Two modalities of gonadotropin secretion, pulsatile gonadotropin and preovulatory gonadotropin surge, have been identified in the mammals. Pulsatile gonadotropin secretion is modulated by the pulsatile pattern of GnRH release and complex ovarian steroid feedback actions. The neural mechansim that regulates the pulsatile release of GnRH in the hypothalamus is called "GnRH pulse generator". Ovarian steroids, estradiol and progesterone, appear to exert thier feedback effects both directly on the pituitary to modulate gonadotropin release and on a hypothalamic site to modulate GnRH release; estradiol primarily affects the amplitude while progesterone decreases the frequency of the pulsatile GnRH. Steroid hormones are known to affect catecholamine transmission in brain. MBH-POA is richly innervated by NE systems and close apposition of NE terminals and GnRH cell bodies occurs in the MBH as well as in the POA. NE normally facilitates pulsatile LH release by acting through ${\alpha}-receptor$ mechanism. However, precise nature of facilitative role of NE transmission in maintaining pulsatile LH has not been clearly understood. Close apposition of DA and GnRH terminals in ME might permit DA to influence GnRH release. Action of DA transmission probably is mediated by axo-axonic contacts between GnRH and DA fibers in the ME. Dopamine transmission does not normally regulate pulsatile LH release, but under certain conditions, increased DA transmission inhibit LH pulse. Endogenous opioid acts to suppress the secretion of GnRH into hypophysial portal circulation, thereby inhibiting gonadotropin secretion. However, an interaction between endogenenous opioid peptides and gonadotropin release is a complex one which involves ovarian hormones as well. LH secretion appears to be most suppressed by endogenenous opioids during the luteal phase, at a time of elevated progesterone secretion. The arcuate nucleus contains not only cell bodies for GnRH and ${\beta}-endorphin$ but also a dense aborization of fibers suggesting that GnRH release is changed by the interactions between GnRH and ${\beta}-endorphin$ cell bodies within the arcuate nucleus. The frequency and amplitude of pulsatile LH release seem to be increased during the preovulatory gonadotropin surge. Estradiol exerts positive feedback action on the hypothalamo-pituitary axis to trigger preovulatory LH surge. GnRH is also crucial hormonal stimulus for preovulatory LH surge. It is unlikely, however, that increased secretion of GnRH during the preovulatory gonadotropin surge represents an obligatory neural signal for generation of the LH discharge in primates including human. Modulation of preovulatory LH surge by catecholamines has been studied almost exclusively in rats. NE and E may be involved in distinct way to accumulate GnRH in the MBH and its release into the hypophysial portal system during the critical period for LH surge on proestrus in rats. However, the mechanisms whereby augmented adrenergic transmission may facilitate the formation and accumulation of GnRH in the ME-ARC nerve terminals before the LH surge have not been clearly understood.
Two forms of gonadotropin releasing hormone (GnRH) are identified in the brain of adult mature spotted sea bass (Lateolabrax sp.) by immunohistochemical methods. Salmon GnRH immunoreactive (sGnRH-ir) cell bodies were distributed in the olfactory bulb, ventral telencephalon and preoptic region. Immunoreactive fibers were observed in the vicinity of the brain including the olfactory bulbs, the telencephalon, the optic nerve, the optic tectum, the cerebellum, the medulla oblongata and rostral spinal cord. In most cases, these fibers did not form well defined bundles. However, there was a clear continuum of immunoreactive fibers, extending from the olfactory bulbs to the pituitary. cGnRH-II-ir cell bodies were only found in olfactory bulbs. However, the distribution of cGnRH-II-ir fibers was basically similar to that of sGnRH-ir fibers except for the absence of their continuity between the olfactory bulbs and the pituitary. These data suggest that sGnRH and cGnRH-II are endogenous peptides and indicate the presence of multiple neuroendocrine functions in the brain of the spotted sea bass. It seems that sGnRH not only regulates GTH secretion but also functions as a neurotransmitter, whereas cGnRH-II functions only as a neurotransmitter.
