Several clones obtained from Serratia marcescens stimulated E. coli TP2139 (${\Delta}lac, \;{\Delta} crp$) cells to use maltose as a carbon source. The crp gene clone, pCKB12, was confirmed to stimulate the $\beta$-galactosidase activity, by Southern hybridization [31]. The nucleotide sequence of the crp region consisting of 1,979 bp was determined. The sequencing of the fragment led to the identification of two open reading frames: One of these, the crp gene, encoded 210 amino acid and the other encoded a truncated protein. The S. marcescens and E. coli crp genes showed a higher degree of divergence in their nucleotide sequence with 120 changes, however, the corresponding amino acid sequences showed only two amino acid differences. Yet, an analysis of the amino acid divergence revealed that the catabolite gene activator protein, the crp gene product, was the most conserved protein observed so far. Using a crp-lac protein fusion, it was demonstrated that S. marcescens CRP could repress its own expression, probably via a mechanism similar to that previously described for the E. coli crp gene.
Hong, Yoonki;Kim, Woo Jin;Bang, Chi Young;Lee, Jae Cheol;Oh, Yeon-Mok
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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제79권2호
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pp.85-90
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2016
Background: Lung cancer is the most common cause of cancer related death. Alterations in gene sequence, structure, and expression have an important role in the pathogenesis of lung cancer. Fusion genes and alternative splicing of cancer-related genes have the potential to be oncogenic. In the current study, we performed RNA-sequencing (RNA-seq) to investigate potential fusion genes and alternative splicing in non-small cell lung cancer. Methods: RNA was isolated from lung tissues obtained from 86 subjects with lung cancer. The RNA samples from lung cancer and normal tissues were processed with RNA-seq using the HiSeq 2000 system. Fusion genes were evaluated using Defuse and ChimeraScan. Candidate fusion transcripts were validated by Sanger sequencing. Alternative splicing was analyzed using multivariate analysis of transcript sequencing and validated using quantitative real time polymerase chain reaction. Results: RNA-seq data identified oncogenic fusion genes EML4-ALK and SLC34A2-ROS1 in three of 86 normal-cancer paired samples. Nine distinct fusion transcripts were selected using DeFuse and ChimeraScan; of which, four fusion transcripts were validated by Sanger sequencing. In 33 squamous cell carcinoma, 29 tumor specific skipped exon events and six mutually exclusive exon events were identified. ITGB4 and PYCR1 were top genes that showed significant tumor specific splice variants. Conclusion: In conclusion, RNA-seq data identified novel potential fusion transcripts and splice variants. Further evaluation of their functional significance in the pathogenesis of lung cancer is required.
A gene coding for phosphoketolase, a key enzyme of carbohydrate catabolism in heterofermentative lactic acid bacteria(LAB), was cloned from a Lactobacillus paraplantarum C7 and expressed in Escherichia coli. The gene is 2,502 bp long and codes for a 788-amino-acids polypeptide with a molecular mass of 88.7 kDa. A Shine-Dalgarno sequence(aaggag) and an inverted-repeat terminator sequence are located upstream and downstream of the phosphoketolase gene, respectively. The gene exhibits an identity of >52% with phosphoketolases of other LAB. The phosphoketolase of Lb. paraplantarum C7(LBPK) contains several highly conserved phosphoketolase signature regions and typical thiamine pyrophosphate(TPP) binding sites, as reported for other TPP-dependent enzymes. The phosphoketolase gene was fused to a glutathione S-transferase(GST::LBPK) gene for purification. The GST::LBPK fusion protein was detected in the soluble fraction of a recombinant Escherichia coli BL21. The GST::LBPK fusion protein was purified with a yield of 4.32mg/400ml by GSTrap HP affinity column chromatography and analyzed by N-terminal sequencing. LBPK was obtained by factor Xa treatment of fusion protein and the final yield was 3.78mg/400ml. LBPK was examined for its N-terminal sequence and phosphoketolase activity. The $K_M\;and\;V_{max}$ values for fructose-6-phosphate were $5.08{\pm}0.057mM(mean{\pm}SD)$ and $499.21{\pm}4.33{\mu}mol/min/mg$, respectively, and the optimum temperature and pH for the production of acetyl phosphate were $45^{\circ}C$ and 7.0, respectively.
