The effect of MAP kinase activity on maturation of porcine oocytes was investigated. MAP kinase was detected by immunofluorescence staining in nucleus of oocytes just before entering GVBD (germinal vesicle breakdown)stage. In a Western blot with GV (germinal vesicle) from these oocytes (cultured for 25 hours), a shift of MAP kinase band a, pp.ared, suggesting an activated stage of the kinase. No activity was shown in the blot with GV isolated from, oocytes cultured for 0 hour. To confirm that activation of MAP kinase induce GVBD, we microinjected MAP kinase purified from matured oocytes starfish into the cytoplasm of oocytes in GV stage (cultured for 0 hour). The injected MAP kinase did not cause early a, pp.arance of GVBD. No oocytes showed GVBD state until 20 hours of culture. Activity of MAP kinase did not increase significantly after the injection. When the exogenous MAP kinase was injected into GV, GVBD was induced in about 20% of oocytes cultured for 5 to 10 hours. These results suggest that MAP kinase is traslocated to nucleus and function as a factor inducing GVBD.
Objectives: The present study was conducted to evaluate the mobile transposon-like element, clone MTi7 (MTi7) expression in the mouse ovary and to determine its role(s) in the mouse oocytes by RNA interference (RNAi). Methods: MTi7 mRNA expression was localized by in situ hybridization in day5 and adult ovaries. Double stranded RNA (dsRNA) was prepared for c-mos, a gene with known function as control, and the MTi7. Each dsRNA was microinjected into the germinal vesicle (GV) stage oocytes then oocyte maturation and intracellular changes were evaluated. Results: In situ hybridization analysis revealed that MTi7 mRNA localized to the oocyte cytoplasm from primordial to preovulatory follicles. After dsRNA injection, we found 43-54% GV arrest of microinjected GV oocytes with 68%-90% decrease in targeted c-mos or MTi7 mRNA. Conclusions: This is the first report of the oocyte-specific expression of the MTi7 mRNA. From results of RNAi for MTi7, we concluded that the MTi7 is involved in the germinal vesicle breakdown in GV oocytes, and MTi7 may be implicated with c-mos for its function. We report here that RNAi provides an outstanding approach to study the function of a gene with unknown functions.
Objective: Previously, we found that oocyte specific homeobox (Obox) 4 plays significant role in completion of meiosis specifically at meiosis I-meiosis II (MI-MII) transition. The purpose of this study was to determine the mechanism of action of $Obox4$ in oocyte maturation by evaluating downstream signal networking. Methods: The $Obox4$ dsRNA was prepared by $in$$vitro$ transcription and microinjected into the cytoplasm of germinal vesicle oocytes followed by $in$$vitro$ maturation in the presence or absence of 0.2 mM 3-isobutyl-1-metyl-xanthine. Total RNA was extracted from 200 oocytes of each group using a PicoPure RNA isolation kit then amplified two-rounds. The probe hybridization and data analysis were used by Affymetrix Gene-Chip$^{(R)}$ Mouse Genome 430 2.0 array and GenPlex 3.0 (ISTECH, Korea) software, respectively. Results: Total 424 genes were up (n=80) and down (n=344) regulated after $Obox4$ RNA interference (RNAi). Genes mainly related to metabolic pathways and mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathway was changed. Among the protein kinase C (PKC) isoforms, PKC-alpha, beta, gamma were down-regulated and especially the MAPK signaling pathway PKC-gamma was dramatically decreased by $Obox4$ RNAi. In the cell cycle pathway, we evaluated the expression of genes involved in regulation of chromosome separation, and found that these genes were down-regulated. It may cause the aberrant chromosome segregation during MI-MII transition. Conclusion: From the results of this study, it is concluded that $Obox4$ is important upstream regulator of the PKC and anaphase-promoting complex action for maintaining intact germinal vesicle.
