MicroRNAs might act as oncogenes or tumor suppressors in cancer. Recent studies have shown that miR-421 is up-regulated in human gastric cancer. Here, we found that miR-421 was over-expressed in gastric cancer tissues and cell lines. Bioinformatics analysis predicted that the caspase-3 gene was a target of miR-421. Caspase-3 was negatively regulated by miR-421 at the post-transcriptional level. Bax and Bcl-2 were also regulated by miR-421. Moreover, tumor necrosis factor receptor-I and -II, death receptors in the apoptosis pathway, were up-regulated by miR-421. The over-expression of miR-421 promoted gastric cancer cell growth and inhibited apoptosis of the BGC-823 gastric cancer cell line. These observations indicate that miR-421 acts as a tumor promoter by targeting the caspase-3 gene and preventing apoptosis of gastric cancer cells through inhibition of caspase-3 expression. These findings contribute to our understanding of the functions of miR-421 in gastric cancer.
Yoon, Ji Young;Kwon, Mo Sun;Kang, Jee Hyun;Ahn, Kwang Sung;Kim, So Seob;Kim, Nam-Hyung;Kim, Jin-Hoi;Kim, Teoan;Shim, Hosup
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권2호
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pp.168-173
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2009
Human follicle-stimulating hormone (hFSH) is a pituitary glycoprotein that regulates follicular development and ovulation. Clinically, hFSH has been used to induce follicular growth in infertile women. The hormone is composed of heterodimers, including a common ${\alpha}$ subunit among the gonadotropin family and a hormone-specific ${\beta}$ subunit. Since assembly of the heterodimer is a rate-limiting step in the production of functional hFSH, transgenic clone cows carrying a single-chain hFSH transgene may efficiently produce functional hormone. Genes encoding the ${\alpha}$ and ${\beta}$ subunits of hFSH were linked using the C-terminal peptide sequence from the ${\beta}$ subunit of human chorionic gonadotropin. Bovine fetal fibroblasts were transfected with the gene construct, including the goat ${\beta}$-casein promoter and a single-chain hFSH coding sequence. Transfected fibroblasts were transferred into enucleated oocytes, and individual nuclear transfer (NT) embryos developed to the blastocyst stage were analyzed for the transgene by polymerase chain reaction. Seventy eight blastocysts (30.8%) were developed from 259 reconstructed embryos. Among these blastocysts, the hFSH gene was detected in 70.8% (34/48) of the embryos. Subsequent transfer of hFSH-transgenic clone embryos to 31 recipients results in 11 (35.5%) early pregnancies. However, all fetuses were lost before reaching day 180 of gestation. The results from this study demonstrated that bovine NT embryos carrying single-chain hFSH could be produced, and further extensive studies in which NT embryos are transferred to more recipients may give rise to single chain hFSH-transgenic cows for biomedical applications.
Lin, Xiang;Lee, Soo-Won;Bae, Hee Dong;Shelford, Jim A.;Cheng, Kuo-Joan
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제14권12호
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pp.1769-1774
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2001
Bacillus licheniformis strains L-25 and PWD-1 are two thermophilic feather-degrading bacteria. Despite isolated from different environmental conditions, they were both capable of breaking down chicken feathers and growing in a medium in which feather was the only source of carbon and nitrogen. A 1.46-kb keratinase gene (ker B) was isolated from strain L-25 by a polymerase chain reaction (PCR) using L-25 genomic DNA as templates. Sequencing results reveal that ker B shares great sequence identity with a previously published keratinase gene of B. licheniformis PWD-1 (ker A). Only two amino acids differences were found in the deduced amino acid sequence between the keratinases from L-25 and PWD-1. However several nucleotide changes were found upstream of the putative promoter region. Protease inhibition studies indicated that neutral protease activity accounted for approximate 25 to 30% of total extracellular proteolytic activity produced by strain L-25 in the feather medium. In contrast, no measurable neutral protease activity was produced by strain PWD-1 in the feather medium. When glucose (1%), a common catabolic repressor, was added into the feather medium, L-25 was still able to grow and produce keratinase. Strain PWD-1 produced no neutral protease activity and its growth was severely inhibited in the feather medium containing glucose. L-25 produced an enhanced level of keratinase in the feather medium in comparison with PWD-1.
