Probiotics are live organisms that when administered in adequate amounts confer a health benefit on hosts. The administration of direct-fed microbials (DFM) such as lactobacilli and bacillus, may be a more direct approach to beneficially alter gastrointestinal microflora than altering dietary ingredients or supplementing with growth-promoting levels of antibiotics. It is apparent that microbes have an important influence on immune development and resistance to infection; that microbes are not static colonizers of our bodies, but are dynamic, symbiotic coresidents. And it can improve the surrounding environments; decrease the malodor caused by degrade the excrement. Recently, new paradigm such as environment protection and safe food have been settled. In domestic farm house, there is a great demand for probiotics as a substitute of antibiotics for the improvement of environmental quality and the production of a competitive goods. Probiotics circulated in a country have three categories: an animal medicine permitted by national veterinary research quarantine service (NVRQS), a support feed registered in city or country house, and not-registered goods. However, lots of unqualified goods were produced and circulated. And thus, it is in urgent need of evaluating the present situation and effect of probiotics. This study was conducted to evaluate the system of a probiotics as a livestock-environment improving agents for the alternation of antibiotics and quality control of it.
Cassava (Manihot esculenta, Crantz), an annual tropical tuber crop, was nutritionally evaluated as a foliage for ruminants, especially dairy cattle. Cultivation of cassava biomass to produce hay is based on a first harvest of the foliage at three months after planting, followed every two months thereafter until one year. Inter-cropping of leguminous fodder as food-feed between rows of cassava, such as Leucaena leucocephala or cowpea (Vigna unculata), enriches soil fertility and provides additional fodder. Cassava hay contained 20 to 25% crude protein in the dry matter with good profile of amino acids. Feeding trials with cattle revealed high levels of DM intake (3.2% of BW) and high DM digestibility (71%). The hay contains tannin-protein complexes which could act as rumen by - pass protein for digestion in the small intestine. As cassava hay contains condensed tannins, it could have subsequent impact on changing rumen ecology particularly changing rumen microbes population. Therefore, supplementation with cassava hay at 1-2 kg/hd/d to dairy cattle could markedly reduce concentrate requirements, and increase milk yield and composition. Moreover, cassava hay supplementation in dairy cattle could increase milk thiocyanate which could possibly enhance milk quality and milk storage, especially in small holder-dairy farming. Condensed tannins contained in cassava hay have also been shown to potentially reduce gastrointestinal nematodes in ruminants and therefore could act as an anthelmintic agent. Cassava hay is therefore an excellent multi-nutrient source for animals, especially for dairy cattle during the long dry season, and has the potential to increase the productivity and profitability of sustainable livestock production systems in the tropics.
Yu, Seonhye;Chun, Eunho;Ji, Yeounjung;Lee, Young Joo;Jin, Mirim
Journal of Ginseng Research
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v.45
no.6
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pp.706-716
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2021
Background: Irritable bowel syndrome (IBS), the most common functional gastrointestinal disorder, is characterized by chronic abdominal pain and bowel habit changes. Although diverse complicated etiologies are involved in its pathogenesis, a dysregulated gut-brain axis may be an important factor. Red ginseng (RG), a traditional herbal medicine, is proven to have anti-inflammatory effects and improve brain function; however, these effects have not been investigated in IBS. Methods: Three-day intracolonic zymosan injections were used to induce post-infectious human IBS-like symptoms in mice. The animals were randomized to receive either phosphate-buffered saline (CG) or RG (30/100/300 mg/kg) for 10 days. Amitriptyline and sulfasalazine were used as positive controls. Macroscopic scoring was performed on day 4. Visceral pain and anxiety-like behaviors were assessed by colorectal distension and elevated plus maze and open field tests, respectively, on day 10. Next-generation sequencing of gut microbiota was performed, and biomarkers involved in gut-brain axis responses were analyzed. Results: Compared to CG, RG significantly decreased the macroscopic score, frequency of visceral pain, and anxiety-like behavior in the IBS mice. These effects were comparable to those after sulfasalazine and amitriptyline treatments. Moreover, RG significantly increased the proliferation of beneficial microbes, including Lactobacillus johnsonii, Lactobacillus reuteri, and Parabacteroides goldsteinii. RG significantly suppressed expression of IL-1β and c-fos in the gut and prefrontal cortex, respectively. Further, it restored the plasma levels of corticosterone to within the normal range, accompanied by an increase in adrenocorticotropic hormone. Conclusion: RG may be a potential therapeutic option for the management of human IBS.
