The nuclear non-histone protein high mobility group box (HMGB) 1 is known to having an inhibitory effect on the repair of DNA damaged by the antitumor drug cisplatin in vitro. To investigate the role of HMGB1 in living cells, we studied the DNA repair of cisplatin damages in mouse fibroblast cell line, NIH-3T3. We evaluated the effect of the post-synthetic acetylation and C-terminal domain of the protein by overexpression of the parental and mutant GFP fused forms of HMGB1. The results revealed that HMGB1 had also an inhibitory effect on the repair of cisplatin damaged DNA in vivo. The silencing of HMGB1 in NIH-3T3 cells increased the cellular DNA repair potential. The increased levels of repair synthesis could be "rescued" and returned to less than normal levels if the knockdown cells were transfected with plasmids encoding HMGB1 and HMGB1 K2A. In this case, the truncated form of HMGB1 also exhibited a slight inhibitory effect.
Background: The high mobility group box 1 (HMGB1) protein is a widespread nuclear protein present in most cell types. It typically locates in the nucleus and functions as a nuclear cofactor in transcription regulation. However, HMGB1 can also localize in the cytoplasm and be released into extracellular matrix, where it plays critical roles in carcinogenesis and inflammation. However, it remains elusive whether HMGB1 is relocated to cytoplasm in clear cell renal cell carcinoma (ccRCC). Methods: Nuclear and cytoplasmic proteins were extracted by different protocols from 20 ccRCC samples and corresponding adjacent renal tissues. Western blotting and immunohistochemistry were used to identify the expression of HMGB1 in ccRCC. To elucidate the potential mechanism of HMGB1 cytoplasmic translocation, HMGB1 proteins were enriched by immunoprecipitation and analyzed by mass spectrometry (MS). Results: The HMGB1 protein was overexpressed and partially localized in cytoplasm in ccRCC samples (12/20, 60%, p<0.05). Immunohistochemistry results indicated that ccRCC of high nuclear grade possess more HMGB1 relocation than those with low grade (p<0.05). Methylation of HMGB1 at lysine 112 in ccRCC was detected by MS. Bioinformatics analysis showed that post-translational modification might affect the binding ability to DNA and mediate its translocation. Conclusion: Relocation of HMGB1 to cytoplasm was confirmed in ccRCC. Methylation of HMGB1 at lysine 112 might the redistribution of this cofactor protein.
High mobility group protein B1 (HMGB1) is a highly conserved, non-histone, chromatin associated nuclear protein encoded by HMGB1 gene. HMGB1 proteins may be general co-factors in Hox-mediated transcriptional activation that facilitate the access of Hox proteins to specific DNA targets. It is unclear that the exact binding interface of Hoxc9DBD and HMGB1. To identify the interface and binding affinity of Hoxc9DBD and HMGB1 A-box, the paramagnetic probe, MTSL was used in NMR titration experiment. It is attached to the N-terminal end of HMGB1 A-box by reaction with thiol groups. The backbone assignment of HMGB1 A-box was achieved with 3D NMR techinques. The 15N-labeled HMGB1 A-box was titrated with MTSL-labeled Hoxc9DBD respectively. Based on the chemical shift changes we can identify the interacting residues and further map out the binding sites on the protein structure. The NMR titration result showed that the binding interface of HMGB1 A-box is around loop-1 between helix-1 and helix-2. In addition, the additional contacts were found in N- and C-terminus. The N-terminal arm region of Hoxc9DBD is the major binding region and the loop between helix1 and helix2 is the minor binding region.
Fibronectin fragments found in the synovial fluid of patients with osteoarthritis (OA) induce the catabolic responses in cartilage. Nuclear high-mobility group protein Box 1 (HMGB1), a damage-associated molecular pattern, is responsible for the regulation of signaling pathways related to cell death and survival in response to various stimuli. In this study, we investigated whether changes induced by 29-kDa amino-terminal fibronectin fragment (29-kDa FN-f) in HMGB1 expression influences the pathogenesis of OA via an HMGB1-modulated autophagy signaling pathway. Human articular chondrocytes were enzymatically isolated from articular cartilage. The level of mRNA was measured by quantitative real-time PCR. The expression of proteins was examined by western blot analysis, immnunofluorescence assay, and enzyme-linked immunosorbent assay. Interaction of proteins was evaluated by immunoprecipitation. The HMGB1 level was significantly lower in human OA cartilage than in normal cartilage. Although 29-kDa FN-f significantly reduced the HMGB1 expression at the mRNA and protein levels 6 h after treatment, the cytoplasmic level of HMGB1 was increased in chondrocytes treated with 29-kDa FN-f, which significantly inhibited the interaction of HMGB1 with Beclin-1, increased the interaction of Bcl-2 with Beclin-1, and decreased the levels of Beclin-1 and phosphorylated Bcl-2. In addition, the level of microtubule-associated protein 1 light chain 3-II, an autophagy marker, was down-regulated in chondrocytes treated with 29-kDa FN-f, whereas the effect was antagonized by mTOR knockdown. Furthermore, prolonged treatment with 29-kDa FN-f significantly increased the release of HMGB1 into the culture medium. These results demonstrated that 29-kDa FN-f inhibits chondrocyte autophagy by modulating the HMGB1 signaling pathway.
