Su, Xin-Zhuan;Jiang, Hongying;Yi, Ming;Mu, Jianbing;Stephens, Robert M.
Parasites, Hosts and Diseases
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v.47
no.2
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pp.83-91
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2009
The completion of many malaria parasite genomes provides great opportunities for genomewide characterization of gene expression and high-throughput genotyping. Substantial progress in malaria genomics and genotyping has been made recently, particularly the development of various microarray platforms for large-scale characterization of the Plasmodium falciparum genome. Microarray has been used for gene expression analysis, detection of single nucleotide polymorphism (SNP) and copy number variation (CNV), characterization of chromatin modifications, and other applications. Here we discuss some recent advances in genetic mapping and genomic studies of malaria parasites, focusing on the use of high-throughput arrays for the detection of SNP and CNV in the P. falciparum genome. Strategies for genetic mapping of malaria traits are also discussed.
The genus Burkholderia consists of extremely versatile bacteria that occupy diverse niches and are commonly encountered in the rhizosphere of crop plants. In this study, we characterized three plant growth promoting strains assigned as Burkholderia sp. using biochemical and molecular characterization. The Burkholderia spp. strains CBMB40, CBPB-HIM, and CBPB-HOD were characterized using biochemical tests, BIOLOG carbon substrate utilization, fatty acid methyl ester analysis, analysis of recA gene sequences, and DNA-DNA hybridization. The results from these studies indicated that the strains CBMB40, CBPB-HIM, and CBPB-HOD can be assigned under Burkholderia vietnamiensis, Burkholderia ubonensis, and Burkholderia pyrrocinia, respectively.
Although filamentous fungi are used extensively for protein expression, their use for the production of heterologous glycoproteins is constrained by the types of N-glycan structures produced by filamentous fungi as compared to those naturally found on the glycoproteins. Attempts are underway to engineer the N-glycan synthetic pathways in filamentous fungi in order to produce fungal expression strains which can produce heterologous glycoproteins carrying specific N-glycan structures. To fully realize this goal, a detailed understanding of the genetic components of this pathway in filamentous fungi is required. In this review, we discuss the characterization of the $\alpha$-mannosidase gene family in filamentous fungi and its implications for the elucidation of the N-glycan synthetic pathway.
Citrus blast caused by bacterium Pseudomonas syringae is a very important disease of citrus occuring in many areas of the world, but with few data about genetic structure of the pathogen involved. Considering the above fact, this study reports genetic characterization of 43 P. syringae isolates obtained from plant tissue displaying citrus blast symptoms on mandarin (Citrus reticulata) in Montenegro, using multilocus sequence analysis of gyrB, rpoD, and gap1 gene sequences. Gene sequences from a collection of 54 reference pathotype strains of P. syringae from the Plant Associated and Environmental Microbes Database (PAMDB) was used to establish a genetic relationship with our isolates obtained from mandarin. Phylogenetic analyses of gyrB, rpoD, and gap1 gene sequences showed that P. syringae pv. syringae causes citrus blast in mandarin in Montenegro, and belongs to genomospecies 1. Genetic homogeneity of isolates suggested that the Montenegrian population might be clonal which indicates a possible common source of infection. These findings may assist in further epidemiological studies of this pathogen and for determining mandarin breeding strategies for P. syringae control.
TMC (Tautomycetin) is a liner polyketide immunosuppressive antifungal compound produced by Streptomyces spp. Inhibition of T cell proliferation with TMC was observed highly efficient at 100-fold lower than those needed to achieve maximal inhibition with cyclosporin A. To elucidate the biosynthetic pathway of TMC, a genomic DNA library was constructed using a E. coil-Streptomyces shuttle cosmid vector, pOJ446. The DNA libraries were screened by colony blot hybridization using several polyketide ${\beta}-ketosynthase$ (KS) probes amplified from TMC-producing Streptomyces genomic DNA using polymerase chain reaction (PCR), of which the degenerate primers were designed based on the highly conserved sequences present in KS domains of various type I polyketide synthase genes in Streptomyces species. This library construction and screening approach led to the isolation of several positive cosmid clones representing type I polyketide biosynthetic gene clusters. In addition, a Streptomyces regulatory gene called afsR2 (a global regulatory gene stimulating antibiotic production in both S. coelicolor and S. lividans) was successfully integrated into the TMC-producing Streptomyces chromosome via E. coil-Streptomyces heterologous conjugation mehtod. The more detailed results of production improvement and genetic characterization of TMC-producing Streptomyces spp. will be discussed.
