The levels of extracellualr glutamate, intracellular $Ca^{2+}\;([Ca2+]_i)$ and cGMP were determined for 1 h with the excitatory amino acids, N-methyl-D-aspartate (NMDA) or kainate in cultured cerebellar granule cells. Both NMDA and kainate produced a time-dependent release of glutamate, and kainate was more potent than NMDA in glutamate elevation. The elevation of extracellular glutamate was not purely governed by intracellular $Ca^{2+}$ concentration. However, in opposite to the time-dependent elevation of glutamate, the elevation of cGMP by NMDA and kainate were at maximum level in short-time (1 min) incubation then remarkably decreased with longer incubation times. Post-applications (30 min after agonist) of EAA antagonist did not block EAAs-induced glutamate elevation. However, NMDA antagonist, phencyclidine (PCP), blocked NMDA-induced cGMP elevation at pre- or post-application, but kainate antagonist, 6,7-dinitroquinoxaline-2,3-dione (DNQX), paradoxically augmented kainate-induced cGMP elevation for 1 h incubation. These results show that NMDA or kainate induces time-dependent elevations of extracellular glutamate, while the elevations of cGMP by these EAAs are remarkably decreased with longer incubation times. However, NMDA- arid kainate-indcued glutamate release was blocked by pre-application of each receptor antagonist but not by post-application while EAA-induced $[Ca^{2+}]_i$ was blocked by post-application of antagonist. These observations suggest that EAA-induced elevation of $[Ca^{2+}]_i$ is not parallel with elevation of glutamate release or cGMP.
The present study was undertaken to characterize homocysteic acid (HCA)-and cysteic acid (CA)-mediated formation of inositol phosphates (InsP) in primary culture of rat cerebellar granule cells. HCA and CA stimulated InsP formation in a dose-dependent manner, which was prevented by the N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor antagonist D,L-2-amino-5-phosphopentanoic acid (APV). CA-, but not HCA-, mediated InsP formation was in part prevented by the metabotropic glutamate receptor antagonist ?${\alpha}$-methyl-4-carboxyphenylglycine ($({\pm})$-MCPG). Both HCA- and CA-mediated increases in intracellular calcium concentration were completely blocked by APV, but were not altered by $({\pm})$-MCPG. CA-mediated InsP formation was in part prevented by removal of endogenous glutamate. In contrast, the glutamate transport blocker L-aspartic acid-${\beta}$-hydroxamate synergistically increased CA responses. These data indicate that in cerebellar granule cells HCA mediates InsP formation wholly by activating NMDA receptor. In contrast, CA stimulates InsP formation by activating both NMDA receptor and metabotropic glutamate receptor, and in part by releasing endogenous glutamate into extracellular milieu.
This study was performed to examine the mean arterial pressure and nociceptive jaw opening reflex after microinjection of glutamate into the amygdala in freely moving rats, and to investigate the mechanisms of antinociceptive action of amygdala. Animals were anesthetized with pentobarbital sodium (40 mg/kg, ip). A stainless steel guide cannula (26 gauge) was implanted in the amygdala and lateral ventricle. Stimulating and recording electrodes were implanted into each of the incisor pulp and anterior digastric muscle. Electrodes were led subcutaneously to the miniature cranial connector sealed on the top of the skull with acrylic resin. After 48 hours of recovery from surgery, mean arterial pressure and digastric electromyogram (dEMG) were monitored in freely moving rats. Electrical shocks (200 ${\mu}sec$ duration, $0.5{\sim}2$ mA intensity) were delivered at 0.5 Hz to the dental pulp every 2 minutes. After injection of 0.35 M glutamate into the amygdala, mean arterial pressure was increased by $8{\pm}2$ mmHg and dEMG was suppressed to $71{\pm}5%$ of the control. Injection of 0.7 M glutamate elevated mean arterial pressure by $25{\pm}5$ mmHg and suppressed dEMG to $20{\pm}7%$ of the control. The suppression of dEMG were maintained for 30 minutes. Naloxone, an opioid receptor antagonist, inhibited the suppression of dEMG elicited by amygdaloid injection of glutamate from $28{\pm}4\;to\;68{\pm}5%$ of the control. Methysergide, a serotonin receptor antagonist, also inhibited the suppression of dEMG from $33{\pm}5\;to\;79{\pm}4%$ of the control. However, phentolamine, an ${\alpha}-adrenergic$ receptor antagonist, did not affect the suppression of dEMG. These results suggest that the amygdala can modulate both cardiovascular and nociceptive responses and that the antinociception of amygdala seems to be attributed to an augmentation of descending inhibitory influences on nociceptive pathways via serotonergic and opioid pathways.
