Kim, Youn-Hee;Hong, Young-Bin;Suh, Se-Won;Jung, Gu-Hung
BMB Reports
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v.33
no.2
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pp.126-132
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2000
The hepadnaviruses replicate their nucleic acid through a reverse transcription step. The MBP-fused HBV polymerase was expressed in E. coli and purified by using amylase affinity column chromatography. The purified protein represented DNA-dependent DNA polymerase activity. In this report, the MBP-HBV polymerase was shown to lack 3'$\rightarrow$5' exonuclease activity, like other retroviral RTs. The ratio of the insertion efficiency for the wrong versus right vase pairs indicates the misinsertion frequency (f). The nucleotide insertion fidelity (1/f), observed with the MBP-HBV polymerase and HIV-1 RT, was between 60 and 54,000, and between 50 and 73,000, respectively, showing that they are in close range. A relatively efficient nucleotide incorporation by the MBP-HBV polymerase was observed with a specificity of three groups: (1) A : T, T : A>C : G, G : C (matched pairs), (2) A : C, C : A>G: T, T : G (purine-pyrimidine and pyrimidine-purine mispairs), and (3) C : C, A : A, G : G, T : T>T : C, C : T>A : G, G : A (purine-purine or pyrimidine-pyrimidine mispairs), and their order is (1)>(2)>(3). The data from the nucleotide insertion fidelity by the MBP-HBV polymerase suggest that the HBV polymerase may be as error-prone as HIV-1 RT.
Hepatitis B virus (HBV) polymerase, which possesses the activities of terminal binding, DNA polymerase, reverse transcriptase and RNaseH, has been shown to accomplish viral DNA replication through a pregenomic intermediate. Because the HBV polymerase has not been purified, the expression of HBV polymerase was examined in an E. coli expression system that is under the regulation of arabinose operon. The expressed individual domain containing terminal binding protein, polymerase, or RNaseH turned out to be insoluble. The activities of those domains were not able to be recovered by denaturation and renaturation using urea or guanidine-HCI. The expressed reverse transcriptase containing the polymerase and RNaseH domains became extensively degraded, whereas the proteolysis was reduced in a Ion- mutant. These results indicate that Lon protease proteolyzes the HBV reverse transcriptase expressed in E. coli.
HBV polymerase shares several regions of amino acid homology with other DNA-directed and RNA-directed polymerases. The amino acid residues $Asp^{429}$, $Gly^{518}$, $Asp^{551}$, $Lys^{585}$, and $Gly^{641}$ in the conserved motifs A, B', C, D, and E in the polymerase domain of HBV polymerase were mutated to alanine or histidine by in vitro site-directed mutagenesis. Those mutants were overexpressed, purified, and analyzed against DNA-dependent DNA polymerase activity and affinity for DNA binding. All those mutants did not show DNA-dependent DNA polymerase activities indicating that those five amino acid residues are all critical in DNA polymerase activity. South-Western analysis shows that amino acid residues $ASp^{429}$ and $ASp^{551}$ are essential to DNA binding, and $Gly^{318}$ and $Gly^{585}$ also affect DNA binding to a certain extent.
Alagozlu, Hakan;Ozdemir, Ozturk;Koksal, Binnur;Yilmaz, Abdulkerim;Coskun, Mahmut
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.14
no.9
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pp.5489-5494
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2013
In the current study we aimed to show the common YMDD motif mutations in viral polymerase gene in chronic hepatitis B patients during lamivudine and adefovir therapy. Forty-one serum samples obtained from chronic hepatitis B patients (24 male, 17 female; age range: 34-68 years) were included in the study. HBV-DNA was extracted from the peripheral blood of the patients using an extraction kit (Invisorb, Instant Spin DNA/RNA Virus Mini Kit, Germany). A line probe assay and direct sequencing analyses (INNO-LIPA HBV DR v2; INNOGENETICS N.V, Ghent, Belgium) were applied to determine target mutations of the viral polymerase gene in positive HBV-DNA samples. A total of 41 mutations located in 21 different codons were detected in the current results. In 17 (41.5%) patients various point mutations were detected leading to lamivudin, adefovir and/or combined drug resistance. Wild polymerase gene profiles were detected in 24 (58.5%) HBV positive patients of the current cohort. Eight of the 17 samples (19.5%) having rtM204V/I/A missense transition and/or transversion point mutations and resistance to lamivudin. Six of the the mutated samples (14.6%) having rtL180M missense transversion mutation and resistance to combined adefovir and lamivudin. Three of the mutated samples (7.5%) having rtG215H by the double base substituation and resistance to adefovir. Three of the mutated samples (7.5%) having codon rtL181W due to the missense transversion point mutations and showed resistance to combined adefovir and lamivudin. Unreported novel point mutations were detected in the different codons of polymerase gene region in the current HBV positive cohort fromTurkish population. The current results provide evidence that rtL180M and rtM204V/I/A mutations of HBV-DNA may be associated with a poor antiviral response and HBV chronicity during conventional therapy in Turkish patients.
