Lactadherin (formerly known as BA46), a major glycoprotein of the human milk fat globule membrane, is abundant in human breast milk and breast carcinomas and may prevent symptomatic rotavirus infections. In this study, under the control of tissue specific and hormonal inducible mouse whey acidic protein (WAP) promote., the expression pattern of lactadherin (Ltd) in lactogenic hormone-dependent mouse mammary epithelial cell line HC11 were tested. pLNWLtd construct containing 2.4 kilobases of the WAP promoter and 1.5 kilobases of human lactadherin gene was stably transfered into HC11 cells using retroviral vector system. Integration and expression level of the transgene was estimated using PCR and RT-PCR, respectively. Prominent induction of Ltd gene under the WAP promoter was accomplished in the presence of insulin, hydrocortisone and prolactin. Compared to the control (cells cultured with insulin alone), however we observed that the WAP promoter was leaky. These data indicate that luther studies are needed in finding an appropriate promoter other than WAP promoter because of its leakiness.
Expression of $\beta$-lactoglobulin gene in mammary tissue is strongly induced by lactogenic hormones such as prolactin, glucocorticoid, and insulin. In order to elucidate the regulatory mechanism underlying such hormonal induction, the response of the caprine $\beta$-lactoglobulin gene promoter to lactogenic hormones was analyzed in cultured HC11 mammary cells. Expression with serial deletions of the 5' -regulatory sequence of the $\beta$-lactoglobulin promoter revealed that two regions are responsible for a substantial change in hormonal indudbility. The region upstream of-1692, which exhibited strong repression of the downstream promoter, mediated the induction by insulin. This insulin-response was independent of the other two lactogenic hormones, prolactin and glucocorticoid. The other region from -740 to -470, which showed strong activation of the $\beta$-lactoglobulin promoter in confluent HC11 mammary cells, mediated mainly the response to a glucocorticoid analogue, dexametasone. The induction by the latter region, however, was suppressed by the usptream repression without insulin treatment. These results suggest that the induction of $\beta$-lactoglobulin promoter activity by lactogenic hormones in mammary cells may be achieved by the combined action of derepression by in sulin and activation by glucocorticoid and prolactin. Dexametasone response by the latter region seems to be mediated by the glucocorticoid receptor site around -7OObp.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.94-94
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2002
Lactadherin (formerly known as BA46), a major glycoprotein of the human milk fat globule membrane, is abundant in human breast milk and breast carcinomas and may prevent symptomatic rotavirus infections. In this study, under the control of mouse whey acidic protein (WAP) promoter, the expression pattern of lactadherin (Ltd) in lactogenic hormone-dependent mouse mammary epithelial cell line HC11 were tested. pLNWLtd construct containing 2.4 kilobases of the WAP promoter and 1.5 kilobases of human lactadherin gene was stably transfered into HC11 cells using retroviral vector system. Integration and expression level of the transgene was estimated using PCR and RT-PCR, respectively. Prominent induction of Ltd gene under the WAS promoter was accomplished in the presence of insulin, hydrocortisone and prolactin, while induction with insulin alone resulted in lower expression. Our results demonstrate that the expression of the transgene is increased by synergistic effect of several lactogenic hormones, including insulin, hydrocortisone, and prolactin.
To understand molecular mechanisms involved in bovine mammary gland growth, expression of stat5a gene was examined in bovine mammary tissues. We found that stat5a gene was highly induced at pregnant 7 and 8 months compared to virgin mammary tissues. To examine function of bovine stat5a in mammary epithelial cell proliferation, stat5a expression vector was transfected into mammary epithelial HC11 cells. Cell proliferation rate in stat5a gene-transfected cells was 26%, 95% and 85% higher at 24 h, 48 h and 72 h after seeding, respectively, compared to control vector-transfected cells. Results demonstrate that bovine stat5a enhances proliferation of mammary epithelial cells.