5-Azacytidine (5-azaC) was originally identified as an anticancer drug (NSC102876) which can cause hypomethylation of tumor suppressor genes. To assess its effects on runt-related transcription factor 3 (RUNX3), expression levels and the promoter methylation status of the RUNX3 gene were assessed. We also investigated alteration of biologic behavior of esophageal carcinoma TE-1 cells. MTT assays showed 5-azaC inhibited the proliferation of TE-1 cells in a time and dose-dependent way. Although other genes could be demethylated after 5-azaC intervention, we focused on RUNX3 gene in this study. The expression level of RUNX3 mRNA increased significantly in TE-1 cells after treatment with 5-azaC at hypotoxic levels. RT-PCR showed 5-azaC at $50{\mu}M$ had the highest RUNX3-induction activity. Methylation-specific PCR indicated that 5-azaC induced RUNX3 expression through demethylation. Migration and invasion of TE-1 cells were inhibited by 5-azaC, along with growth of Eca109 xenografts in nude mice. In conclusion, we demonstrate that the RUNX3 gene can be reactivated by the demethylation reagent 5-azaC, which inhibits the proliferation, migration and invasion of esophageal carcinoma TE-1 cells.
Embryonic stem (ES) cell-derived cardiomyocytes (ESCMs) must be specifically purified in order to prevent teratoma formation, and this confusing issue has hampered their clinical application. We therefore investigated a technique to generate pure labeled ESCMs for possible use in cardiac repair. We generated transgenic ES cell lines expressing enhanced green fluorescent protein (EGFP) under the transcriptional control of the $\alpha$-cardiac myosin heavy chain ($\alpha$-MHC) promoter. Differentiated EGFP-positive ES cells displayed characteristics of CMs. Furthermore, neuregulin-1 (NRG-1) upregulated the expression of the cardiac-restricted transcription factors Nkx2.5 and GATA-4, as well as differentiated CM factors ($\alpha$-MHC, $\beta$-MHC). Immunohistochemistry demonstrated that NRG-1 increased expression of cardiac-specific troponin T in the beating foci of the embryoid bodies. This work revealed a potential method for specifically labeling and enriching ESCMs by combining genetically-engineered ES cell clones and exogenous growth factor treatment.
Ferritin is known to regulate iron metabolism and maintain iron in a variety of the eukaryotic organisms. The region encoding the mature ferritin (0.47 kb, H-type) of Periserrula leucophryna was amplified using the designed primers including restriction enzyme site and termination codon and subcloned in frame to the pRBAS secretion vector containing the signal sequence, RBS, and promoter of amylase gene (E. coli-Bacillus shuttle vector), resulting in recombinant pRBAS-PLF vector. Recombinant ferritin (18 kDa) was correctly processed and secreted from Bacillus subtilis LKS strain harboring the pRBAS-PLF vector and quantitatively analyzed by SDS-PAGE and western blot, respectively. Secretion of the ferritin was optimized by culture conditions (host, medium, temperature, nitrogen source) in 3 L batch culture and 5 L jar fermenter. Finally. the ferritin was largely produced using 50 L fermenter as the following conditions; at $30^{\circ}C$, 150 rpm, 1 vvm in Bacillus subtilis LKS using PY medium. The secreted ferritin was maximally measured (approximately 177.6 ug/ml) when the cell density reached to 14.4 at $OD_{600}$ (20 h incubation). The iron binding activity was confirmed by Perls' staining in 7.5% non-denaturing gel, indicating that the multimeric ferritin (composed of 24 subunits) was formed in the culture broth after secretion. Biologically, the culture broth and powder type containing ferritin were tested for possibility as feed additive in chicken broiler. As a result, the ferritin stimulated the growth of chick broil and improved feed efficiency and production index.
The Dps protein, which is overexpressed in harsh environments, is known to playa critical role in the protection of DNA against oxidative stresses. In this study, the roles of Fur in the expression of the dps gene in Salmonella and the protection mechanisms against oxidative stress in Salmonella cells preexposed to iron-stress were investigated. Two putative Fur boxes were predicted within the promoter region of the S. typhimurium dps gene. The profile of dps expression performed by the LacZ reporter assay revealed growth-phase dependency regardless of iron-status under the culture conditions. The fur mutant, $_X4659$, evidenced a reduced level of ${\beta}$-galactosidase as compared to the wild-type strain. The results observed after the measurement of the Dps protein in various Salmonella regulatory mutants were consistent with the results acquired in the reporter assay. This evidence suggested that Fur performs a function as a subsidiary regulator in the expression of dps. The survival ability of Salmonella strains after exposure to oxidative stress demonstrated that the Dps protein performs a pivotal function in the survival of stationary-phase S. typhimurium against oxidative stress. Salmonella cells grown in iron-restricted condition required Dps for full protection against oxidative stress. The CK24 (${\Delta}dps$) cells grown in iron-replete condition survived at a rate similar to that observed in the wild-type strain, thereby suggesting the induction of an unknown protection mechanism(s) other than Dps in this condition.
