Oocytes maturation, characterized by germinal vesicle (GV) breakdown, formation of the first meiotic spindle, expulsion of the first polar body and arrest in metaphase of second meiotic division (MII), occurs in preovulatory follicles in response to the surge of gonadotropin and leads to an ovulated oocyte in vivo. However, meiotic resumption in vitro occurs spontaneously following removal of cumulus-oocytes complexes (COCs) from the follicle. (omitted)
Keeping the intact germinal vesicle (GV) is essential for maintaining the capacity of mammals including human. It is maintained by very complex procedures along with folliculogenesis and is a critical step for getting competent oocyte. So far, a few mechanisms involved in folliculogenesis are known but GV arrest mechanisms are largely unrevealed. Cyclic AMP, a adenosine derived substance, have been used as inhibitor of germinal vesicle breakdown as a putative oocyte maturation inhibitor. In this study, we examined the potency of adenosine as GV maintainer and a possible signaling mediator for that. A1, A2b, and A3 were detected in cumulus cells of cumulus enclosed-oocyte (CEO). Intact of germinal vesicle was not kept like in follicle but the spontaneous maturation was inhibited by exogenous adenosine. It is inhibited with concentration dependent manners. Intracellular calcium level of cumulus was extensively increased after adenosine treatment. Based on these results it is suggested that one of the pathway for GV arrest by adenosine and its receptors is calcium mediated signaling pathway in CEO.
Kim, Sung-Woo;Park, Jin-Ki;Lee, Yun-Keun;Lee, Poongyeon;Kim, Jung-Ho;Han, Joo-Hee;Park, Chun-Gyu;Ha, Kwon-Soo;Chang, Won-Kyong
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2003년도 학술발표대회 발표논문초록집
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pp.61-61
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2003
We have investigated the novel function of tissue transglutaminase (tTG) in the germinal vesicle breakdown (GVBD) of mouse oocyte. tTG was identified in ooplasm and germinal vesicle by immunostaining assay. Spontaneous maturation of the oocytes elevated in situ activity of tTG by over 2.5 fold at 3 hr, which was determined by a confocal microscopic assay. However, incubation with monodansylcadaverine (MDC), a tTG inhibitor, blocked the activation of tTG. The possible role of tTG in GVBD was investigated by the use of two tTG inhibitors, MDC and cystamine. MDC largely inhibited the GVBD by a concentration dependent manner. GV-stage oocytes were matured to the GVBD stage by 78% at 3 hr in BWW culture medium. However, in the oocytes incubated with MDC for 3 hr, the GVBD rates were 43 and 11% by 50 and 100 mM, respectively. MDC also blocked the entry of 70 kDa TRITC-dextran from the ooplasm to the compartment of germinal vesicle, indicating a possible inhibition of nuclear pore disassembly by MDC. The role of tTG in GVBD was further investigated by microinjection with cystamine. The control oocytes, injected with DPBS, showed about 80 % of GVBD at 3 hr. But the oocytes injected with cystamine showed 15% of GVBD at 3 hr and a little higher rate at 6 hr. In addition, the inhibition of GVBD maturation by MDC was reversible by washing. These results suggested that tTG was involved in the early event of mouse oocyte maturation
Intact germinal vesicle (GV) arrest and release are essential for maintaining the fertility of mammals inducing human. Intact germinal vesicle release, maturation of oocytes is maintained by very complex procedures along with folliculogenesis and is a critical step for embryonic development. Cyclic guanosine monophosphate (cGMP) has been suggested a key factor for meiotic arrest but so far its mechanisms are controversy. In this study we examine the effects of cGMP on germinal vesicle breakdown in cumulus-enclosed oocytes and denuded oocytes. Spontaneous maturation was inhibited by a cGMP agonist, 8-Br-cGMP with concentration dependent manners both in cumulus-enclosed oocytes and denuded oocytes. The inhibitory effect was more severe in denuded oocytes than cumulus-enclosed oocytes. The Rp-8-Br-cGMP and Rp-pCPT-8-Br-cGMP did not severely block GVB compared to 8-Br-cGMP. The spontaneous GVB inhibitory effects were different by the existence of cumulus. Based on them it is suggested that the cumulus modulates the role of cGMP in GV arrest.
