Lung cancer is a leading cause of cancer death worldwide; however, despite major advances in cancer treatment during the past two decades, the prognostic outcome of lung cancer patients has improved only minimally. This is largely due to the inadequacy of the traditional screening approach of diagnosis in lung cancer, which detects only wellestablished overt cancers and fails to identify precursor lesions in premalignant conditions of the bronchial tree. In recent years this situation has fundamentally changed with the identification of molecular abnormalities characteristic of premalignant changes; these concern tumour suppressor genes, loss of heterozygosity at crucial sites and activation of oncogenes. Basic knowledge at the molecular level has extremely important clinical implications with regard to early diagnosis, risk assessment and prevention, and therapeutic targets. In this study we used a 'cap-finder' subtractive hybridization method, 'long distance' polymerase chain reaction (PCR), streptavidin magnetic beads mediated subtraction, and spin column chromatography to detect differential expression genes of human small cell lung carcinoma. We have now isolated ninety two genes that expressed differentially in the human small cell lung carcinoma cells and analyzed of 12 clones with sequencing, nine cDNAs include tapasin (NGS-17) mRNA, BC200 alpha scRNA, chromosome 12q24 PAC RPCI3-462E2, protein phosphatase 1 (PPPICA), translocation protein 1 (TLOC1), ribosomal protein S24 (RPS24) mRNA, protein phosphatase (PPEF2), cathepsin Z, MDM2 gene and three novel genes. They may be oncogenesisrelated proteins.
The cAMP-dependent protein kinase(PKA) is an intracellular enzyme with serine-threonine kinase activity that plays a key role in cell growth, differentiation, and apoptosis in eukaryotes. In order to understand the PKA signal transduction pathway regulating cell life cycle and identify its role, we focused on the characterization of up-/down-regulated genes by PKA using the differential display polymerase chain reaction. Seven differentially expressed sequence tags(DEST) have been obtained. Among these DESTs, 2 DESTs were homologous to the sequence of genes from BLAST search result. KC1-5 DEST that was up-regulated in A123.7 cells was highly corresponded to mouse apoptosis-related gene(MA-3) or mouse mRNA for topoisomerase inhibitor suppressed(TIS). MA-3 was induced in various types of apoptosis, specially in NGF-deprived apoptotic PC12 cells. TIS was down-regulated in the RVC lymphoma cells incubated with topoisomerase inhibitor that induces DNA strand breakages. PG1-1 DEST that was highly expressed in PC12 cells was corresponded to transposon Tn10 3'-end. Tnansposon Tn10 was up-regulated in differentiated myeloblastic ML-1 cells by 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate. This study illuminates that MA-3/TIS was down-regulated by PKA activity, and transposon Tn10 was up-regulated by it.
Two antifungal bacteria were selected from forest soils during the screening of microorganisms antagonistic to Cylindrocarpon destructans, a cause of ginseng root rot. The antifungal bacteria were identified as Bacillus subtilis (I4) and B. amyloliquefaciens (yD16) based on physiological and cultural characteristics, the Biolog program, and 16S rRNA gene sequencing analyses. Antagonistic activity of both bacterial isolates to C. destructans increased with increasing temperature. More rapid starch hydrolytic activity of the bacteria was seen on starch agar at higher temperatures than at lower temperatures, and in the higher density inoculum treatment than in the lower density inoculum treatment. The bacterial isolates failed to colonize ginseng root the root tissues inoculated with the bacteria alone at an inoculum density of $1{\times}10^6$ cfu/ml, but succeeded in colonizing the root tissues co-inoculated with the bacteria and C. destructans. Scanning electron microscopy showed that the pathogen was damaged by the low-density inoculum treatment with the bacterial isolates as much as by the high-density inoculum treatment. Both bacterial isolates were more effective in reducing root rot when they were treated at a concentration of $1{\times}10^6$ cfu/ml than at $1{\times}10^8$ cfu/ml. Also, only the former treatment induced prominent wound periderm formation, related to structural defense against pathogen infection. The results suggest that the bacterial antagonists may have high potential as biocontrol agents against ginseng root rot at relatively low-inoculum concentrations.