농어의 난성숙과 배란유도를 위한 C하(21)-스테로이드와 HCG의 효능 비교실험이 in vitro에서 이루어졌다. 분리된 난모세포를 대상으로 17${\alpha}$-hydroxy, 20${\beta}$-dihydroprogesterone(17${\alpha}$20${\beta}$OHP), 17${\alpha}$-hydroxy, 20${\beta}$-dihydroprogesterone(17${\alpha}$20${\beta}$OHP : 5~100ng/ml)와 HCG(5~500IU/ml)를 사용하여 관찰한 난성숙 유도효과, 즉 GVM(germinal vesicle migration)과 GVBD(germinal vesicle breakdown)를 보면, 5ng/ml 농도의 17${\alpha}$20${\beta}$OHP와 17${\alpha}$20${\beta}$OHP를 제외한 모든 실험군에서의 반응은 대조군보다 효과가 있는 것으로 나타났으며, 특히 17${\alpha}$20${\beta}$OHP 50ng/ml 농도에서 가장 높은 성숙 유도효과를 보였다. GVBD 유도효과에 대한 17${\alpha}$20${\beta}$OHP(50ng/ml), HCG(50IU/ml) 그리고 이들 호르몬을 혼합처리한 17${\alpha}$20${\beta}$OHP+HCG에서는 혼합처리한 실험군이 가장 높은 반응을 보여 이들의 상호 보완적 작용을 관찰할 수 있었다. 난소조직을 대상으로 HCG와 17${\alpha}$20${\beta}$OHP를 사용하여 in vitro에서 농어의 배란유도효과를 관찰한 결과 사용한 모든 농도(17${\alpha}$20${\beta}$OHP : 1~1000ng/ml, HCG : 1~500IU/ml)에서 배란반응을 보였다. 특히 저농도 50ng/ml 또는 50IU/ml 이하로 처리하는 것이 더 효율적인 것으로 나타났다. 또한 HCG 처리가 17${\alpha}$20${\beta}$OHP보다 배란 반응에 더 민감하게 작용하는 것으로 생각된다.
U. unicinctus 난세포를 인공수정한 결과 수정 시기는 germinal vesicle (2n)기였으며 정자 중앙부에서 돌출한 actomere와 난모세포의 미세융모 끝에서 세포막 융합이 시작되는 것으로 관찰되었다. Germinal vesicle기에 수정이 가능하였으므로 pre-mitotic spindle이 관찰되지 않은 것으로 사료되었다. 수정 후 난모세포는 제1, 2감수분열을 수행하였으며 각각의 감수분열 장치들은 감수분열 말기에 난모세포막과 밀접한 구조를 형성하였고, 이 부위에서 극체가 형성되는 것을 볼 수 있었다. 극체 형성시 난모세포막은 세포분열의 관점에서 형태가 없는 것이 아니라 항-튜블린-FITC에 대한 활성구조를 형성하였으며, 각 감수분열 장치의 한쪽 극 (pole)과 어떤 복합구조를 형성하는 것으로 보인다. 제2극체 형성도 제1극체와 유사한 방법으로 형성되었으나, 제2감수분열 장치는 난모세포막의 접선에 평행하게 생성된 후 세포막을 향해 이동하면서 방추사의 양극성이 회전 (shift-rotation)하였고 접선에 수직으로 정렬하는 것을 볼 수 있었다. 난모세포의 감수분열 장치에서 방추사의 활성은 강하였으나 aster의 활성은 비교적 약한 것으로 보였다. 제2감수분열이 진행되는 동안 난모세포질에 머믈고 있던 정자는 점차 미래의 자성 전핵 형성부인 난모세포막 근접부로 이동하는 것이 관찰되었다. 난모세포막 근접부로 이동하는 동안 정자 aster의 활성은 점차 강해지는 반면 난모세포의 aster에서는 활성이 미약한 것으로 보아서 자웅 전핵융합을 주도하는 것은 정자 유래의 aster인 것으로 사료되었다. 제1난모세포의 감수분열 장치가 활성화되는 시기에 제1극체의 방추사에서도 강한 활성을 관찰할 수 있었다.
Rana ovarian follicles consist of oocyte, vitelline envelope, granulosa cells, and theca/epithelial layer. Using scanning electron microscopy, the surface structure of each follicular component was investigated. Changes in oocyte surface during oocyte maturation were also examined. Theca/epithelial layer was almost transparent and some blood vessels and granulosa cells were observed underneath in intact follicle. The number of granulosa cells was estimated to be 6700-7200 per oocyte. The granulosa cells partially overlapped each other and their microvilli penetrated the vitelline membrane via holes present in the vitelline envelope and seemed to be linked to oocyte microvilli. After removal of the vitelline envelope by microforcep, oocyte microvilli were observed on the surface of the devitellined oocyte. The oocyte microvilli formed partial clusters on the surface of white spot area which appears iust before germinal vesicle breakdown (GVBD), whereas they were evenly distributed in other areas. The microvilli became shorter and less dense with oocyte maturation. The lengths of oocyte microvilli in the immature and mature oocyte were 1.5 $\mu$m and 0.6 $\mu$m, respectively. The present study suggests a fundamental structural change occurring on the oocyte surface during maturation.
Maturation of oocytes is maintained by complex procedures along with follicular genesis and is a critical step for embryonic development. Purine known as an oocyte maturation regulator is present in follicular fluid. In this study, the roles of guanosine as a strong inhibitor of GVBD and a modulator of cyclic GMP concentration in ooyctes were revealed. Denuded immature oocytes were treated with guanosine, and the maturation rates and cGMP concentration of oocytes were measured. GVBD was blocked in a concentration dependent manner by guanosine, but this effect was reversible. However, GVBD was lagged yet not significant by adenosine. Both guanosine and adenosine modified cGMP concentration in oocytes. The characteristic of the guanosine-treated oocyte was significantly higher cGMP compared with the adenosine-treated oocyes at initial time of the maturation. Based these results, guanosine may be a strong and reversible GVBD inhibitor. Although the precise mechanism of guanosine presently is unclear, the results suggest that guanosine may lead the accumulation of cGMP in oocyte cytoplasm, which in turn suppresses GVBD.