In the present studies, effect of progesterone on the germinal vesicle break-down of the mouse oocytes cultured in the micro tube was investigated. The results obtained are as follows: As dose of progesterone in the medium rose, accordingly the break-down of the germinal vesicle was suppressed. It was found that $ED_{50}$ was 15.7 ${\mu}g$/ml, and $ED_{90}$ 60.7 ${\mu}g$/ml of progesterone. The dose suppressing the oocyte maturation was apparently higher than that on the rabbit or on the mouse embryonal development. The inhibiting effect of progesterone on the GVBD was reversible. The germinal vesicle of the oocytes were broken down immediately in the medium upon removal of the hormone. Progesterone stops meiosis at any stage upon administration, while dbe AMP or theophylline supresses only the break-down of the nuclear membrane. Recovering of the meiotic division of the oocytes once exposed to progesterone was delayed a little. The inhibiting action of progesterone was not altered by adding more pyruvate or in the presence of higher concentration of the mineral ions in the culture medium.
In vitro maturation of porcine immature cumulus-enclosed oocytes can be enhanced by co-incubation with spermatozoa even before fertilization. The aim of this study was to determine whether the addition of spermatozoa into the culture medium can stimulate the meiosis resumption of porcine cumulus-enclosed oocytes arrested at germinal vesicle (GV). Cumulus-enclosed oocytes (CEOs) were collected from follicles of 3 to 5mm diameter. Porcine CEOs were cultured in tissue culture medium containing various meiosis inhibitors and spermatozoa. Oocytes were examined for evidence of GV and GV breakdown after 24 h culture. After 24 h culture $43.8\%$ of oocytes cultured in only TCM 199 remained at GV stage whereas $56.2\%$ of oocytes were able to resume meiosis. When porcine CEOs were cultured in the medium with meiosis inhibitor such as, dibutyryl cAMP (dbcAMP) and forskolin (Fo), more than $90\%$ of oocytes were not able to resume meiosis. However, co-culture of porcine CEOs with spermatozoa was able to overcome the inhibitory effect of dbcAMP and Fo. Irrespective of the presence of 3-isobutyl-1-methylxanthine (IBMX), no difference was observed in the proportion of oocyte reached germinal vesicle breakdown (GVBD). The present study suggests that dbcAMP and Fo prevent the spontaneous maturation of competent oocyte in culture after isolation from follicles and that mammalian spermatozoa contain a substance(s) that improves meiosis resumption in vitro of porcine cumulus-enclosed oocytes.
As a tumor suppressor homologue during mitosis, Chk2 is involved in replication checkpoints, DNA repair, and cell cycle arrest, although its functions during mouse oocyte meiosis and early embryo development remain uncertain. We investigated the functions of Chk2 during mouse oocyte maturation and early embryo development. Chk2 exhibited a dynamic localization pattern; Chk2 expression was restricted to germinal vesicles at the germinal vesicle (GV) stage, was associated with centromeres at pro-metaphase I (Pro-MI), and localized to spindle poles at metaphase I (MI). Disrupting Chk2 activity resulted in cell cycle progression defects. First, inhibitor-treated oocytes were arrested at the GV stage and failed to undergo germinal vesicle breakdown (GVBD); this could be rescued after Chk2 inhibition release. Second, Chk2 inhibition after oocyte GVBD caused MI arrest. Third, the first cleavage of early embryo development was disrupted by Chk2 inhibition. Additionally, in inhibitor-treated oocytes, checkpoint protein Bub3 expression was consistently localized at centromeres at the MI stage, which indicated that the spindle assembly checkpoint (SAC) was activated. Moreover, disrupting Chk2 activity in oocytes caused severe chromosome misalignments and spindle disruption. In inhibitor-treated oocytes, centrosome protein ${\gamma}$-tubulin and Polo-like kinase 1 (Plk1) were dissociated from spindle poles. These results indicated that Chk2 regulated cell cycle progression and spindle assembly during mouse oocyte maturation and early embryo development.
The ability of oocytes to undergo normal fertilization and embryo development is acquired during oocyte maturation which is transition from the germinal vesicle stage (GV), germinal vesicle breakdown (GVBD) to metaphase of meiosis II (MII). Part of this process includes redistribution of inositol 1, 4, 5-triphosphate receptor (IP3R), a predominant $Ca^{2+}$ channel on the endoplasmic reticulum membrane. Type 1 IP3R (IP3R1) is expressed in mouse oocytes dominantly. At GV stage, IP3R1 are arranged as a network throughout the cytoplasm with minute accumulation around the nucleus. At MII stage, IP3R1 diffuses to the entire cytoplasm in a more reticular manner, and obvious clusters of IP3R1 are observed at the cortex of the egg. This structural reorganization provides acquisition of $[Ca^{2+}]_i$ oscillatory activity during fertilization. In this review, general properties of IP3R1 in somatic cells and mammalian oocyte are introduced.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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