C. sinensis total RMh was containing large amount of 185 rRNA but little 285 rRNA. The size of the double-stranded cDNA synthesized from poly $(A)^{+}$ mRNA was 0.4-4.2 kb long with tapering unto 9.5 kb. Degenerated oligonucleotides (as 2 sense and 3 antisense Primers) were designed on the conserved regions of the known tropomyosin amino acid sequences. From one out of the PCR amplifications using total CDNA and matrix of primers, a specific gene product, 580 bp in size, was produced. Upon Southern hybridization of the PCR products with Schistosomn mnnsoni tropomyosin (SMTM) CDNA, only one signal appeared at the band of 580 bp product. This 580 bp product was considered to encode C. sinensis tropomyosin (CSTM) and cloned in pGEM-3Zf(-) for DNA sequencing. CSTM cDNA was 575 bp containing one open reading frame of 191 predicted amino acids, which revealed 86.3% homology with SMTM and 51.1% with rrichostronsylur coeubnlormis tropomyosin. CSTM cDNA obtained will serve as a probe in the studies of molecular cloning of CSTM.
Cystoisospora is responsible for morbidity in immunocompromised patients. PCR is sensitive for diagnosing Cystoisospora; however, it needs reevaluation for differential molecular diagnosis of cystoisosporiasis. We aimed at evaluating melting curve analysis (MCA) after real-time PCR (qPCR) in diagnosis and genotyping of Cystoisospora as an alternative to conventional PCR. We included 293 diarrheic stool samples of patients attending the Department of Clinical Oncology and Nuclear Medicine of Cairo University Hospitals, Egypt. Samples were subjected to microscopy, nested PCR (nPCR), and qPCR targeting the internal transcribed spacer 2 region (ITS2) of the ribosomal RNA (r RNA) gene followed by melting temperatures ($T_ms$) analysis and comparing the results to PCR-RFLP banding patterns. Using microscopy and ITS2-nPCR, 3.1% and 5.8% of cases were Cystoisospora positive, respectively, while 10.9% were positive using qPCR. Genotyping of Cystoisospora by qPCR-MCA revealed 2 genotypes. These genotypes matched with 2 distinct melting peaks with specified $T_ms$ at $85.8^{\circ}C$ and $88.6^{\circ}C$, which indicated genetic variation among Cystoisospora isolates in Egypt. Genotype II proved to be more prevalent (65.6%). HIV-related Kaposi sarcoma and leukemic patients harbored both genotypes with a tendency to genotype II. Genotype I was more prevalent in lymphomas and mammary gland tumors while colorectal and hepatocellular tumors harbored genotype II suggesting that this genotype might be responsible for the development of cystoisosporiasis in immunocompromised patients. Direct reliable identification and differentiation of Cystoisospora species could be established using $qPCR-T_ms$ analysis which is useful for rapid detection and screening of Cystoisospora genotypes principally in high risk groups.
We have isolated a cDNA encoding a calcium-dependent protein kinase (CDPK) in Nicotiana tabacum, which was designated NtCDPK1. Accumulation of the NtCDPK1 mRNA was stimulated by various stimuli, including phytohormones, CaCl$_2$ wounding, fungal elicitors, chitin and methyl jasmonate. The NtCDPK1 gene encodes a functional Ser/Thr protein kinase of which phosphorylation activity is strongly induced by calcium. By analyzing expression of the NtCDPK1-GFP fusion protein and by immunoblotting with antibody which reacts with NtCDPK1, we found that NtCDPK1 is localized in membrane and nucleus in plant cells. Silencing expression of the NtCDPK1 transgene resulted in marked decrease of lateral root development in the transgenic tobacco plants. Yeast two hybrid screening using NtCDPK1 as a bait identified a tobacco homologue of proteasome regulatory subunit 21D7, designated Nt21D7. The 21D7 mRNA has been shown to be predominantly expressed in proliferating tissues in the cell cycledependent manner in carrot. The recombinant NtCDPK1 protein associated with Nt21D7 in vitro, and could phosphorylate the Nt21D7 protein in vitro in the presence of calcium, suggesting that Nt21D7 protein is a natural substrate of NtCDPK1 in tobacco. These results suggest that NtCDPK1 may regulate tell proliferation processes, such as lateral root formation, by regulating specificity and/or activity of proteasome-mediated protein degradation pathway.