Auxin-binding protein 57 ($ABP_{57}$), a soluble auxin-binding protein, acts as a receptor to activate plasma membrane (PM) $H^+-ATPase$. Here, we report the cloning of abp57 and the biochemical characterization of its protein expressed in E. coli. The analysis of internal amino acid sequences of $ABP_{57}$ purified from rice shoots enabled us to search for the corresponding gene in protein DB of NCBI. Further BLAST analysis showed that rice has four abp57-like genes and maize has at least one homolog. Interestingly, Arabidopsis seems to have no homolog. Recombinant $ABP_{57}$ expressed in E. coli caused the activation of PM $H^+-ATPase$ regardless of the existence of IAA. Scatchard analysis showed that the recombinant protein has relatively low affinity to IAA as compared to natural $ABP_{57}$. These results collectively support the notion that the cloned gene is responsible for $ABP_{57}$.
To illustrate whether a hemolysin in $\delta$-endotoxins of Bacillus thuringiensis strain 73E10-2 and subsp. israelensis had immunological identity, a cyt gene of the strain 73E10-2 which encodes a hemolysin was cloned to B. subtilis (transformant 2753). The transformant 2753 containing cyt gene produced the hemolysin which lysed sheep erythrocytes after treatment of proteinase K. The hemolysin was proved also to be toxic against mosquito larvae (Aedes aegypti). The molecular weight of the hemolysin produced from the transformant 2753 was determined to be about 25 kDa by SDS-PAGE and immunoblot. The hemolysin in $\delta$-endotoxin of subsp. israelensis and subsp. kyushensis did not react on immunoblot using polyclonal anti-$\delta$-endotoxin of the strain 73E10-2, but 70-140 kDa mosquitocidal toxins in $\delta$-endotoxin of subsp. kyushuensis reacted.
Park, Myeong-Soo;Yoon, Hyeon-Jin;Rhim, Seong-Lyul;Ji, Geun-Eog
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.11
no.1
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pp.106-111
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2001
A ${\beta}-galactosidase$ gene of Bifidobacterium adolescentis Int57 (INT57) was cloned using the shotgun method. The sequence of the ${\beta}-galactosidase$ gene existing in the sequenced 3,260-bp fragment showed higher than 40% homology with other bacterial ${\beta}-galactosidase$ genes. The expression in Escherichia coli suggested that the ${\beta}-galactosidase$ might have a monomeric, dimeric, or tetrameric protein structure. This is probably the first peer-reviewed sequence analysis of the ${\beta}-galactosidase$ gene of the genus Bifidobacterium.
LEE JAE HYUNG;CHOI TAE-JIN;NAM SOO WAN;KIM YOUNG TAE
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.4
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pp.838-843
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2005
Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) is a small secretory protein and a member of the nerve growth factor (NGF) gene family. We cloned the flounder BDNF gene from a flounder brain cDNA library. The nucleotide sequence of the cloned gene showed an open reading frame (ORF) consisting of 810 bp, corresponding to 269 amino acid residues. The tissue distribution of flounder BDNF was determined by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) in brain, embryo, and muscle tissues. To express fBDNF using a eukaryotic expression system, we constructed the vector mpCTV-BDNF containing the fBDNF gene and transformed this vector into Chlorella ellipsoidea. Stable integration of introduced DNA was confirmed by PCR analysis of genomic DNA, and mRNA expression in C. ellipsoidae was confirmed by RT-PCR analysis.
Seo, Yong-Bae;Choi, Seong-Seok;Nam, Soo-Wan;Lee, Jae-Hyung;Kim, Young-Tae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.12
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pp.1542-1546
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2009
Zeaxanthin glucosyltransferase (CrtX) mediates the formation of zeaxanthin to zeaxanthin diglucoside. Here, we report cloning of the crtX gene responsible for zeaxanthin diglucoside biosynthesis from Paracoccus haeundaensis and the production of the corresponding carotenoids in transformed cells carrying this gene. An expression plasmid containing the crtX gene (pSTCRT-X) was constructed, and Escherichia coli cells containing this plasmid produced the recombinant protein of approximately 46 kDa. Biosynthesis of zeaxanthin diglucoside was obtained when the plasmid pSTCRT-X was co-transformed into E. coli containing the pET-44a(+)-CrtEBIYZ carrying crtE, crtB, crtI, crtY, and crtZ genes required for zeaxanthin $\beta$-D-diglucoside biosynthesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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