Kim, Jin-Young;Park, Se-A;Kang, Hyun-Mi;Kim, Eun-Su;Kim, Hae-Kwon
Development and Reproduction
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v.11
no.2
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pp.85-96
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2007
Mesenchymal stem cells (MSC) are promising candidates for cell-based therapies. One major obstacle for their clinical use is the unsafety of fetal bovine serum (FBS), which is a crucial part of all media currently used for the culture of MSC. We investigated the effect of human cord serum (HCS) on the growth response, mRNA and protein expressions of human amnion-derived stem cells (HAM). HAM were isolated from the amnion after a Caesarean section and cultured in DMEM supplemented with 10% FBS, 5% HCS or 10% HCS. During culture, their biological characteristics at earlier and later passages were analyzed using RT-PCR and immunocytochemistry. Regardless of serum sources, HAM showed the prominent expression of Oct-4, Rex-1, SCF, FGF-5, BMP-4, nestin, GATA-4, NCAM and HLA ABC genes. The expression profile was observed even at later passages. Similarly, HAM cultured in either FBS or HCS exhibited the distinct protein expression of collagen I, II, III and XII, fibronectin, $\alpha$-smooth muscle actin, vimentin, CK18, CD54, FSP, TRA-1-60, SSEA-3, -4 and HLA ABC. However, desmin expression was only observed in HAM cultured in medium supplemented with FBS and vWF expression was only found in HAM cultured in medium supplemented with HCS. Overall pattern of gene and protein expression of HAM was typical of known adult stem cells such as bone marrow-derived MSC. In conclusion, HCS could be as effective as FBS for the culture of HAM.
Mammary tissue-specificity of the caprine $\beta$-lactoglobulin promoter appears to be secured by repression in non-expressing cells. In order to identify the mechanism of the negative regulation, the upstream promoter sequence of the caprine $\beta$-lactoglobulin gene was analyzed in detail. The repression was mediated by the upstream flanking sequence from -47O to -205. The sequence could repress the promoter activity of $\beta$-lactoglobulin in either orientation. The effect of the putative negative regulation element of caprine $\beta$-lactoglobulin on heterlogous promoters, however, varied: the promoter activity of herpes simplex virus thimidine kinase was either repressed or activated by the sequence depending on its orientation, while the SV4O early promoter was activated rather than repressed. The regulatory sequence involving the putative negative regulatory element was strongly shifted with the nuclear extract from non-mammary HeLa and CV-1 cells, while only weak shift was observed with that of mammary HC11 cells. Such correlation between repression and factor binding suggests that the protected regions in foot-printing assay may be the negative regulatory elements of $\beta$-lactoalobulin that serve tissue-specific repression.
Yeast surface-displayed antibody libraries provide an efficient and quantitative screening resource for given antigens, but suffer from typically modest library sizes owing to low yeast transformation efficiency. Yeast mating is an attractive method for overcoming the limit of yeast transformation to construct a large, combinatorial antibody library, but the optimal conditions have not been reported. Here, we report a large synthetic human Fab (antigen binding fragment) yeast surface-displayed library generated by stepwise optimization of yeast mating conditions. We first constructed HC (heavy chain) and LC (light chain) libraries, where all of the six CDRs (complementarity-determining regions) of the variable domains were diversified mimicking the human germline antibody repertoires by degenerate codons, onto single frameworks of VH3-23 and $V{\kappa}1$-16 germline sequences, in two haploid cells of opposite mating types. Yeast mating conditions were optimized in the order of cell density, media pH, and cell growth phase, yielding a mating efficiency of ~58% between the two haploid cells carrying HC and LC libraries. We constructed two combinatorial Fab libraries with CDR-H3 of 9 or 11 residues in length with colony diversities of more than $10^9$ by one round of yeast mating between the two haploid HC and LC libraries, with modest diversity sizes of ${\sim}10^7$. The synthetic human Fab yeast-displayed libraries exhibited relative amino acid compositions in each position of the six CDRs that were very similar to those of the designed repertoires, suggesting that they are a promising source for human Fab antibody screening.
