Improvement of endoglucanase activity was accomplished by utilizing error-prone rolling circle amplification, supplemented with 1.7 mM $MnCl_2$. This procedure generated random mutations in the Bacillus amyloliquefaciens endoglucanase gene with a frequency of 10 mutations per kilobase. Six mutated endoglucanase genes, recovered from six colonies, possessed endoglucanase activity between 2.50- and 3.12-folds higher than wild type. We sequenced these mutants, and the different mutated sites of nucleotides were identified. The mutated endoglucanase sequences had five mutated amino acids: A15T, P24A, P26Q, G27A, and E289V. Among these five substitutions, E289V was determined to be responsible for the improved enzyme activity. This observation was confirmed with site-directed mutagenesis; the introduction of only one mutation (E289V) in the wild-type endoglucanase gene resulted in a 7.93-fold (5.55 U/mg protein) increase in its enzymatic activity compared with that (0.7 U/mg protein) of wild type.
Endoglucanase gene of Pseudomonas sp. LBC505 was previously cloned in pUC19 to yield plasmid pLCl. The Pseudomonas sp. LBC505 endoglucanase gene was subcloned in a temperature-regulated Es-cherichia coli expression vector, pAS1, containing the leftward promoter $P_L$ of bacteriophage lambda. The level of gene expression was controlled by the thermal inactivation of the heat-sensitive lambda cI857 repressor. Best yield of endoglucanase was obtained by lowering the incubation temperature to $37^{\circ}C$ after induction at $42^{\circ}C$ for 1h. Under these conditions enzyme production continued for about 5h at a gradually decreasing rate. Ecoli harboring recombinant plasmid pASC10 expressed 4.3 times as much CMCase activity as E.coli containing pLCl. To enhance the expression level of endogl, ucanase gene, we have also changed the presumptive Shine-Dalgamo sequence (AGAGGT) of the gene to consensus sequence (AGGAGGT) by site-directed mutagenesis. The genes mutated were subcloned in pASl resulting in the formation of recombinant plasmid pASS50. E.coli harboring the plasmid pASS50 expressed 6.2-fold higher levels of CMCase activity than that of E.coli harboring pLC1.
Kim, Soohyun;Kim, Seung-Il;Choi, Jong-Soon;Chung, Young-Ho;Chun, Soon-Bai;Park, Young-Mok
Journal of Photoscience
/
v.3
no.1
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pp.23-28
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1996
To investigate the structure and function of photosystem I, cartridge mutagenesis technique was used to inactivate the psaB gene of photosystem I. From the screen, many strains which have potential defects in photosystem I were generated. Biochemical analysis revealed that B2, one of the mutant, had a reduced amount of chlorophyll. Electron transfer activitx from photosystem II to photosystem I as oxygen uptake was the rate of 64 % of wild type. Also B2 showed a decreased photosystem I activity when measured by 77 K fluorescence emission spectrum. Particularly, immunodetection analysis showed that the B2 had reduced amount of PsaA/PsaB, but a normal range of PsaC and PsaD. Here we present a photoheterotrophic mutant for psaB gene as a unique model strain for future study of structural/functional relationship and biogenesis of photosystem I.
To elucidate the role of vir-box in the expression of the virE gene, the vir-box was modified by site-directed mutagenesis and tested for ${\beta}$-galactosidase activities. A, C, T T, A, C substitutions at -62, -63, and -65 positions, destroying the 5'-region of the vir-box and A T at position -55, destroying the 3'-region of the vir-box respectively, showed only 17% promoter activity. When the vir-box was modified to contain perfect dyad symmetry structure (DSR) by the substitutions T, G A, T at -60 an d-61 positions, ${\beta}$-glactosidase activity increased 302%. These results indicate that the 5' and 3'-region of vir-box as well as the imperfect DSR of the vir-box itself may play a very important role in the regulation of virE gene expression.
IPSKCDNA gene(1.8 kbp) encoding rat brain IP3K enzyme contained Not I restric site in open reading frame. The Not I sequence, GCGGCCGC, was converted to GCAGCCGC by site-directed mutagenesis. The mutated IP3KcDNA was digested with EcoR I and ligated with EcoR I-restricted psp72·Not2 vector. The resulting psp72 · Not2-IP3KCDNA was digested with the Not I restriction enzyme and then subcloned into the Not I -digested PZIP · NeoSV(X) mammalian expression vector. The PZIP · NeoSV(X) -IPSKCDNA was transfected into CCL39 hamster lung fibroblast cells. The efficiency of the expressed IPSKCDNA gene was significantly higher than expected generally, not only a mean 5-fold increase in the amount of enzyme, but also 16-fold increase in enzyme activity from tractsfected CCL39 cells by the method of Western blot using anti-lP3K antibodies. Both distribution of IPSK in various rat tissues and biochemical properties were discussed.
