Green fluorescent protein (GFP) is an attractive reporter for bioprocess monitoring. A fluorescence-based method was developed to quantify GFP levels in transgenic plants and protein extracts. In this study, GFP was produced and secreted from suspension cells derived from transgenic rice. The RAmy3E promoter placed before the GFP gene controlled by sugars such as sucrose. The effects of sucrose concentration on the secretion of GFP and total protein into the medium were investigated in batch suspension culture. It was possible, therefore, to induce the expression of the GFP by removing sucrose from the cultured media or by allowing the rice suspension cells to deplete sucrose catabolically. The dry cell weight (7.06 g/L) and GFP level were detected as highest at 12%, 3% sucrose after 20 day culture, respectively. However secreted GFP fluorescence at the other sucrose concentrations (6%, 12%, 18% and 24%) were a little amount in media.
Green fluorescent protein (GFP), a very important biological agent that involves shifting the color of bioluminescence from blue to green in luminous coelenterates and to increase the quantum yield of light emission. GFP discovered in medusa, Aequorea victoria is a key factor of various biotechnological and cell biological applications. Beside these applications, GFP of A. victoria is generally stable, which does not require co-factors for activity and can be functionally expressed in different bacterial species. This property of GFPs from A. victoria permits them to be a unique tool to monitor gene expression and protein localization in different organisms. The present review brings out the past milestones and future perspectives on GFPs, with an elaborative reviewing on its applications.
In order to improve the transfection efficiency of CHO/dhfr- cells using cationic lipid, optimal concentrations of the cationic lipid($LipofectAmine^{TM}$) and DNA(pEGFP-C1) need to be determined. The use of green fluorescent protein(GFP) gene as a reporter gene facilitated the quantification of transfection efficiency. The green fluorescence intensity of each cell transfected at various lipid-DNA concentrations was measured using fluorescence-activated cell sorter(FACS) analysis. A combination of $2.0{\mu}L$ cationic lipid and 0.4{$\mu}g$ DNA in a well resulted in the highest trasfection efficiency. Taken together, the method using FACS analysis of GFP is simple and fast, facilitating the optimization of transfection.
The green fluorescent protein (GFP) from the jellyfish aequorea and its fluorescent homologs from Anthozoa corals have become invaluable tools for imaging of cells and tissues. In this study various fluorescent protein such as green fluorescent protein (GFP), yellow fluorescent protein (YFP) and red fluorescent protein (RFP) have been expressed in Escherichia coli. Growth of recombinant cells and production of fluorescent proteins were investigated in shake flasks. Some characteristics of fluorescent proteins was also studied.
Background: Fluorescent antibody virus neutralization (FAVN) test is a standard assay for quantifying rabies virus-neutralizing antibody (VNA) in serum. However, a safer rabies virus (RABV) should be used in the FAVN assay. There is a need for a new method that is economical and time-saving by eliminating the immunostaining step. Objectives: We aimed to improve the traditional FAVN method by rescuing and characterizing a new recombinant RABV expressing green fluorescent protein (GFP). Methods: A new recombinant RABV expressing GFP designated as ERAGS-GFP was rescued using a reverse genetic system. Immuno-fluorescence assay, peroxidase-linked assay, electron microscopy and reverse transcription polymerase chain reaction were performed to confirm the recombinant ERAGS-GFP virus as a RABV expressing the GFP gene. The safety of ERAGS-GFP was evaluated in 4-week-old mice. The rabies VNA titers were measured and compared with conventional FAVN and FAVN-GFP tests using VERO cells. Results: The virus propagated in VERO cells was confirmed as RABV expressing GFP. The ERAGS-GFP showed the highest titer (108.0 TCID50/mL) in VERO cells at 5 days post-inoculation, and GFP expression persisted until passage 30. The body weight of 4-week-old mice inoculated intracranially with ERAGS-GFP continued to increase and the survival rate was 100%. In 62 dog sera, the FAVN-GFP result was significantly correlated with that of conventional FAVN (r = 0.95). Conclusions: We constructed ERAGS-GFP, which could replace the challenge virus standard-11 strain used in FAVN test.
Kang, T. Y.;Yin, X. J.;Chae, Y. J.;Lee, H.;Lee, H. J
Journal of Embryo Transfer
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v.14
no.1
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pp.1-8
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1999
The efficiency of transgenic livestock animal production may be improved by early selection of transgenci preimplantation embryos. To examine the possibility of GFP gene as a non-invasive marker for the early screening of transgenic embryo, the GFP gene was microinjected into rabbit zygotes and the later stages of preimplantation embryos were examined for the expression of GFP. The presence of injected DNA was detected by PCR analysis and the expression of GFP was detected by observing green fluorescence in embryos under a fluorescent microscope. Out of 108 GFP gene-injected rabbit zygotes, seventy three(67.6%) were fluorescence-positive. When 11 fluroresecence-positive blastocysts were analyzed for the presence of GFP gene by PCR, 6(54.5%) were positive, and all of the 8 flrouescence-negative blastocysts were also negative by PCR. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by PCR analysis and GFP detection could be a promising method for the preselection of transgenic embryos.
