectively. The anticancer potential of the F1 fraction was confirmed through the induction of apoptosis and cell cycle arrest at the G0/G1 phase. The GC-MS analysis of the F1 fraction revealed the presence of 3-methyl-4-isopropylphenol (29.44%) as a major constituent. These findings indicate the potential of propolis extract as a cancer therapy. However, further investigation is required to assess the acute and subacute toxicity of the most active fraction.
The effects of Yinjin and Yinjinsaryongsangagambang on a DNA damaging agent, etoposide-induced apoptosis, cell viability, cell cycle progression, and mRNA expression of apoptosis-related genes of human hepatocyte cell line HepG2 were investigated using tryphan blue exclusion assay, MTT assay, flow cytometry, immunocytometric analysis of PCNA, and quantitative RT-PCR analysis. MTT assay showed that Yinjin and Yinjinsaryongsangagambang increases cellular viability of HepG2 cells in a dosage-dependent manner. Stimulation of cell cycle progression by Yinjin or Yinjinsaryongsangagambang was detected by flow cytometric analysis of the DNA content and immunocytometric analysis of PCNA expression. A significant reduction of a DNA-damaging agent, etoposide-induced apoptosis were found in both Yinjin and Yinjinsaryongsangagambang-treated cells in dosage-dependent manner. In overall, 3-fold reduction of apoptosis was recognized in $10.0\;{\mu}g/ml$ of Yinjin or Yinjinsaryongsangagambang-treated cells compared to untreated cells. Although the difference is not significant, Yinjinsaryongsangagambang showed slightly higher effect on the inhibition of apoptosis than Yinjin. From flow cytometric analysis of apoptosis, while 39.9% of untreated cells showed etoposide-induced apoptotic cell death, only 19.6% or 17.4% of Yinjin or Yinjinsaryongsangagambang-treated cells were fond at apoptotic sub G1 phase, respectively. Interestingly, strong induction of Gadd45-mRNA was observed from Yinjin or Yinjinsaryongsangagambang-treated cells. However, no changes in expression levels of p53 and Waf1 were detected, demonstrating that induction of Gadd45 mRNA expression by Yinjin or Yinjinsaryongsangagambang occurs by p53-independent mechanism. Marked mRNA inductions of two apoptosis-inhibiting genes, Bcl-2 and Bcl- XL, were found in both Yinjin or Yinjinsaryongsangagambang-treated HepG2 cells while no changes was detected in expression levels of an apoptosis-promoting gene, Bax.
Chemical modification of gelatin-based macroporous microcanier beads was achieved by increasing the charge density through incorporation of (diethylamino)ethylchloride-hydrochloride (DEAE:CI-HCI) or lysine, and this significantly improved the attachment and growth of HepG2 cells. When microcarriers were modified by the addition of 2% lysine, positive charge density was 0.95 meq/g-caniers. In case of modification of microcarriers with DEAE:CI-HCI, positive charge density was 0.6 meq/g-caniers. An increase in charge density of the microcaniers to improve cell attachment has facilitated the growth of the cells on macroporous gelatin microcaniers. Also, final HepG2 cell concentration cultivated on modified beads with DEAE:CI-HCI was increased up to $10^7$ cells/ml. This was 2-3 times higher than that obtained with unmodified macroporous gelatin microcarriers.
Objective: Bufonis Venenum is the traditional Korean medicine Chan Su, which is obtained from the skin and parotid venom gland of the toads. It has been used for myocardial diseases, inflammation diseases, pain relief, cancer and others. The main components of BV are cinobufotoxin, cinobufalin, bufalin and others. Of these, bufalin, the major active ingredient of BV, has been reported to induce apoptosis and to possess anti-tumor effects. There was no report of anti-tumor screening of BV on hepatic cancer and which signaling pathway can be involved. In order to examine the effect of BV on hepatic cancer and the related signaling pathway with BV-induced apoptosis, human Hep G2 cells were used. Methods: Analysis of apoptosis was confirmed by MTT assay. BV decreased cell viability in a dose and duration dependent manner. To observe which signaling molecules will be activated by BV, phosphorylation of MAPK (p38, ERK, JNK), caspase 8 and caspase 9 were examined by Western blot analysis. Results: The phosphorylation levels of p38 started to increase at 5 min after addition of 5 ${\mu}g$/ml of BV and sustained to increase until 48 hours. The phosphorylation levels of other MAPK (ERK and JNK), caspase 8 and caspase 9 increased in a time-dependent manner. These imply that BV may activate different signaling pathways, MAPK, caspase 8 and caspase 9. These results propose that BV may induce apoptosis on Hep G2 cells through the activation of MAPK, caspase 8 and caspase 9.
Kim, Byoung-Mok;Jung, Ji-Hee;Kim, Dong-Soo;Kim, Young-Myoung;Jeong, In-Hak
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.44
no.3
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pp.362-366
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2012
This study was performed to promote the effective utilization of edible marine resources and to develop functional food material from edible marine resource extracts for inhibiting lipid accumulation in liver. Edible marine resource extracts (ME) were prepared by hot water (MWE) and 80% ethanolic (MEE), and both the MWE and MEE extracts were assessed as to their cell cytotoxicity, and Oil Red O staining. Results demonstrated that ME showed no cytotoxic effects. However, treatment with MEE in the concentration of 1000, 500, and 250 ${\mu}g/mL$ significantly inhibited the lipid accumulation in HepG2 cells compared to MWE. Especially, among the 80% ethanolic extracts, Pagrus major, Larimichthys polyactis, Clupea pallasii, Octopus minor, Enteroctopus dofleini, Styela clava, dried sea mustard, and Enteromorpha intestinalis showed greater lipid accumulation inhibitory activity than the others.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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