The aim of this study was to investigate whether addition of porcine epididymal fluid (pEF) into culture medium during in vitro maturation influences the nuclear maturation of porcine germinal vesicle (GV) oocytes. Porcine cumulus-oocyte complexes (COCs) from follicles were cultured in tissue culture medium 199 (TCM 199) containing pEF. After 48hr of culture, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. The proportion of oocytes reaching at metaphase II (M II) stage was significantly (p<0.05) increased in oocytes cultured in the media supplemented with 10% pEF during in vitro maturation than in those without pEF regardless of cumulus presence or absence (54.6% vs 22.5%, 51.7% vs 24.2%). The supplementation of pEF during maturation of oocyte enhanced oocytes maturation in a dose-dependent manner in vitro. Also significant differences (p<0.05) in the percentage of MII oocytes were observed according to exposure period in pEF. Present study suggests that pEF contains a enhancing component(s) for nuclear maturation of porcine immature oocytes in vitro.
Porcine follicular oocyte, collected from antral follicles (2~5 mm in diameter) of gilt ovaries were matured in vitro porcine follicular fluid (pFF) with PMSG (pFF-PMSG) buffer with at 37$^{\circ}C$ under 5% CO2 in air their ability of maturation promoting factor (MPF), of GV and GVBD formation was examined followed during time after in vitro culture. Formation of second metaphase was observed in 57.6% and 71.2% of matured in with pFF-PMSG buffer to 45 and 50 hours after invitro. Porcine oocytes cultured in pFF-PMSG for various periods of up to 30 hours were stained with Hoechst-33342 and classified according to maturation before assaying. Histone H1 kinase (H1K) activity was assayed during meiotic maturation in porcine oocytes matured in pFF-PMSG buffer in vitro. In oocytes matured in pFF-PMSG, H1K activity was at the 30 hours after culture and increased about 15 fold than at the germinal vesicle stage with before at the cultured in vitro. This pattern is similar to those reported in non-mammalian species and su, pp.rts the concepts that H1K is ubiquitous in eukaryotes and controls the meiotic cell cycle in mammals. These results suggest that the maturation pFF-PMSG buffer used influences the fluctuation pattern of H1K activity and biological characteristics of porcine oocytes cultured in vitro.
본 연구는 옴개구리(Rana rugosa)의 생식주기를 파악하고 이들 난자들의 체외 성숙조건을 구하기 위하여 수행하였다 개구리들의 gonadosomatic index(G51)는 4월에서 8월사이에는 비교적 낮았고 9월에서 이듬해 3월까지는 높았다 여포들의 성장은 주로 6월에서 9월 사이에 이루어지는데 난소내에서도 여포들의 성장 속도는 일부 다른 것으로 나타났다. 야외 관찰에서 이 개구리들은 서식지의 온도에 따라 4월에서 7월 사이에 산란을 한다는 것과 10월에서 이듬해 3월까지 동면을 한다는 것을 말았다. 산란기에 취한 여포 난자들은 생체외 배양에서 progesterone에 성숙반응(germinal vesicle breakdown(GVBD))을 일으키지 않았다. 그러나 protein klnase C(PKC)의 촉진제인 12-O-tetradecanoylphorbol 13-acetate(TPA) 혹은 Na+/K+ ATPase의 저해제인 ouabain을 progesterone과 동시에 처리했을 때에는 성숙반응을 일으켰다(각각 86%와 80%). TPA 로 핵붕괴를 일으킨 난자의 세포질을 미성숙 난자에 주입하면 미성숙 난자의 핵붕괴를 유도하였으며 성숙된 다른 종의 난자들의 세포질도 이와 같은 효과를 나타내었다. TPA의 성숙유도 효과는 5분의 노출 기간으로도 충분하였으며 PKC의 저해제인 H-7을 처리하면 그 효과가 없어졌다 이러한 결과들은 옴개구리의 난자는 호르몬에 성숙반응을 일으킨지 않으나 PKC 활성화 이후 단계는 정상이라는 것을 의미한다.
The aim of this study is to investigate the effect of porcine epididymal fluid (pEF) on in vitro-maturation and subsequent fertilization of porcine follicular oocytes. Porcine cumulus-oocytes complexes retrieved from antral follicles were cultured in tissue culture medium (TCM)-l99 supplemented with pEF of different concentrations. At 48 h after culture, development of oocytes to germinal vesicle (GV) breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II were examined Significant (p<0.05) increase in the proportion of oocytes developed to MII stage was observed in oocytes cultured in pEF-containing TCM-l99 than in oocytes cultured in pEF-free TCM-199 (46.2% vs 16.7%), which was a dose-dependent manner. Subsequently, the proportion of monospermic fertilization were significantly (p<0.05) increased in oocytes cultured in the TCM supplemented with pEF than those cultured in pEF-free TCM-199 (51.0% vs 24.1%). In the second series of experiment, the percentage of MII oocytes was significantly (p<0.05) increased after exposure of oocytes to pEF during the first 22 h period of culture than after exposure of oocytes to pEF during the next 24 h of culture, while no significant difference in the percentage of monospermy was observed. The results of this study demonstrate that pEF contains at least enhancing component(s) for nuclear maturation.