We have evaluated a new mutagenesis strategy called random insertional mutagenesis with subtracted cDNA fragments. The cDNAs from long day Arabidopsis plants were subtracted by cDNAs from short day plants using PCR based cDNA subtraction. The subtracted cDNAs were inserted between 35S promoter and 3'-NOS terminator regardless of orientation. When the cDNA library was used for the random insertion into Arabidopsis genome by Agrobacterium-mediated transformation, approximately 15% of transformants showed abnormal development in leaf, floral organ, shoot apex. When 20 mutants were analyzed, 12 mutants showed single cDNA fragment insertion and 8 mutants showed more than 2 transgene insertions. Only two mutants among 12 mutants that have single cDNA insert showed consistent phenotype at T2 generation, suggesting the genetic instability of the mutants.
When an elongating RNA polymerase encounters DNA damage on the template strand of a transcribed gene it can either be arrested by or be transcribed through the lesion. Lesions that arrest RNA polymerases are thought to be subject to transcription-coupled repair, whereas that damage that is bypassed can cause miscoding, resulting in mutations in the transcript (transcriptional mutagenesis). We have developed a technique using a plasmid-based luciferase reporter assay to determine the extent to which a particular type of DNA base modification is capable of causing transcriptional mutagenesis in vivo. The system uses Escherichia coli strains with different DNA repair backgrounds and is designed to detect phenotypic changes caused by transcriptional mutageneis under nongrowth conditions. In addition, this method is capable of indicating the extent to which a particular DNA repair enzyme (or pathway) suppresses the occurrence of transcriptional mutagenesis. Thus, this technique provides a tool with which the effects of various genes on non-replication-dependent pathways resulting in the generation of mutant proteins can be gauged.
There are three pseudourdine ($Psi$)bases in the E. coli $tRNA^{phe}$ In order to study the function of the pseudouridine bases in the $tRNA^{phe}$, changes of bases $tRNA^{phe}$ gene to other bases were undertaken by the site-specific mutagenesis. Site-specific mutagenesis of T in the pheW gene, a $tRNA^{phe}$ gene of E. coli, corresponding to the baseat the No.32 position to C and also T corresponding to the base at the No.39 position to C were performed using Kunkel's uracil-containing template method. Identification of mutants were undertaken by the KNA sequencing techniques of the mutated pheW genes and activities of the mutated pheW genes complementing to E. coli NP37 mutant($pheS^{-ts}$) using the recombinant plasmid containing the mutated genes. Neither NP37 harboring pheW gene mutated at No.32 position nor NP37 harboring pheW gene mutated at No.39 position can be grown at non-permissive temperature. The result means that both mutated pheW genes can not complement to E. coli NP37, and that the pseudouridine bases are essential to the activity of the E. coli $tRNA^{phe}$ in vivo.
Transgenic animal and cell line models which are recently developed and used in toxicology fields combined with molecular biological technique, are powerful tools to study the mechanism of mutation in vivo and in vitro, respectively. Transgenic models, which have exogenous DNA incorporated into their genome, carry recoverable shuttle vector containing reporter genes to assess endogenous effects or alteration in specific genes related to disease processes. The lac I and lac Z gnee most widely used as a mutational target in transgenic systems. The assay is performed by treatment with putative mutagenic agents, isolation of genomic DNA from cells or tissues, exposure the isolated DNA to in vitro packaging extract, plating and sequencing. The results from these processes provide not only mutant frequency as quantitative evaluation but also mutational spectrum as qualitative evaluation of various agents. Therefore we introduce and review the principle, detailed procedure and application of transgenic mutagenesis assay system in toxicology fields especially in mutagenesis and carcinogenesis.
The age-46.5 gene of Escherichia coli is induced by nitrate ion and regulated by Fnr, NarL, and NarP during anaerobic growth. aeg-46.5::lacZ fusion gene shows its maximum expression in narL host after two hours of aerobic to anaerobic switch in M9-Glc-nitrate medium. Fnr and NarP act as positive regulators, and NarL acts as a negative regulator. The control region of the aeg-46.5 was identified and the binding sites of regulator proteins have been predicted (Reznikoff and Choe (1993)). It has two symmetry regions. One is located at -52~-37 bp from the anaerobic mRNA 5'-end, which is the binding site of NarL and NarP. The other is located at +37~+56 bp from the 5'-end of mRNA. In this study, the downstream symmetry region from the mRNA 5'-end was investigated by site-directed mutagenesis. The destruction of the symmetry region increases the expression level of aeg-46.5. We propose that the symmetry region interferes with the expression of aeg-46.5 possibly by forming a stem-and-loop structure.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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