It is imperative to analyse brain injuries directly in real time, so as to find effective therapeutic compounds to protect brain injuries by stress. We established a system which could elucidate the real time $Ca^{2+}$ dynamics in an organotypic cultured hippocampal slice by the insults of artificial stress hormone, dexamethasone. The real time $Ca^{2+}$ dynamics could continuously be detected in cornus ammonis 3 (CA3) of the organotypic hippocampus for 8 hours under confocal microscopy. When dexamethasone concentration was increased, the $Ca^{2+}$ was also increased in a dose dependent manner at $1{\sim}100{\mu}M$ concentrations. Moreover, when the organotypic cultured hippocampal slice was treated with a glutamate receptor antagonist together with dexamethasone, the real time $Ca^{2+}$ dynamics were decreased. Furthermore, we confirmed by PI uptake study that glutamate receptor antagonist reduced the hippocampal tissue damage caused by dexamethasone treatment. Therefore, our new calcium ion dynamics system in organotypic cultured hippocampal slice after dexamethasone treatment could provide real time analysis method for investigation of brain injuries by stress.
Recent studies indicate that mitochondria are an important source of reactive oxygen species (ROS) in the spinal dorsal horn. In our previous study, application of malate, a mitochondrial electron transport complex I substrate, induced a membrane depolarization, which was inhibited by pretreatment with ROS scavengers. In the present study, we used patch clamp recording in the substantia geletinosa (SG) neurons of spinal slices, to investigate the cellular mechanism of mitochondrial ROS on neuronal excitability. DNQX (an AMPA receptor antagonist) and AP5 (an NMDA receptor antagonist) decreased the malate-induced depolarization. In an external calcium free solution and addition of tetrodotoxin (TTX) for blockade of synaptic transmission, the malate-induced depolarization remained unchanged. In the presence of DNQX, AP5 and AP3 (a group I metabotropic glutamate receptor (mGluR) antagonist), glutamate depolarized the membrane potential, which was suppressed by PBN. However, oligomycin (a mitochondrial ATP synthase inhibitor) or PPADS (a P2 receptor inhibitor) did not affect the substrates-induced depolarization. These results suggest that mitochondrial substrate-induced ROS in SG neuron directly acts on the postsynaptic neuron, therefore increasing the ion influx via glutamate receptors.
The N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor-ion channel complex is activated by the simultaneous presence of L-glutamate and glycine, allowing the binding of MK-801 to the phencyclidine (PCP) site of the receptor. The $[^3H]$MK-801 binding assay system was established for determination of pharmacological functions of test compounds acting at the glycine site of the receptor. The binding in the presence of 0.1 $\mu$M L-glutamate was increased by an agonist (glycine) in a dose-dependent fashion, while decreased by either partial agonist (R-(+)-HA-966) or antagonist (5,7-dichlorokynurenic acid: 5,7-DCKA). To distinguish partial agonism from antagonism, various concentrations of 7-chlorokynurenic acid (7-CKA) were added in the assay to eliminate the interference of the endogenous glycine present in the membrane preparations. The bindings in the presence of L-glutamate (0.1$\muM$) and 7-CKA (1, 5, or 10$\muM$) were increased by R-(+)-HA-966. Being a weak partial agonist, the extent of potentiation was much less than that by the agonist. These binding profiles were clearly distinguishable from those by the antagonist, 5,7-DCKA, which exhibited no intrinsic activity. The binding assays established in the present study are a useful system to classify ligands acting at the glycine site of the NMDA receptor by their pharmacological functions.