This study aimed to recover the ovarian function through in vitro culture of preantral follicles from aged mice. First, we isolated the preantral follicles from ovaries of sixty-seven-week old B6D2F1 mice with decreased fecundity to know how many follicles were present in them, which was 6 preantral follicles including 2 primary, 2 early secondary and late secondary follicles from 8 aged mice. It was confirmed that a few follicles (~2) were present in aged mice through histological analysis compared to adult mice as control. The 9 days of in vitro culture of preantal follicles showed in vitro growth and induced maturation after treatment with hCG (2.5 IU/mL) and EGF (5 ng/mL). Cumulus cells in the cumulus-oocyte complexes (COCs) were removed using hyaluronidase and oocytes at the germinal vesicle (GV) and GV breakdown (GVBD) were obtained from preantral follicle culture of aged mice in vitro. In conclusion, these observations demonstrated that there still were a few preantral follicles in the ovaries of 67 week-old mice, which we were able to culture in vitro and oocytes were obtained from them. This study proposed an in vitro culture system using preantral follicle as a therapeutic strategy for fertility preservation in humans for assisted reproductive medicine.
We studied steroid metabolites produced from red-spotted grouper ovarian follicles during maturation. Oocytes with 350-500 ㎛ diameter were in vitro incubated in the presence of [3H] 17α-hydroxyprogesterone as a precursor. Steroid metabolites were extracted from incubated media and oocytes. The extracts were separated and identified using thin layer chromatography, high performance liquid chromatography and gas chromatography-mass spectrometry. The identified metabolites were androstenedione (A4), testosterone (T) and estrone (E1). The metabolites of A4 was dominant in all size of oocytes and it was the highest in 480 ㎛ diameter oocytes. The metabolites of two progestins, 17α,20β-dihydroxy-4-pregnen-3-one and 17α,20α-dihydroxy-4-pregnen-3-one were detected in the oocytes less than 480 ㎛ diameter although they were not identified definitely. In the oocytes of 480 ㎛ diameter, metabolite of progestin was the highest, and germinal vesicle (GV) was still in the middle of cytoplasm. In the oocytes of 500 ㎛ diameter, GV was began to migrate and the major metabolites were A4 and E1. The metabolite of E1 was detected in all size of oocytes and it was higher than that of E2. These results suggest that oocytes of 480 ㎛ diameter are the transitional stage involving steroidogenic shift to final oocyte maturation and potential function of E1 during maturation process.
Effects of changes in photoperiod on the reproductive events in fish are suggested to be mediated mainly via the action of melatonin (MEL). Changing levels of plasma MEL throughout the day and year are suggested to influence the hypothalamus-pituitary-gonadal axis in fish. Therefore, in this study, we aimed to investigate the effects of MEL on oocyte maturation and germinal vesicle breakdown (GVBD) in the marine fish, Chaenogobius annularis, in vitro. Oocytes at three different stages (pre-, mid-, and late-vitellogenesis) were incubated with (a) only MEL (5, 10, 50, 100, 500, and 1,000 pg/mL) and (b) 50 pg/mL of 17α,20β-dihydroxy-4-pregnen-3-one (17α20βP), maturation-inducing hormone (MIH) of this species, and MEL (4-h incubation before addition of MIH). Any single MEL treatment did not significantly induce GVBD. However, treatment with 50 pg/mL MEL or MIH significantly induced GVBD. These results suggest that preincubation with MEL accelerates the effect of MIH on longchin goby oocyte maturation.