Kyung Soo Kang;Seung Pyo Shin;In Su Ha;Si Eun Kim;Ki Hyun Kim;Hyeong Ju Ryu;Tae Sub Park
Animal Bioscience
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v.36
no.6
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pp.973-979
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2023
Objective: The clustered regularly interspaced short palindromic repeat (CRISPR)/CRISPR-associated protein 9 (Cas9) system, which is the most efficient and reliable tool for precisely targeted modification of the genome of living cells, has generated considerable excitement for industrial applications as well as scientific research. In this study, we developed a gene-editing and detection system for chick embryo sexing during the embryonic stage. Methods: By combining the CRISPR/Cas9 technical platform and germ cell-mediated germline transmission, we not only generated Z chromosome-targeted knockin chickens but also developed a detection system for fluorescence-positive male chicks in the embryonic stage. Results: We targeted a green fluorescent protein (GFP) transgene into a specific locus on the Z chromosome of chicken primordial germ cells (PGCs), resulting in the production of ZGFP-knockin chickens. By mating ZGFP-knockin females (ZGFP/W) with wild males (Z/Z) and using a GFP detection system, we could identify chick sex, as the GFP transgene was expressed on the Z chromosome only in male offspring (ZGFP/Z) even before hatching. Conclusion: Our results demonstrate that the CRISPR/Cas9 technical platform with chicken PGCs facilitates the production of specific genome-edited chickens for basic research as well as practical applications.
Park, Sung-Kil;Chung, Choong-Sik;Lee, Jong-Jin;Lee, Youn-Hyung;Chung, In-Sik
Applied Biological Chemistry
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v.44
no.4
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pp.215-218
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2001
To examine the expression of foreign protein in Polygonum tinctorium cells, plasmid pCAMBIA1302 encoding Green Fluorescent Protein(GFP) was used to transform the cells and the expression was confirmed using Western blot analysis. When the effect of sodium buryrate on the formation of GFP was examined, cell growth was retarded at the addition of 10 mM and was stalled at more than 15 mM. The amount of GFP production was increased by 15% when 5 mM of sodium butyrate was added at three-days after inoculation as compared to at 0-day. Moreover, when sodium butyrate was added at three-days after inoculation, the amount of GFP was increased by 50% at the addition of 5 mM of sodium butyrate as compared to 10 mM.
Phenylacetic acid (PAA) is produced by many bacteria as an antifungal agent and also appears to be an environmentally toxic chemical. The object of this study was to detect PAA using Pseudomonas putida harboring a reporter plasmid that has a PAA-inducible promoter fused to a green fluorescent protein (GFP) gene. Pseudomonas putida KT2440 was used to construct a green fluorescent protein-based reporter fusion using the paaA promoter region to detect the presence of PAA. The reporter strain exhibited a high level of gfp expression in minimal medium containing PAA; however, the level of GFP expression diminished when glucose was added to the medium, whereas other carbon sources, such as succinate and pyruvate, showed no catabolic repression. Interestingly, overexpression of a paaF gene encoding PAA-CoA ligase minimized catabolic repression. The reporter strain could also successfully detect PAA produced by other PAA-producing bacteria. This GFP-based bioreporter provides a useful tool for detecting bacteria producing PAA.
Costa, Solange Dos Santos;Golim, Marjorie De Assis;Bergmann, Bartira Rossi;Costa, Fabio Trindade Maranhao;Giorgio, Selma
Parasites, Hosts and Diseases
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v.49
no.4
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pp.357-364
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2011
Various Leishmania species were engineered with green fluorescent protein (GFP) using episomal vectors that encoded an antibiotic resistance gene, such as aminoglycoside geneticin sulphate (G418). Most reports of GFP-Leishmania have used the flagellated extracellular promastigote, the stage of parasite detected in the midgut of the sandfly vector; fewer studies have been performed with amastigotes, the stage of parasite detected in mammals. In this study, comparisons were made regarding the efficiency for in vitro G418 selection of GFP-Leishmania amazonensis promastigotes and amastigotes and the use of in vivo G418 selection. The GFP-promastigotes retained episomal plasmid for a prolonged period and G418 treatment was necessary and efficient for in vitro selection. In contrast, GFP-amastigotes showed low retention of the episomal plasmid in the absence of G418 selection and low sensitivity to antibiotics in vitro. The use of protocols for G418 selection using infected BALB/c mice also indicated low sensitivity to antibiotics against amastigotes in cutaneous lesions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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