Although efficient antiviral lamivudine is used for HBV-infected patients, a prolonged treatment with nucleoside analogs often results in lamivudine-resistant variants. In this study, we evaluated the fidelity of the lamivudine-resistant variants. The FLAG-tagged wild-type (FPolE) and Met550 variants (FPolE/M550A, M550V, and M550I) of HBV DNA polymerases were expressed in insect cells then purified. Like many other reverse transcriptases, no $3'{\rightarrow}5'$ exonuclease activity was detected in the HBV DNA polymerase. Since there is no proofreading activity, then the use of the site-specific nucleotide misincorporation method is beneficial. From the $f_{ins}$ value analysis, it is evident that M550I and M550V exhibit higher fidelity values than the wild-type HBV DNA polymerase, while M550A exhibits similar fidelity values. It is therefore suggested that lamivudine resistance comes from the stringency to dNTP binding and the discrimination of dCTP and lamivudine in M550V and M550I.
Hepatitis B virus (HBV) genome P-encoded protein HBV DNA polymerase (Pol) has long been known as a reverse transcriptase during HBV replication. In this study, we investigated the impact of HBV Pol on host cellular processes, mainly apoptosis, and the underlying mechanisms. We showed a marked reduction in apoptotic rates in the HBV Pol-expressed HepG2 cells compared to controls. Moreover, a series of assays, i.e., yeast two-hybrid, GST pull-down, co-immunoprecipitation, and confocal laser scanning microscopy, identified the host factor eEF1A2 to be associated with HBV Pol. Furthermore, knockdown of eEF1A2 gene by siRNA abrogated the HBV Pol-mediated anti-apoptotic effect with apoptosis induced by endoplasmatic reticulum (ER) stress-inducer thapsigargin (TG), thus suggesting that the host factor eEF1A2 is essential for HBV Pol's anti-apoptosis properties. Our findings have revealed a novel role for HBV Pol in its modulation of apoptosis through integrating with eEF1A2.
In this study HepG2 cells were used to express and purify HBV pol proteins. In order to facilitate purification of HBV pol proteins, HBV pol and its deletion mutants were fused to MBP (Maltose Binding Protein). As a result we successfully expressed and partially purified both wild type and mutant recombinant HBV pol proteins by using an amylose resin and anti-MBP antibody. In the case of wild type, the anti-MBP antibody detected three bands. One was full-length and the others were generated by proteolysis of the terminal domain region. The expressed MBP/POL proteins were localized both in the cytoplasm and in the perinuclear region. The purified proteins had polymerase activity toward an exogenous homo-polymer template. The MBP/POL protein also had DNA synthesis activity in vivo, since the MBP/POL expression construct was able to complement a HBV polymerase mutant in trans.
Background: One of the important factors in the prognosis of chronic hepatitis B patient is the degree of replication of hepatitis B virus (HBV). It has been known that HBV DNA polymerase plays the essential role in the replication of HBV. HBV DNA polymerase is composed of four domains, TP (Terminal protein), spacer, RT (Reverse transcriptase) and RNaseH. Among these domains, tyrosine, the $65^{th}$ residue of TP is an important residue in protein-priming reaction that initiates reverse transcription. If monoclonal antibody that recognizes around tyrosine residue were selected, it could be applied to further study of HBV replication. Methods: To produce TP-specific scFv (single-chain Fv) by phage display, mice were immunized using synthetic TP-peptide contains $57{\sim}80^{th}$ amino acid residues of TP domain. After isolation of mRNA of heavy-variable region ($V_H$) and light-chain variable region ($V_L$) from the spleen of the immunized mouse, DNA of $V_H$ and $V_L$ were obtained by RT-PCR and joined by a DNA linker encoding peptide (Gly4Ser)3 as a scFv DNA fragments. ScFv DNA fragments were cloned into a phagemid vector. scFv was expressed in E.coli TG1 as a fusion protein with E tag and phage gIII. To select the scFv that has specific affinity to TP-peptide from the phage-antibody library, we used two cycles of panning and colony lift assay. Results: The TP-peptide-specific scFv was isolated by selection process using TP-peptide as an antigen. Selected scFv had 30 kDa of protein size and its nucleotide sequences were analyzed. Indirect- and competitive-ELISA revealed that the selected scFv specifically recognized both TP-peptide and the HBV DNA polymerase. Conclusion: The scFv that recognizes the TP domain of the HBV DNA polymerase was isolated by phage display.