Kim, Hyun-Kyung;Kang, Mi Ae;Kim, Mi-Sook;Shin, Young-Joo;Chi, Sung-Gil;Jeong, Jae-Hoon
Molecules and Cells
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v.41
no.4
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pp.362-372
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2018
High mobility group box 2 (HMGB2) is an abundant, chromatin-associated, non-histone protein involved in transcription, chromatin remodeling, and recombination. Recently, the HMGB2 gene was found to be significantly downregulated during senescence and shown to regulate the expression of senescent-associated secretory proteins. Here, we demonstrate that HMGB2 transcription is repressed by p21 during radiation-induced senescence through the ATM-p53-p21 DNA damage signaling cascade. The loss of p21 abolished the downregulation of HMGB2 caused by ionizing radiation, and the conditional induction of p21 was sufficient to repress the transcription of HMGB2. We also showed that the p21 protein binds to the HMGB2 promoter region, leading to sequestration of RNA polymerase and transcription factors E2F1, Sp1, and p300. In contrast, NF-Y, a CCAAT box-binding protein complex, is required for the expression of HMGB2, but NF-Y binding to the HMGB2 promoter was unaffected by either radiation or p21 induction. A proximity ligation assay results confirmed that the chromosome binding of E2F1 and Sp1 was inhibited by p21 induction. As HMGB2 have been shown to regulate premature senescence by IR, targeting the p21-mediated repression of HMGB2 could be a strategy to overcome the detrimental effects of radiation-induced senescence.
Asian ginseng is used as a treatment for cardiovascular diseases, ischemia, and cancers. High mobility group box 1 (HMGB1) protein acts as a late mediator of severe vascular inflammatory conditions. However, the effect of ginsenosides from Asian ginseng on HMGB1-induced inflammatory responses has not been studied. We addressed this question by monitoring the effects of ginsenoside treatment on lipopolysaccharide (LPS) and cecal ligation and puncture (CLP)-mediated release of HMGB1, and HMGB1-mediated regulation of proinflammatory responses. Ginsenoside treatment suppressed LPS-mediated release of HMGB1 and HMGB1-mediated cytoskeletal rearrangements. Ginsenosides also inhibited HMGB1-mediated inflammatory responses. In addition, ginsenosides inhibited the production of tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$) and activation of protein kinase B (Akt), nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$), and extracellular-regulated kinases (ERK) 1/2 by HMGB1. Ginsenosides also decreased CLP-induced release of HMGB1, production of interleukin (IL) $1{\beta}/6$, and mortality. These results suggested that ginsenosides may be potential therapeutic agents for treatment of vascular inflammatory diseases through inhibition of the HMGB1 signaling pathway.
Kim, Su-Young;Koh, Won-Jung;Park, Hye Yun;Jeon, Kyeongman;Lee, Soo-Youn;Yim, Jae-Joon;Shin, Sung Jae
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.80
no.2
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pp.153-158
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2017
Background: Recently, increased levels of high-mobility group box 1 protein (HMGB1) have been identified in various inflammatory conditions and infections. However, no studies have evaluated the HMGB1 level in nontuberculous mycobacterial (NTM) lung disease, and compared it to mycobacterial lung disease. Methods: A total of 60 patients newly diagnosed with NTM lung disease, 44 culture-positive pulmonary tuberculosis (TB) patients, and 34 healthy controls, were included in this study. The serum HMGB1 concentrations were quantified using HMGB1 enzyme-linked immunosorbent assay kits. Results: Serum HMGB1 level in patients with pulmonary TB or NTM lung disease, was significantly lower than that of the healthy controls. In addition, the serum HMGB1 level in TB patients was significantly lower than patients with NTM lung disease. However, the levels in NTM patient subgroups did not differ according to the causative species, disease progression, and disease phenotype. Conclusion: Although low levels of serum HMGB1 has the potential to be a marker of mycobacterial lung disease, these levels were unable to differentiate disease progression and disease phenotype in NTM lung diseases.