IbMYB1, a transcription factor (TF) for R2R3-type MYB TFs, is a key regulator of anthocyanin biosynthesis during storage of sweet potatoes. Anthocyanins provide important antioxidants of nutritional value to humans, and also protect plants from oxidative stress. This study aimed to increase transgenic potatoes' (Solanum tuberosum cv. LongShu No.3) tolerance to environmental stress and enhance their nutritional value. Transgenic potato plants expressing IbMYB1 genes under the control of an oxidative stress-inducible peroxidase (SWPA2) promoter (referred to as SM plants) were successfully generated through Agrobacterium-mediated transformation. Two representative transgenic SM5 and SM12 lines were evaluated for enhanced tolerance to salinity, UV-B rays, and drought conditions. Following treatment of 100 mM NaCl, seedlings of SM5 and SM12 lines showed less root damage and more shoot growth than control lines expressing only an empty vector. Transgenic potato plants in pots treated with 400 mM NaCl showed high amounts of secondary metabolites, including phenols, anthocyanins, and flavonoids, compared with control plants. After treatment of 400 mM NaCl, transgenic potato plants also showed high DDPH radical scavenging activity and high PS II photochemical efficiency compared with the control line. Furthermore, following treatment of NaCl, UV-B, and drought stress, the expression levels of IbMYB1 and several structural genes in the flavonoid biosynthesis such as CHS, DFR, and ANS in transgenic plants were found to be correlated with plant phenotype. The results suggest that enhanced IbMYB1 expression affects secondary metabolism, which leads to improved tolerance ability in transgenic potatoes.
NF-E2-related factor 2 (Nrf2), a basic leucine zipper transcription factor, has recently received a great deal of attention as an important molecule that enhances antioxidative defenses and induces resistance to chemotherapy or radiotherapy. In this study, we investigated the apoptosis-inducing and Nrf2- upregulating effects of quercetin on malignant mesothelioma (MM) MSTO-211H and H2452 cells. Quercetin treatment inhibited cell growth and led to upregulation of Nrf2 at both the mRNA and protein levels without altering the ubiquitination and extending the half-life of the Nrf2 protein. Following treatment with quercetin, analyses of the nuclear level of Nrf2, Nrf2 antioxidant response element-binding assay, Nrf2 promoter-luc assay, and RT-PCR toward the Nrf2-regulated gene, heme oxygenase-1, demonstrated that the induced Nrf2 is transcriptionally active. Knockdown of Nrf2 expression with siRNA enhanced cytotoxicity due to the induction of apoptosis, as evidenced by an increase in the level of proapoptotic Bax, a decrease in the level of antiapoptotic Bcl-2 with enhanced cleavage of caspase-3 and PARP proteins, the appearance of a sub-$G_0/G_1$ peak in the flow cytometric assay, and increased percentage of apoptotic propensities in the annexin V binding assay. Effective reversal of apoptosis was observed following pretreatment with the pan-caspase inhibitor Z-VAD. Moreover, Nrf2 knockdown exhibited increased sensitivity to the anticancer drug, cisplatin, presumably by potentiating the oxidative stress induced by cisplatin. Collectively, our data demonstrate the importance of Nrf2 in cytoprotection, survival, and drug resistance with implications for the potential significance of targeting Nrf2 as a promising strategy for overcoming resistance to chemotherapeutics in MM.
Choi, Jae Young;Kim, Yang-Su;Wang, Yong;Kang, Joong Nam;Roh, Jong Yul;Shim, Hee Jin;Woo, Soo-Dong;Jin, Byung Rae;Je, Yeon Ho
Molecules and Cells
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제28권1호
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pp.19-24
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2009
The goal of this study was to create a novel baculovirus expression system that does not require recombinant virus purification steps. Transfection of insect cells with transfer vectors containing barnase under control of the Cotesia plutellae bracovirus (CpBV) promoters ORF3004 or ORF3005 reduced cell growth. Co-transfection with bApGOZA DNA yielded no recombinant viruses and nonrecombinant backgrounds. To further investigate the detrimental effects of barnase on insect cells, two recombinant bacmids harboring the barnase gene under control of the CpBV promoters, namely bAcFast-3004ProBarnase and bAcFast-3005ProBarnase, were constructed. While no viral replication was observed when only the recombinant bacmids were transfected, recombinant viruses were generated when the bacmids were co-transfected with the transfer vector, pAcUWPolh, through substitution of the barnase gene with the native polyhedrin gene by homologous recombination. Moreover, no non-recombinant backgrounds were detected from unpurified recombinant stocks using PCR analysis. These results indicate that CpBV promoters can be used to improve baculovirus expression vectors by means of lethal gene expression under the control of these promoters.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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