The secretion vector with promoter and signal sequence region of neutral protease gene (npr) from Bacillus amyloliquefaciens was constructed by the technique of polymerase chain reaction (PCR). A unique restriction iste was introduced into the 3' of the signal coding region by the synthesis of PCR primer. To demonstrate the function of cloned promoter and signal sequence, we used the E. coli .betha.-lactamase structural gene as a foreign gene. The signal sequence of .betha.-lactamase gene was deleted by Bal31 exonuclease and only mature region was introduced into the secretion vector. Bacillus subtilis cells transformed by the recombinant vector synthesized the fusion protein and were also capable of removing the signal peptide from the original fusion protein, as judged by the assay of .betha.-lactamase activity and secretion into the growth medium by western blotting.
Gene disruption by homologous recombination is widely used to investigate and analyze the function of genes in Fusarium fujikuroi, a fungus that causes bakanae disease and root rot symptoms in rice. To generate gene deletion constructs, the use of conventional cloning methods, which rely on restriction enzymes and ligases, has had limited success due to a lack of unique restriction enzyme sites. Although strategies that avoid the use of restriction enzymes have been employed to overcome this issue, these methods require complicated PCR steps or are frequently inefficient. Here, we introduce a cloning system that utilizes multi-fragment assembly by In-Fusion to generate a gene disruption construct. This method utilizes DNA fragment fusion and requires only one PCR step and one reaction for construction. Using this strategy, a gene disruption construct for Fusarium cyclin C1 (FCC1), which is associated with fumonisin B1 bio-synthesis, was successfully created and used for fungal transformation. In vivo and in vitro experiments using confirmed fcc1 mutants suggest that fumonisin production is closely related to disease symptoms exhibited by F. fujikuroi strain B14. Taken together, this multi-fragment assembly method represents a simpler and a more convenient process for targeted gene disruption in fungi.
Kim, Il-Man;Lee, Yong-Chan;Won, Jae-Seon;Choe, Mu-Hyeon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제13권6호
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pp.976-983
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2003
Seven Escherichia coli cells defective with aerobic growth were isolated by the insertion of ${\lambda}placMu53$, a hybrid bacteriophage of ${\lambda}$ and Mu, which created a transcriptional fusion to lacZY. These insertion mutant cells were tested on an XG ($5-bromo-4-chloro-3-indolyl-{\beta}-D-galactopyranoside$) medium for anaerobic expression of lacZ by fusion to a promoter. The chromosomal DNA from these strains were digested by EcoRI, and the EcoRI fragments that contained the fused gene and lacZ sequence were identified by Southern hybridization, using lacZ containing plasmid as a probe. The EcoRI fragment from each strain was cloned and sequenced. The sequence data were compared with the GenBank database. The mutated gene of three strains, CYT4, CYT5, and OS11, was found to be identical, and it was nrdAB that encoded ribonucleoside diphosphate reductase. The gene nrdAB was at min 50.5 on the Escherichia coli linkage map and 2,348,084 on the physical map, and is involved in hemAe-related reduction-oxidation reaction. OS6 and OS14 mutant strains had insertion at min 8.3 and the mutated gene was hemB. The hemB encodes 5-aminolevulinate dehydratase or porphobilinogen synthase. The OS3 mutant had insertion in cydB at min 16.6. The cydAB encodes cytochrome d oxidase. In the case of OS1, the fusion was made with sucA, the E1 component of ${\alpha}-ketoglutarate$ dehydrogenase.