To investigate apoptosis in HC11 mammary epithelial cells, we compared the gene expression profiles of actively growing and serum-starved apoptotic cells using a mouse apoptosis gene array and $^{33}P$-labeled cDNA prepared from the RNA of the two cultures. Analysis of the arrays showed that expression of several genes such as clusterin, secreted frizzled related protein mRNA (sFRP-1), CREB-binding protein (CBP), and others was higher in the apoptotic cells whereas expression of certain genes including survivin, cell division cycle 2 homolog A (CDC2), and cyclin A was lower. These expression patterns were confirmed by RT-PCR and/or Northern analyses. We compared the expression of some of these genes in the mouse mammary gland under various physiological conditions. The expression levels of genes (clusterin, CBP, and M6P-R) up-regulated in apoptotic conditions were higher at involution than during lactation. On the other hand, genes (Pin, CDC2) downregulated in apoptotic conditions were relatively highly expressed in virgin and pregnant mice. We conclude that certain genes such as clusterin, sFRP-1, GAS1 and CBP are induced in apoptotic mammary epithelial cells, and others are repressed. Moreover, the apoptosis array is an efficient technique for comparing gene expression profiles in different states of the same cell type.
During involution of the mammary gland after the lactation period, the gland undergoes an extensive epithelial cell death. In our previous study, overexpression of an extracellular proteinase inhibitor (Expi) gene accelerated apoptosis of mammary epithelial cells. Here we found that expression of the cathepsin D gene was induced in the Expi-overexpressed apoptotic cells. To understand the role of cathepsin D in apoptosis, we transfected cathepsin D gene into mammary epithelial HC11 cells and established the stable cell lines overexpressing the cathepsin D gene. We found that overexpression of the cathepsin D gene partially induced apoptosis of mammary epithelial cells. Expression patterns of the cathepsin D gene were examined in mouse mammary gland at various reproductive stages. Expression of the cathepsin D gene was increased during involution stages compared to lactation stages, and highest expression levels were shown at involution on day 4. We also examined expression of the cathepsin D gene in various mouse tissues. Mammary gland at involution on day 2 showed highest levels of cathepsin D mRNA of the mouse tissues that we examined. Liver tissues showed high levels of cathepsin D expression. These results demonstrate that cathepsin D may contribute to the apoptotic process of mammary epithelial cells.
The production of therapeutic proteins from transgenic animals is one of the most important successes of animal biotechnology. Milk is presently the most mature system for production of therapeutic proteins from a transgenic animal. Specifically, ${\beta}$-casein is a major component of cow, goat and sheep milk, and its promoter has been used to regulate the expression of transgenic genes in the mammary gland of transgenic animals. Here, we cloned the porcine ${\beta}$-casein gene and analyzed the transcriptional activity of the promoter and intron 1 region of the porcine ${\beta}$-casein gene. Sequence inspection of the 5'-flanking region revealed potential DNA elements including SRY, CdxA, AML-a, GATA-3, GATA-1 and C/EBP ${\beta}$. In addition, the first intron of the porcine ${\beta}$-casein gene contained the transcriptional enhancers Oct-1, SRY, YY1, C/EBP ${\beta}$, and AP-1, as well as the retroviral TATA box. We estimated the transcriptional activity for the 5'-proximal region with or without intron 1 of the porcine ${\beta}$-casein gene in HC11 cells stimulated with lactogenic hormones. High transcriptional activity was obtained for the 5'-proximal region with intron 1 of the porcine ${\beta}$-casein gene. The ${\beta}$-casein gene containing the mutant TATA box (CATAAAA) was also cloned from another individual pig. Promoter activity of the luciferase vector containing the mutant TATA box was weaker than the same vector containing the normal TATA box. Taken together, these findings suggest that the transcription of porcine ${\beta}$-casein gene is regulated by lactogenic hormone via intron 1 and promoter containing a mutant TATA box (CATAAAA) has poor porcine ${\beta}$-casein gene activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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