A rapid and sensitive method has been developed to detect hepatitis B virus DNA (HBV) by nested polymerase chain reaction (PCR) technique with primers specific for the surface and core regions in capillary thermal cycler within 80 min. The lower limit for detection by present PCR method is $10^{-5}$ pg of recombinant HBV DNA which is equivalent to that determined by one round of PCR amplification and Southern blot hybridization analysis. When boiled HBV positive serum was serially diluted 10-fold, HBV DNA was successfully determined in $1{\mu}l-10^{-3}$ of serum. HBV DNA was detected by present method in 69 clinical samples including HBsAg positives and negatives by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). When serum samples were amplified by nested PCR using surface and core region primers, HBV DNAs were detected in 37 of 69 samples (53.6%) and 18 of 69 samples (26.1%), respectively. These results can inform the infectious state of HBsAg positive pateints. A simple and rapid nested PCR protocol by using boiled serum as DNA template has been described for the clinical utility to determine HBV DNA in human serum.
Cheon, Jun Hong;Chae, Hong Ju;Park, Mi Sun;Lim, Soo Yeon;Yoo, Seon Hee;Lee, Sun Ho
The Korean Journal of Nuclear Medicine Technology
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v.23
no.1
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pp.35-39
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2019
Purpose Hepatitis B virus (hepatitis B virus, HBV) infection is a worldwide major public health problem and it is known as a major cause of chronic hepatitis, liver cirrhosis and liver cancer. And serologic tests of hepatitis B virus is essential for diagnosing and treating these diseases. In addition, with the development of molecular diagnostics, the detection of HBV DNA in serum diagnoses HBV infection and is recognized as an important indicator for the antiviral agent treatment response assessment. We performed HBeAg assay using Immunoradiometric assay (IRMA) and Chemiluminescent Microparticle Immunoassay (CMIA) in hepatitis B patients treated with antiviral agents. The detection rate of HBV DNA in serum was measured and compared by RT-PCR (Real Time - Polymerase Chain Reaction) method Materials and Methods HBeAg serum examination and HBV DNA quantification test were conducted on 270 hepatitis B patients undergoing anti-virus treatment after diagnosis of hepatitis B virus infection. Two serologic tests (IRMA, CMIA) with different detection principles were applied for the HBeAg serum test. Serum HBV DNA was quantitatively measured by real-time polymerase chain reaction (RT-PCR) using the Abbott m2000 System. Results The detection rate of HBeAg was 24.1% (65/270) for IRMA and 82.2% (222/270) for CMIA. Detection rate of serum HBV DNA by real-time RT-PCR is 29.3% (79/270). The measured amount of serum HBV DNA concentration is $4.8{\times}10^7{\pm}1.9{\times}10^8IU/mL$($mean{\pm}SD$). The minimum value is 16IU/mL, the maximum value is $1.0{\times}10^9IU/mL$, and the reference value for quantitative detection limit is 15IU/mL. The detection rates and concentrations of HBV DNA by group according to the results of HBeAg serological (IRMA, CMIA)tests were as follows. 1) Group I (IRMA negative, CMIA positive, N = 169), HBV DNA detection rate of 17.7% (30/169), $6.8{\times}10^5{\pm}1.9{\times}10^6IU/mL$ 2) Group II (IRMA positive, CMIA positive, N = 53), HBV DNA detection rate 62.3% (33/53), $1.1{\times}10^8{\pm}2.8{\times}10^8IU/mL$ 3) Group III (IRMA negative, CMIA negative, N = 36), HBV DNA detection rate 36.1% (13/36), $3.0{\times}10^5{\pm}1.1{\times}10^6IU/mL$ 4) Group IV(IRMA positive, CMIA negative, N = 12), HBV DNA detection rate 25% (3/12), $1.3{\times}10^3{\pm}1.1{\times}10^3IU/mL$ Conclusion HBeAg detection rate according to the serological test showed a large difference. This difference is considered for a number of reasons such as characteristics of the Ab used for assay kit and epitope, HBV of genotype. Detection rate and the concentration of the group-specific HBV DNA classified serologic results confirmed the high detection rate and the concentration in Group II (IRMA-positive, CMIA positive, N = 53).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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