상피세포 성장인자(Epidermal Growth Factor, EGF)는 세포 분열을 자극하고 의약적 용도가 다양하다. EGF는 3개의 이황화 결합을 갖고 불용성으로, 대장균에서 고효율 발현에 대한 연구가 잘 이루어지지 않았다. EGF 유전자를 작은 유비퀴틴 관련 유전자(small ubiquitin-related modifier gene, SUMO)와 결합하고 DE3 대장균에서 발현시켰다. IPTG (Isopropyl-${\beta}$-D-Thiogalactopyranoside)로 유도하여 대장균 세포 단백질의 38.9%로 융합단백질이 발현되었고, Ni-NTA 친화성 크로마토그래피로 분리하였다. 그 후 유비퀴틴 분해효소반응으로 융합단백질에서 EGF를 얻은 후 다시 Ni-NTA 크로마토그래피로 분리 하였다. 최종적으로 정제된 EGF의 순도는 HPLC로 분석하였으며, 98%이상의 순도를 얻을 수 있었다.
Two genes encoding maltooligosyltrehalose synthase (SaMTS) and maltooligosyltrehalose trehalohydrolase (SaMTH) were isolated from a hyperthermophilic microorganism, Sulfolobus acidocaldarius (ATCC 49462). ORFs of the SaMTS and SaMTH genes are 2,163 and 1,671 bp long and encode 720 and 556 amino acid residues, respectively. A bifunctional fusion enzyme (SaMTSH) was constructed through the gene fusion of SaMTS and SaMTH. Recombinant SaMTS, SaMTH, and SaMTSH fusion enzyme were overexpressed in E. coli BL21. SaMTS and SaMTH produced trehalose and maltotriose from maltopentaose in a sequential reaction. SaMTSH fusion enzyme catalyzed the sequential reaction in which the formation of maltotriosyltrehalose was followed by hydrolysis leading to the synthesis of trehalose and maltotriose. The SaMTSH fusion enzyme showed the highest activity at pH 5.0-5.5 and $70-75^{\circ}C$. SaMTS, SaMTH, and SaMTSH fusion enzyme were active in soluble starch, which resulted in the production of trehalose.
Park, Hyun Sook;Kim, Young Shin;Kwon, Eun Jeong;Yoo, Mi Ae
생명과학회지
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제9권1호
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pp.50-57
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1999
STAT들은 다양한 cytokine이나 성장호르몬 등에 의해 활성화되어 핵으로 빠르게 이동되어 유전자 발현을 조절한다. 우리는 D-raf 유전자의 5' 발현조절영역에서 STAT결합부위 염기서열을 발견하였다. 본 연구는 D-raf 유전자발현조절에 있어서 STAT결합부위의 역할을 형질전환 초파리를 사용하여 조사하였다. STAT결합부위에 염기치환돌연변이를 도입시킨 D-raf promoter부분을 P인자 벡터의 IacZ유전자에 융합시킴으로써 리포터 플라스미드 pDraf-STATmut-lacZ를 제작하였다. 이 리포터 플라스미드를 이용하여 얻은 Draf-STATmut-lacZ형질전환 초파리의 lacZ발현을 발생단계별, 조직별로 조사한 결과, 거의 모든 발생단계에서 정상형 Draf-lacZ 형질전환 초파리의 lacZ발현에 비해 크게 감소하였다. 본 연구결과들은 STAT결합배열 부위가 D-raf유전자발현조절에 있어서 중요한 역할을 함을 개체수준에서 증명하고 있다.
Kim Hong-Gyum;Kim Byung-Chul;Kim Kyunghoon;Park Eun-Hee;Lim Chang-Jin
Journal of Microbiology
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제42권4호
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pp.353-356
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2004
In a previous study, a gst gene was isolated from the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. This gene was dubbed gstI, and was characterized using the gstI -lacZ fusion plasmid pYSH2000. In this work, four additional fusion plasmids, pYSHSDl, pYSHSD2, pYSHSD3 and pYSHSD4, were constructed, in order to carry (respectively) 770, 551, 358 and 151 bp upstream regions from the translational initiation point. The sequence responsible for induction by aluminum, mercury and hydrogen peroxide was located in the range between -1,088 and -770 bp upstream of the S. pombe gstI gene. The same region was identified to contain the nucleotide sequence responsible for regulation by Papl, and has one putative Papl binding site, TTACGTAT, located in the range between $-954\~-947$ bp upstream of the gstI gene. Negatively acting sequences are located between -1,088 and -151 bp. These findings imply that the Papl protein is involved in basal and inducible transcription of the gstI gene in the fission yeast S. pombe.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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