High mobility group box 1 (HMGB1) is involved in the pathogenesis of vascular diseases. Unlike activated protein C (APC), the activation of PAR-1 by thrombin is known to elicit proinflammatory responses. To determine whether the occupancy of EPCR by the Gla-domain of APC is responsible for the PAR-1-dependent antiinflammatory activity of the protease, we pretreated HUVECs with the PC zymogen and then activated PAR-1 with thrombin. It was found that thrombin downregulates the HMGB1-mediated induction of both TNF-${\alpha}$ and IL-6 and inhibits the activation of both p38 MAPK and NF-${\kappa}B$ in HUVECs pretreated with PC. Furthermore, thrombin inhibited HMGB1-mediated hyperpermeability and leukocyte adhesion/migration by inhibiting the expression of cell adhesion molecules in HUVECs if EPCR was occupied. Collectively, these results suggest the concept that thrombin can initiate proinflammatory responses in vascular endothelial cells through the activation of PAR-1 may not hold true for normal vessels expressing EPCR under in vivo conditions.
The high mobility group box 1 (HMGB1) protein is a multifunctional cytokine-like molecule that plays an important role in the pathogenesis of tumors. In this study, real-time polymerase chain reactions and Western blot assays indicated that HMGB1 transcriptional activity and protein level are increased in $Tax^+$-T cells (TaxP). To clarify the mechanisms, a series of HMGB1 deletion reporter plasmids (pHLuc1 to pHLuc6) were transfected into $Tax^-$-T cells (TaxN, Jurkat) and $Tax^+$-T cells (TaxP). We found that promoter activity in $Tax^+$-T cells to be higher than that in $Tax^-$-T cells, indicating a significant increase in pHLuc6. Bay11-7082 (NF-${\kappa}B$ inhibitor) treatment did not block the enhancing effect. Chromatin immunoprecipitation assays revealed that Tax was retained on a HMGB1 promoter fragment encompassing -1163 to -975. Bioinformatics analysis showed six characteristic cis-elements for CdxA, AP-1, AML-1a, USF, v-Myb, and C/EBP in the fragment in question. Mutation of cis-elements for C/EBP reduced significant HMGB1 promoter activity induced by Tax. These findings indicate that Tax enhances the expression of HMGB1 gene at the transcriptional level, possibly by interacting with C/EBP.
Jang, Eun Jeong;Kim, Heejeong;Baek, Seung Eun;Jeon, Eun Yeong;Kim, Ji Won;Kim, Ju Yeon;Kim, Chi Dae
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.26
no.5
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pp.389-396
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2022
The increased expression of receptors for advanced glycation end-product (RAGE) is known as a key player in the progression of vascular remodeling. However, the precise signal pathways regulating RAGE expression in vascular smooth muscle cells (VSMCs) in the injured vasculatures are unclear. Given the importance of mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling in cell proliferation, we investigated the importance of MAPK signaling in high-mobility group box 1 (HMGB1)-induced RAGE expression in VSMCs. In HMGB1 (100 ng/ml)-stimulated human VSMCs, the expression of RAGE mRNA and protein was increased in association with an increase in AGE-induced VSMC proliferation. The HMGB1-induced RAGE expression was attenuated in cells pretreated with inhibitors for ERK (PD98059, 10 μM) and p38 MAPK (SB203580, 10 μM) as well as in cells deficient in ERK and p38 MAPK using siRNAs, but not in cells deficient of JNK signaling. In cells stimulated with HMGB1, the phosphorylation of ERK, JNK, and p38 MAPK was increased. This increase in ERK and p38 MAPK phosphorylation was inhibited by p38 MAPK and ERK inhibitors, respectively, but not by JNK inhibitor. Moreover, AGE-induced VSMC proliferation in HMGB1-stimulated cells was attenuated in cells treated with ERK and p38 MAPK inhibitors. Taken together, our results indicate that ERK and p38 MAPK signaling are involved in RAGE expression in HMGB1-stimulated VSMCs. Thus, the ERK/p38 MAPK-RAGE signaling axis in VSMCs was suggested as a potential therapeutic target for vascular remodeling in the injured vasculatures.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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