The walls of guard cells have many specialized features. Guard cells are present in the leaves of bryophytes, ferns, and almost all vascular plants. However, they exhibit considerable morphological diversities. There are two types of guard cells: the first type is found in a few monocots, such as palms and corn, and the other is found in most dicots, many monocots, mosses, ferns, and gymnosperms. In corns, guard cells have a characteristic dumbbell shape with bulbous ends. Most dicot and monocot species have kidney-shaped guard cells that have an elliptical contour with a pore at its center. Although subsidiary cells are common in species with kidney-shaped stomata, they are almost always absent in most of the other plants. In this study, there were many different stomatal features that were associated with kidney-shaped guard cells, but not dumbbell shaped guard cells, which are present in most grasses, such as cereals. Each plant investigated exhibited different characteristic features and most of these plants had kidney-shaped guard cells. However, the guard cells of Chamaesyce supina Mold, were often more rectangular than kidney-shaped. In contrast, Sedum sarmentosum guard cells were of the sink ensiform type and in Trifolium repens, the guard cells exhibited a more rhombic shape. Therefore, kidney-shaped guard cells could be divided into a number of subtypes that need to be investigated further.
The walls of guard cells have many different specialized features. Guard cells are present in leaves of bryophytes, ferns and almost all of the vascular plants. Guard cells show considerable morphological diversities. It is understood that the stomata show two types in terms of morphological characterizations of guard cells. The first type is only found in a few monocots including Poaceae and Cyperaceae. In rice and corn, guard cells have the morphological characteristics of dumbbell shape. The morphological characteristics of dumbbell shape always have subsidiary cells. The other type is found in every dicots and many monocots and they are kidney-shaped guard cells. The plants of kidney-shaped guard cells rarely have subsidiary cells except Commelina communis L. Therefore, it could be concluded that two types of the morphological characteristics of guard cells cannot divide according to monocots or dicots. Every plants in which stomatal characteristic features were all different, most of them belong to kidney-shaped guard cells. However in case of Sedum sarmentosum, guard cells were shown to be long and narrow lips type. In Tradescantia virginiana, the shape of guard cells could be called perfectly to half-moon type. Therefore, it could be concluded that kidney-shaped types are all different in some way, but dumbbell-shaped types are almost constant.
The effects of different light quality on the change of membrane potential difference (PD) of the guard cell in the intact leaf have been investigated. The mombrane PD was about -5.5 mV by white light of 600 $\mu$moles $m^{-2}\; s^{-1}$. The mean PD of change caused by red light was about -5.2 mV at the light intensity of 80 $\mu$moles $m^{-2}\; s^{-1}$. Membrane PD of guard cells in response to blue light was saturated at low light intensity. However, red and green light enhanced the change of membrane PD of guard cells with increasing intensity. In green light the biggest change of memrane PD was around -4 mV, whereas, with blue light the change of of memrane PD was around -2 mV. Accordingly, the membrane PD of guard cell showed the different degree of hyper-polarization by each wavelength.
Blue light activates proton pump, and creates electrical gradient across the plasma membrane and drives $K^{+}$ uptake in stomatal guard cells. In this presentation, we provide evidence for regulatory mechanisms of the pump and the identification of blue light receptor. The pump is shown to be the plasma membrane H$^{+}$- ATPase and is activated through phosphorylation of the C-terminus. Phosphorylation occurred and 14-3-3 protein bound to the phosphorylation site. The binding of 14-3-3 protein was required for the H$^{+}$-ATPase activation. We also found that phot1 phot2 double mutant does not respond to blue light but other mutants respond to blue light by stomatal opening. However, all these mutants are capable of stomatal opening in the presence of fusicoccin, an activator of the H$^{+}$-ATPase. These results suggest that both photl and phot2 act as blue light receptors in guard cells.d cells.
Stomatal resistances of the leaves in Heteromeres arbutifolia and of the stems in Ferocactus acanthodes were studied to estimate active and passive behaviors of the guard cells on a theoretical basis. Active and passive stomatal responses to light and water deficit were observed. When the change rate of existent water due to variation of osmotic potential in the guard cells and the loss rate of transpirational water from the guard cells are $\Delta$wi-$\Delta$wt and leaded to active behaviors for opening and closing stomata. However, when stems of F. acanthodes with stomata closecd under the solar irradiation were covered with black cloth and then taken off, behaviors of the guard cells occurred in the condition of $\Delta$wi<$\Delta$wt and were passive. Under the conditiion of $\Delta$wi<$\Delta$wt due to cutout from stems, passive behaviors of the guard cells in H. arbutifolia and F. acanthodes always occurred in spite of the solar irradiation and darkness, respectively. The transpirational resistance coefficients of the guard cells in stems of F. acanthodes (0.380) and Opuntia bigelovii (0.135) wer emuch higher than in leaves of H. arbutifolia (0.034). Moreover, stomatal opening in stems of F. acanthodes during the daytime could be induced by watering. Those results are interpreted as that since the guard cells in desert Crassulacean acid metabolism (CAM) plants always exist in the state of stomatal opening, nocturnal stomatal opening and daytime stomatal closing are exhibited by passive behaviors of the guard cells in the alternant conditioins of $\Delta$wi>$\Delta$wt and $\Delta$wi<$\Delta$wt, respectively.