To enhance phytoremediation, which removes heavy metal from soil, transgenic plants were applied to contaminated soil. We constructed a transformation vector expressing both $TgMTP_1$ (T. goesingense metal tolerance protein):HA and TgMTP:GFP genes. Transgenic plants were generated using an Agrobacterium-mediated transformation system that expressed the two vectors. Screening and analysis confirmed the incorporation of foreign genes into the Arabidopsis thaliana genome. Callus was induced in the 116 T3 line. These transgenic plants and calli were used for further analyses on the accumulation of Ni. The 116 T3-line plants and calli from selected lines were resistant to heavy metals and accumulated Ni in their leaves. The expression level of TgMTP RNA was equal in all leaves, but protein stability increased in the leaves with Ni treatment. According to these results, we suggest that $TgMTP_1$-overexpressing plants may be useful for phytoremediation of soil.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.8
no.2
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pp.161-167
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2004
Silkworms sex determination drew high attention from researchers. Sex chromosomes on the silkworm are of ZW type for females and ZZ type for males. Chromosome W plays an important role in sex determination. Although several molecular linkage maps have been constructed for silkworm, very few markers are discovered on the W chromosome. In order to look for molecular markers and to further locate the Fern gene on chromosome W, we used genomic DNA from both female and male larvae of a silkworm strain named 937 as PCR templates for RAPD amplification with 200 arbitrary 10-mer primers. The amplification results showed three female-specific bands, namely ${OPG-07_496}, {OPC-15_1,660} and {OPE-18_1,279}$. Further verification, however, revealed no band from OPG-07 and OPC-15 in either sex in the strain 798, but OPE-18 provided female-specific band in the strains Suluan7 and C108, and absent in both males and strain 798. This indicates that the bands from ${OPG-07_496} and {OPC-15_1,660}$ are probably female-specific in strain 937, and the band from OPE-18 was probably amplified from a common segment shared by most strains. The genomic DNAs from OPG-07 and OPC-15 were cloned and sequenced. Sequence analysis showed that the DNAs from OPG-07 and OPC-15 have high identities with the retrotransposable elements, and DNA from OPC-15 contains a portion of sequence which probably encodes an eukaryotic translation initiation factor 4E binding protein (eIF4EBP).
Kim, Beom-Gi;Shin, Pyung-Gyun;Jeong, Mi-Jeong;Park, Soo-Chul;Yoo, Young-Bok;Ryu, Jin-Chang;Kwon, Suk-Tae
The Korean Journal of Mycology
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v.25
no.1
s.80
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pp.1-5
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1997
The cDNA encoding ${\beta}-tubulin$ of Pleurotus sajor-caju was isolated using an internal gene segment probe amplified by polymerase chain reaction (PCR) of genomic DNA and by cDNA library screening. The cDNA was consisted of 1560 nucleotides(nt), including a 5'-untranslation region (UTR) of 27nt, an open reading frame (ORF) of 1341nt, and a 3'-UTR of 191nt. The ORF encoded a protein of 446 amino acids(aa), which shows over 80% homology with ${\beta}-tubulins$ of other filamentous fungi. Southern hybridization analysis showed that there were two isotypes of ${\beta}-tubulin$ genes in P. sajor-caju. Through sequence analysis we found that ${\beta}-tubulin$ had a unusual $Cys^{165}$ residue, which might be a significant factor for the insensitivity of fungi to fungicide benomyl.
A common post-harvest disease of sweetpotato tuber is root rot caused by Fusarium solani in Korea as well as the other countries. Storage root rot disease was monitored earlier on sweetpotato (Ipomoea batatas) in storehouses of different locations in Korea. In the present study, an isolate SPL16124 was choosen and collected from Sweetpotato Research Lab., Bioenergy Crop Research Institute, NICS, Muan, Korea, and confirmed the identification as Fusarium solani by conidial and molecular phylogenetic analysis (internal transcribed spacer ITS and translation elongation factor EF 1-α gene sequences). The isolate was cultured on potato dextrose agar, and conidiation was induced. The fungus was screened for Fusarium root rot on tuber of 14 different varieties. Among the tested variety, Yenjami, Singeonmi, Daeyumi, and Sinjami showed resistant to root rot disease. Additionally, the pathogen was tested for pathogenicity on stalks of these varieties. No symptom was observed on the stalk, and it was confirmed that the disease is tissue specific.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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