Objective: The aim of this study was to compare GnRH antagonist and agonist flare-up treatment in the management of poor responder patients. Methods: One hundred forty-four patients from Jan. 1, 2002 to Aug. 31, 2005 undergoing IVF/ICSI treatment who responded poorly to the previous cycle (No. of oocyte retrieved$\leq$5) and had high early follicular phase follicle stimulating hormone (FSH>12 mIU/ml were selected. Seventy-five patients received agonist flare-up protocol and 71 patients received antagonist protocol. We analyzed the number of oocytes retrieved, number of good embryos (GI, GI-1), total dose of hMG administered, implantation rate, cycle cancellation rate, pregnancy rate, live birth rate. Results: The cancellation rate was high in antagonist protocol (53.5% vs. 30.1%). The number of oocyte retrieved, the number of good embyos were high in agonist flare-up group. There was no statistical difference between GnRH agonist flare up protocol and GnRH antagonist protocol in implantation rate (14.5%, 10.1%), clinical pregnancy rate per transfer (29.4%, 21.2%) and live birth rate per transfer (21.6%, 18.2%). Although the result was not statistically significant, GnRH agonist flare up group showed a nearly doubled pregnancy rate and live birth rate per initial cycle than GnRH antagonist group. Conclusions: The agonist flare-up protocol appears to be slightly more effective than the GnRH antagonist protocol in implantation rate, pregnancy rate, live birth rate but shows statistically no significance. Agonist flare-up protocol improved the ovarian response in poor responders. However, based of the result of the study, we can expect improved ovarian response in poor responders by GnRH agonist flare up protocol.
Recently a protocol was developed that precisely synchronizes the time of ovulation in Hanwoo. Cows were treated with GnRH on Day 0, PGF$_2$$\alpha$ 7 d later, GnRH 2 d later, and then time-inseminated approximately 24 h after this second treatment with GnRH. Ovarian morphology was monitored cows by trans-rectal ultrasonography 6.5MHz linear transrectal probe(Sonovet - 600., Medison co. Korea) from 24 hr to 31 hrs after second GnRH injection. The result obtained summarized as follows - 1. Induced ovulation were 24 to 31hr after the second GnRH injection, but high induced ovulation was 28hr. 2. Conception rate with HML(High meat lin) and HIL(High milk lin) treatment were 48.1%(38/79) and 43.9%(40/91), respectively. 3. Conception rate of 1∼2 parity and 3∼4 parity was 44.3% and 55%, respectively. 4. Conception rate of spring, autumn was more increased, 47.3% than summer.
Seasonal variations of GnRH were investigated by immunohlstochemicsl technique in three species of frog, Rona niEromaculutu, R. dvbowskii 8nd R. mgosa with different ovulation period in order to examine the relationship between GnRH expression and reproductive function. In all three species of frog, the intensity of GnRH immunoreactivitv and the number of GnRH neurons in the brawn were relatively high in frogs at the pre-ovulation period and markedly increased at the ovulation period. Those were then decreased after ovulation and further lowered during early hibernation period. These results indicate that GnRH experssion is closely related to specific phases of annual reproductive cycle in frog.
We previously found that a potent gonadotropin-releasing hormone (GnRH) agonist, buserelin, decreases GnRH promoter activity together with GnRH mRNA level, providing evidence for an autoregulatory mechanism operating at the level of GnRH gene transcription in immortalized GT1-1 neuronal cells. To examine whether agonist-induced decrease in GnRH mRNA level requires the continuous presence of buserelin, we performed a pulse-chase experiment of buserelin treatment. Short-term exposure (15 min) of GT1-1 neuronal cells to buserelin ($10{\mu}M$) was able to decrease GnRH mRNA levels when determined 24 h later. When GT1-1 cells were treated with buserelin ( $10{\mu}M$) for 30 min and then incubated for 1, 3, 6, 12, 24, and 48 h after buserelin removal, a significant decrease in GnRH mRNA levels was observed after the 12 h incubation period. These data indicate that inhibitory signaling upon buserelin treatment may occur rapidly, but requires a long time (at least 12 h) to significantly decrease the GnRH mRNA level. To examine the possible involvement of de novo synthesis and/or mRNA stability in buserelin-induced decrease in GnRH gene expression, actinomycin D ($5{\mu}m/ml$), a potent RNA synthesis blocker, was co-treated with buserelin. Actinomycin D alone failed to alter basal GnRH mRNA Revel, but blocked the buserelin-induced decrease in GnRH mRNA level at 12 h of post-treatment. These data suggest that buserelin may exert its inhibitory action by altering the stability of GnRH mRNA. Moreover, a polvsomal RNA separation by sucrose gradient centrifugation demonstrated that buserelin decreased the translational efficiency of the transcribed GnRH mRNA. Taken together, these results clearly indicate that GnRH agonist buserelin acts as an inhibitory signal at multiple levels such as transcription mRNA stability, and translation.