Chlorophasts are a central structural feature of stomatal guard cells. Guard cell chloroplasts have both photosystems I and II (PS I and II), carry out O2 evoluation , cyclic and noncyclic photophosporylation, and possess the Calvin-Benson cycle enzymes involved in CO2 fixation. These imply that guard cell chloroplasts have a normal photosynthetic carbon reduction pathway just like their mesophyll counterparts, indicating similar fuctional organization of thylakoid membranes in both types of mesophyll and guard cell chloroplasts. It has been, however, found that guard cell chloroplasts have distinctive and comparative properties in their photosynthetic performance. In this article, I review the intrinsic features on the light reaction of and carbon reduction by guard cell chloroplasts.
Blue light (BL) induces stomatal opening through activation of H$^{+}$ pump, which creates electrical gradient across the plasma membrane for $K^{+}$ uptake into guard cells. The pump is the plasma membrane H$^{+}$ -ATPase and is activated via phosphorylation of the C-terminus with concomitant binding of the 14-3-3 protein. The opening is initiated by the perception of BL through phototropin (phot), which are recently identified as BL receptors in stomatal guard cells. In this study, we provide the biochemical evidence for phots as BL receptors in stomatal guard cells. vfphot was phosphorylated reversibly by BL, and phosphorylation levels of vfphot increased earlier than those of the plasma membrane W-ATPase. BL-dependent phosphorylations of vfphot and H$^{+}$-ATPase showed similar fluence dependency. Staurosporin, an inhibitor of serine/threonine protein kinase, and diphenyleneiodonium chloride (DPI), an inhibitor of flavoprotein, inhibited BL-dependent phosphorylations of vfphot and H$^{+}$ -ATPase. These results indicate that vfphot acts as a BL-receptor mediating stomatal opening.l opening.
The K+ and Na+ contents in the guard cells of Agave which had a characteristic of CAM plant were measured by using "Rolling technique". That results were correspond with the change of the stomatal aperture width. That is to say, stomatal movement of Agave is due to the change of K+and Na+ concentration in the guard cells. As Agave which was used in this experiment showed two peaks of which one was at 3 hour and the other was at 24 hour in stomatal aperture width, it was seemed that Agave had both characteristics of CAM and $C_3$pattern.
The effects of light and $CO_2$ on the electrophysiological characteristics of guard cells in the intact leaf and in the detached epidermis have been investigated. Guard cells in intact leaves showed the membrane hyperpolarization in response to light. The biggest induced change of the membrane potential difference (PD) in the guard cells of the intact leaf was 13 m V by light and 42 mV by $CO_2$ in Commelina communis. Similar results were obtained with Tradescantia virginiana. However, there were no changes of membrane PD in detached epidermis. In order to determine the influence of the mesophyll on the changes of membrane PD, infiltration of the mesophyll cells with photosynthetic inhibitors was performed. In CCCP infiltrated leaf discs the guard cell membrane was depolarized slightly by red-light and hyperpolarized by $CO_2$, but in leaf discs infiltrated with DCCD and DCMU the guard cell membrane was hyperpolrized by both red-light and $CO_2$ as the control leaf discs. In azide infiltrated leaf discs the guard cell membrane showed no response to light and there was a much reduced membrane hyperpolarization by $CO_2$ compared to other responses. It was likely that azide caused leaf damage and the activity of cell metabolism was decreased greatly, resulting in small membrane PD changes by $CO_2$ and no changes by redlight. Therefore, it can be suggested that red light was sensed by the mesophyll and the light induced guard cell membrane hyperpolarization was related to energy produced by cyclic-photophosphorylation, but ${CO_2}-induced$ guard cell membrane hyperpolarization was not related to photosynthesis. Alkalisation of the vacuole was observed when the intact leaf was exposed to $CO_2$, indicating that membrane hyperpolarization was mainly the result of proton efflux.efflux.
The effects of abscisic acid(ABA) spraying for 12 weeks on the stomatal types and frequencies of O. malacophyllus leaves were summarized as follows. ABA inhibited the growth of O. malacophyllus. The prominent effect of ABA on the epidermal structure was the promotion of senescence such as thickness of cell walls, smooth sinuosity of cell walls, and large size of epidermal cells. The stomatal frequency was decreased to 23% by 10$\mu\textrm{g}$ ml-1 ABA and to 48% by 100$\mu\textrm{g}$ml-1, and also the stomatal size was more or less smaller than that of control. The developing secondary stomatal mother cell was not found in both 10 and 100$\mu\textrm{g}$ml-1ABA, but the arrested secondary stomatal mother cell was rarely found in 10$\mu\textrm{g}$ ml-1 ABA. The formation of normal stomatal types such as helico-eumesogenous and aniso-eumesogenous was found in both 10 and 100 $\mu\textrm{g}$ ml-1 ABA asin well as control. Also nine abnormal stomatal types were found, and the frequencies were promoted to 6% by 10 $\mu\textrm{g}$ ml-1 ABA and to 17% by 100 $\mu\textrm{g}$ ml-1 ABA. Among these abnomal stomata, four types such as aborted stomata, single-aborted guard cells, arrested stomata, and modified stomatal complexes were found in control as well as in 10 and 100 $\mu\textrm{g}$ ml-1 ABA, but five types such as wrenched stomata, unequal stomata, wavy guard cells, guard cells overlapped by guard cells, and dissolved cell wall stomata were found in both 10 and 100 $\mu\textrm{g}$ ml-1ABA. The modified stomata complexes were abnormal stomatal types which were newly found and also were varied in types.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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