Background: Peripheral nerve injury leads to neuropathic pain, including mechanical hyperalgesia (MH). Nerve discharges produced by an injury to the primary afferents cause the release of glutamate from both central and peripheral terminals. While the role of centrally released glutamate in MH has been well studied, relatively little is known about its peripheral role. This study was carried out to determine if the peripherally conducting nerve impulses and peripheral glutamate receptors contribute to the generation of neuropathic pain. Methods: Rats that had previously received a left L5 dorsal rhizotomy were subjected to a spinal nerve lesion (SNL) or brief electrical stimulation (ES, 4 Hz pulses for 5 min) of the left L5 spinal nerve. The paw withdrawal threshold (PWT) to von Frey filaments was measured. The effects of an intraplantar (i.pl.) injection of a glutamate receptor (GluR) antagonist or agonist on the changes in the SNL- or ES-produced PWT was investigated. Results: SNL produced MH, as evidenced by decrease in the PWT, which lasted for more than 42 days. ES also produced MH lasting for 7 days. MK-801 (NMDAR antagonist), DL-AP3 (group-I mGluR antagonist), and APDC (group-II mGluR agonist) delayed the onset of MH when an i.pl. injection was given before SNL. The same application blocked the onset of ES-induced MH. NBQX (AMPA receptor antagonist) had no effect on either the SNL- or ES-induced onset of MH. When drugs were given after SNL or ES, MK-801 reversed the MH, whereas NBQX, DL-AP3, and APDC had no effect. Conclusions: Peripherally conducting impulses play an important role in the generation of neuropathic pain, which is mediated by the peripheral glutamate receptors.
Mood disorder is a common psychiatric illness with a high lifetime prevalence in the general population. Many prescribed antidepressants modulate monoamine neurotransmitters including serotonin, norepinephrine and dopamine. There has been greater focus on the major excitatory neurotransmitter in the human brain, glutamate, in the pathophysiology and treatment of major depressive disorder (MDD). Recently, ketamine, an N-methyl-D-aspartate receptor antagonist, has received attention and has been investigated for clinical trials and neurobiological studies. In this article, we will review the clinical evidence for glutamatergic dysfunction in MDD, the progress with ketamine as a rapidly acting antidepressant, and other N-methyl-D-aspartate receptor antagonist for treatment-resistant depression.
흰쥐태 뇌간의 세포를 배양하여 glutamate에 6시간까지 노출시 glutamate의 농도 및 노출 시간에 의존적으로 세포내 5-HT 및 5-HIAA의 함량이 감소하였고, 배양액으로 LDH의 유출이 증가하였다. Tetrodotoxin은 glutamate의 작용을 차단하지 못하였다. NMDA 수용체 통로 봉쇄제인 MK-801에 의해 glutamate의 작용이 효과적으로 차단되었고, non-NMDA 길항제인 CNQX는 효과가 없었으므로, serotonin 신경세포에 대한 glutamate의 작용은 NMDA 수용체의 자극에 의한 것으로 사료된다.
Kim, Jin-Hyuk;Shin, Hong-Kee;Chang, Hyun-Ju;Kim, Hye-Young
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제5권6호
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pp.457-466
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2001
Glutamate is the most common excitatory amino acid in the brain. Responsiveness of dendrites to the glutamate greatly varies depending on the application sites. Especially, a point of the maximal response to the glutamate of the dendrite is called as 'hot spot'. In our experiment, the responsiveness of the hot spot to the glutamate was investigated in the CA1 pyramidal neuron of the rat hippocampal slice. CNQX, the antagonist of AMPA receptor, blocked 95% of membrane current to the glutamate focal application $(I_{gl}).$ Train ejection of glutamate on one point of the dendrite increased or decreased the amplitude of $I_{gl}$ with the pattern of train, and the changes were maintained at least for 30 min. In some cases, glutamate train ejection also induced calcium dependent action potentials. To evoke long-term change of synaptic plasticity, we adopted ${\theta}-burst$ in the glutamate train ejection. The ${\theta}-burst$ decreased the amplitude of glutamate response by 60%. However, after ${\theta}-burst$ glutamate train ejection, the calcium dependent action potential appeared. These results indicated that the focal application of glutamate on the neuronal dendrite induced response similar to the synaptic transmission and the trains of glutamate ejection modulated the change of AMPA receptor.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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