본 연구는 감마선 조사 후 원시반포의 퇴화과정에서 나타나는 형태학적인 변화를 알아보기 위하여 시행되었다. ICR 계통의 생후 3 주된 미성숙 생쥐에 $LD_{80(30)}$의 선량인 8.3 Gy를 2 시간 동안 전신조사하였다. 방사선 조사 후 0 시간, 3 시간, 6 시간, 그리고 12 시간에 난소를 적출하여 조직절편을 제작한 후 가장 큰 절편을 관찰하였다. 정상 대 퇴화 난포의 비율은 조사 후 6 시간에 유의하게 감소하였다. 6 시간에 퇴화된 원시난포의 수가 증가하였으며, germinal vesicle이 관찰되지 않거나 지질방울이 증가하였으며, 난막이 사라진 것을 알 수 있었다. 과립세포의 모양은 둥글게 변하였으며, 세포자연사하는 세포가 관찰되었다. 대조군의 경우 정상 대 퇴화 원시난포의 비율이 62.50% 이었으나, 이 비율은 0 시간, 3 시간, 6 시간, 12 시간에 각각 51.61 %, 48.97 %, 11.11 %, 7.14 %로 감소하였다. 결론적으로 방사선에 의해서 윈시난포에 퇴화가 유발되는데 그 양상은 세 가지 유형을 나타내었다. 과립세포의 모양은 정상적이나 난자의 세포자연사, 난자의 형태는 정상적이나 한 개 혹은 그 이상의 과립세포가 세포자연사하는 경우, 혹은 난자와 과립세포 모두가 세포자연사 과정을 겪는 경우를 확인할 수 있었다. 본 연구를 통해 원시난포 퇴화를 형태학적으로 규명할 수 있는 단서가 제시되었다.
This study was conducted to improve efficiency of a follicle culture system without reducing developmental competence of intrafollicular oocytes. Preantral follicles (100 to $125{\mu}m$ in diameter) of F1 hybrid (B6CBAF1) mice were cultured singly for 216 h in modified ${\alpha}$-MEM-glutamax medium, to which 2.5 IU/ml hCG and epidermal growth factor was added 16 h prior to the end of culture. Medium change was either performed three times (54 h interval), twice (72 h interval), once (108 h interval), or not at all (216 h interval). Maturation (progression to the metaphase II stage) of intrafollicular oocytes was detected from 4 days after culture in the three-times change treatment, while all treatments yielded mature oocytes from day 5 of culture. Compared with the three-times change, decreasing the change frequency to once did not reduce the capacity to begin maturation (germinal vesicle breakdown of 82 to 86%), to mature (78 to 79%) and to develop into blastocysts after parthenogenetic activation (29 to 32%). Morphological parameters were similar among these treatments. Except for the no medium change treatment, similar colony-forming activity of inner cell mass cells after culturing of blastocysts in leukemia inhibitory factor-containing medium was detected, while the morphology of the colony-forming cells deteriorated in the change-once treatment compared with the change twice or three-times. In conclusion, the efficiency of the preantral follicle culture system could be improved by reducing frequency of medium change up to a 72 h interval (three times in total 216 h culture) without decreasing developmental competence of oocytes.
본 연구는 이식 후 남은 잉여의 포배기 배아를 두 번의 냉동과 융해 과정을 반복적으로 실시한 후 이식한 결과에 관한 보고이다. 사람 포배기 배아의 동결보존에서 높은 생존율과 성공적인 임신율이 보고되고 있으나 미성숙 난자로부터 발달한 포배기 배아에 두 번의 초급속 냉동 방법을 실시한 후 이식한 보고는 되어 있지 않다. 이에 본 연구에서는 다낭성 난소 증후군 환자에게서 얻은 미성숙 난자로부터 발달한 포배기 배아를 artificial shrinkage 후 초급속 냉동함으로써 생존율을 높이는 방법을 이용하여 재냉동 이식하였을 때 임신에 성공한 증례를 보고하고자 한다. 29세의 환자로부터 채취한 55개의 미성숙 난자들(germinal vesicle stage oocytes)을 체외배양 하여 성숙한 37개의 난자들로부터 30개의 수정란을 얻을 수 있었다. 12개의 배아가 포배기 배아까지 발달하였으며 이 중 3개의 양질의 포배기 배아를 선별하여 이식하였고, 이식을 한 후에 남은 9개의 포배기 배아들은 artificial shrinkage의 과정을 마친 후에 초급속 냉동 방법을 이용하여 동결보존 하였다. 그 중, 4개의 포배기 배아들을 융해한 후 이식을 하지 않고 다시 재냉동을 하여 보관하였고 이 후 재냉동 되었던 4개의 포배기 배아들을 다시 융해 하여 이식을 한 결과 임신이 되어 건강한 남아를 분만하였다. 이로써 미성숙 난자로부터 얻은 포배기 배아가 두 번의 냉동과 융해의 과정을 통해 크게 손상을 입지 않고 생존할 수 있다는 것을 알 수 있었다. 그러므로 융해이식 후 남은 잉여의 포배기 배아를 다시 냉동 보관하여 다음 주기에 이용함으로써 축적된 임신율을 증가시킬 수 있을 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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