The objective of this study was to investigate the responsiveness of hypophysis and gonads to synthetic GnRH among noncycling Murrah buffalo heifers at 24 months of age. The plasma FSH, LH, estradiol and progesterone levels were measured in blood samples collected at 1 hour before and upto 18th day subsequent to the administration of GnRH ($(200 {\mu}g)$) or saline (2 ml). The pretreatment levels of plasma FSH, LH estradiol and progesterone among GnRH treated heifers (N = 6) were $11.55{\pm}0.57ng/ml$, $0.68{\pm}0.06ng/ml$, $19.84{\pm}0.82pg/ml$ and $0.45{\pm}0.07ng/ml$ respectively. A quick elevation of FSH (p < 0.01) and LH (p < 0.05) within 5 min of GnRH administration was observed in all the heifers. The peak FSH ($74.97{\pm}18.63ng/ml$) and LH ($3.09{\pm}0.54ng/ml$) level was obtained at 30 min of GnRH administration. The elevated level of plasma estradiol on 5th to 18th day, FSH on 7th to 9th day (n = 3) and the progesterone on 13th to 18th day (n = 2) of GnRH injection was obtained. The study indicates that gonads of buffalo heifers at 24 months of age are responsive of GnRH induced gonadotropin release for folliculogenesis and luteal tissue formation
The present study was carried out 1) to show the ontogenic development of CA-and GnRH-containing nerve fobres in the median eminence, 2) to simultaneously demonstrate the synaptic contact between these two nenre fibres in the rat median eminence at the ultrastructural level using light and electron microscopic doublelabel immunostainlngs. GnRH-and CA-nenre terminals were detectable in the median eminence at embryonic day 19.5. The CA-newe terminals were obsenred in the entire legion of the extern31 lavers, while GnRH-newe terminals only in the lateral portion. At the 14th postnatal daw, both %ropes of nerve terminals showed a very similar distribution to those of adult one. In the median eminence of adult rats, a substantial overlap existed in the distribution of GnRH fibres with CA-containing nerve fibres. This overlap was most intense throughout the external palisade zone. Furthermore, an electron microscopic double label immunostaining showed that there was a close apposition of CA- and GnRH-nenre fobres. These axo-axonic contacts occurred frequently in the internal and palisade zones, i.e. at the level of the fobre preterminals. These morphological results suggest that the CA-mediated GnRH secretion may occur via sxo-axonic interaction in the median eminence.
The hypothalamic peptide GnRH plays a central role in the regulation of the mammalian reproductive axis. Recent studies suggested that GnRH stimulates or inhibits the ovarian steroidogenesis and gametogenesis directly. Our previous report indicated that GnRH gene is expressed in adult rat ovary as well as in hypothalamus and that the expressed GnRH may induce the follicular atresia and apoptosis of ovarian granulosa cells in rat. Therfore, we studied whether GnRH gene is expressed in the mouse fetal ovary, when the germ cells are degenerating by apoptosis during gonad diffeerentiation. Mouse fetal gonads were obtained on the 12, 15,18 and 20th day of gestation from the mother mice superovulated (10 IU PMSG and 10 IU hCG) and mated. The morphological changes of fetal ovaries were examined histochemically by hematoxylin-eosin staining. The fetal sex was confirmed by PCR methods for sexing. RT-PCR methods were used to examine the expression of GnRH gene and the sex steroid hormones were determined by conventional radioimmunoassays. The levels of estradiol (E) and progesterone (P) were increaseduntil 18th day of gestation and then E was decreased just before parturition. The morphological changes of fetal gonadal tissue sections showed the ovarian development and coincided with the result of PCR analysis for sexing using ovary- or testis- specific oligonucleotide primers. Immunoreactive GnRH in placenta was decreased gradually until the end of gestation but fetal brain and ovarian GnRH were increased. The level of GnRH gene expression was increased during fetal ovarian development from 12 till 18th day and decreased suddenly on 20th day just before birth. From these results, it is suggested that ovarian GnRh may play a regulatory role on the germ cell differentiation of fetal ovary.
Gonadotropin releasing hormone(GnRH), which is secreted from the hypothalamus, has a pivotal role in the reproduction of mammals. Golden hamsters are seasonal breeding mammal and their sexual activity is determined by photoperiod(length of light per day). Long photoperiod(LP, $\leq$ 12.5 hours of light) maintains the reproductive activity and short photoperiod(SP, $\leq$ 12 hours of light) suppresses it. In order to investigate in detail, the sexual activity was individually examined in SP-housed male golden hamsters received a vector at three different concentrations which contains rat GnRH cDNA. The gonadal regression was significantly(P<0.05) accelerated by the highest concentrations of the vector at 8 and 10 weeks after the treatment in comparison to the other groups. In the light of pulsatile release of GnRH in maintaining reproductive activity, the vector containing GnRH cDNA might secrete the GnRH in a constant high level. These results suggest that the GnRH-containing vector might desensitize the anterior pituitary, leading to acceleration or testicular regression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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