본 연구에서는 MAPK 저해제인 U0126이 난자성숙과정에서 특히 감수분열, 미세소관 형성 그리고 액틴 필 라먼트 형성에 미치는 영향을 조사하였다. 그 결과 MAPK 단백질은 12시간째에 인산화되기 시작하여, 24시간째에 대부분 인산화 되었고 metaphase II에 이르기 까지 유지되었다. 배포단계(GV)에 있는 난자를 U0126의 $20{\mu}M$ 농도로 처리하였을 때 MAPK의 인산화가 완전히 억제되었으나 배포의 파열 단계(GVBD)로의 성숙에는 진행하였으나, metaphase I까지는 발달하지 못하였다. 또한 MAPK 저해제로 인해 비정상적인 방추사의 형성을 초래하였다. 난자를 배포의 파열단계(GVBD) 이후에 U0126을 처리하였을 때 극체의 방출은 정상 이였으나 중기 판의 배열과 염색체의 분열은 비정상적 이였다. 결론적으로, 유사분열 활성화 효소단백질인 MAPK의 활성은 돼지 난자의 체외성숙과정에서 배포단계(GV)의 염색체의 배열과 감수분열의 완성에 중요한 조절 인자임을 이번 연구를 통해 알 수 있었다.
Objective: The present study was done to clarify the effects of nicotine and nicotine tartrate on the mouse oocyte maturation in vitro. Methods: GV (germinal vesicle) oocytes were isolated from Graafian follicle of ovaries with sharp needles under a stereomicroscope from female mouse of ICR strain (4 weeks old). Collected oocytes were cultured for 17 hours at $37^{\circ}C$, 5% $CO_2$ in air and 100% humidified condition in incubator. New MHBS was the basic medium used in which nicotine, nicotine tartrate, and mecamylamine (antagonist of nicotinic acetylcholine receptor) were added depending on the experimental group. GV oocytes were cultured in one of these media. Results: Nicotine ($300{\mu}M{\sim}5mM$) had no effects on GVBD (germinal vesicle breakdown) compared to the control, but increasing concentration of nicotine led to an decrease in the first polar body formation. However, nicotine ($10{\sim}500{\mu}M$) induced GVBD in a dose-dependent manner of GV oocytes in a medium containing dbcAMP. Nicotine tartrate ($50{\mu}M{\sim}5mM$) had no effects on GVBD compared to the control but, increasing concentration of nicotine tartrate led to an decrease in the first polar body formation. Mecamylamine $10{\mu}M$ added to the medium containing nicotine ($300{\mu}M{\sim}5mM$) showed higher percentage of the first polar body formation compared to the nicotine ($300{\mu}M{\sim}5mM$) treatment group. Mecamylamine $10{\mu}M$ added to the medium containing nicotine tartrate ($50{\mu}M{\sim}5mM$) showed higher percentage of the first polar body formation compared to the nicotine tartrate ($50{\mu}M{\sim}5mM$) treatment group. Conclusion: The present study suggest that nicotine and nicotine tartrate have the harmful effects on the meiotic maturation of the mouse oocytes in vitro. However, mecamylamine block harmful effects of nicotine and nictine tartrate.
Perhaps the most common type of reproductive dysfunction in captive fish is failure of females to undergo final oocyte maturation and thus to ovulate and spawn. The success of aquaculture could therefore be improved by developing techniques to enhance natural spawning, artificial maturation, and/or to induce ovulation in farmed fish. This study aimed to investigate the effects of prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) and prostaglandin $F_{2{\alpha}}$ ($PGF_{2{\alpha}}$) on in vitro oocyte maturation (germinal vesicle breakdown, GVBD) and ovulation in the marine fish Chasmichthys dolichognathus. Post-vitellogenic follicles (0.80-0.94 mm diameter oocytes) were incubated with $PGE_2$ or $PGF_{2{\alpha}}$ at concentrations of 5, 50, or 500 ng/mL for 24 hours. A significant increase in GVBD was seen in 0.84 mm and 0.94 mm oocytes incubated with 50 ng/mL $PGE_2$ compared with the control. There was no significant increase in GVBD in any of the other experimental conditions (5 or 500 ng/mL $PGE_2$ or 5, 50, or 500 ng/mL $PGF_{2{\alpha}}$). Neither of the prostaglandins induced ovulation at the concentrations tested.These results suggest that GVBD was induced by incubation with 50 ng/mL $PGE_2$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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