Four Korean native steers ($511{\pm}17.2kg$; $2{\times}2$ replicated crossover design) fitted with duodenal cannulas were used to investigate the influence of oral administration of soluble whey protein (WP; 82.29% crude protein) on ruminal fermentation, gastrointestinal (GI) hormone secretion in the blood, pancreatic ${\alpha}$-amylase activity in the duodenum, and disappearance rate in each segment of the GI tract. Steers were orally fed the basal diet (control; TMR [total mixed ration] 9 kg/d) or the basal diet with enriched WP (400 g/d) for 14 days. The apparent crude protein disappearance rate in the rumen of the WP was higher than in control (p < 0.05). However, no difference between groups was observed in the apparent crude protein disappearance rate in the intestine and the apparent starch disappearance rates in the rumen, GI tract. The level of cholecystokinin, secretin, and ghrelin in serum and pancreatic ${\alpha}$-amylase activity in the duodenum of the WP also did not change. The changes in the level of blood urea nitrogen related to protein metabolism were higher in the WP than in the control (p < 0.05). However, the levels of total protein, lipid, carbohydrate and mineral metabolites did not change. Consequently, we suggest that the oral administration of WP in steers assisted in ruminal fermentation due to the population increase of microbes in the rumen but did not improve the starch digestion rate in the small intestine because GI hormone secretion in the blood and pancreatic ${\alpha}$-amylase activity did not change.
Gwanghee Kim;Yoojin Lee;Jin Sun You;Wontae Hwang;Jeewon Hwang;Hwa Young Kim;Jieun Kim;Ara Jo;In ho Park;Mohammed Ali;Jongsun Kim;Jeon-Soo Shin;Ho-Keun Kwon;Hyun Jik Kim;Sang Sun Yoon
IMMUNE NETWORK
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v.23
no.4
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pp.31.1-31.18
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2023
Evidence suggests that the human respiratory tract, as with the gastrointestinal tract, has evolved to its current state in association with commensal microbes. However, little is known about how the airway microbiome affects the development of airway immune system. Here, we uncover a previously unidentified mode of interaction between host airway immunity and a unique strain (AIT01) of Staphylococcus epidermidis, a predominant species of the nasal microbiome. Intranasal administration of AIT01 increased the population of neutrophils and monocytes in mouse lungs. The recruitment of these immune cells resulted in the protection of the murine host against infection by Pseudomonas aeruginosa, a pathogenic bacterium. Interestingly, an AIT01-secreted protein identified as GAPDH, a well-known bacterial moonlighting protein, mediated this protective effect. Intranasal delivery of the purified GAPDH conferred significant resistance against other Gram-negative pathogens (Klebsiella pneumoniae and Acinetobacter baumannii) and influenza A virus. Our findings demonstrate the potential of a native nasal microbe and its secretory protein to enhance innate immune defense against airway infections. These results offer a promising preventive measure, particularly relevant in the context of global pandemics.
Rumen microbiology research has undergone several evolutionary steps: the isolation and nutritional characterization of readily cultivated microbes; followed by the cloning and sequence analysis of individual genes relevant to key digestive processes; through to the use of small subunit ribosomal RNA (SSU rRNA) sequences for a cultivation-independent examination of microbial diversity. Our knowledge of rumen microbiology has expanded as a result, but the translation of this information into productive alterations of ruminal function has been rather limited. For instance, the cloning and characterization of cellulase genes in Escherichia coli has yielded some valuable information about this complex enzyme system in ruminal bacteria. SSU rRNA analyses have also confirmed that a considerable amount of the microbial diversity in the rumen is not represented in existing culture collections. However, we still have little idea of whether the key, and potentially rate-limiting, gene products and (or) microbial interactions have been identified. Technologies allowing high throughput nucleotide and protein sequence analysis have led to the emergence of two new fields of investigation, genomics and proteomics. Both disciplines can be further subdivided into functional and comparative lines of investigation. The massive accumulation of microbial DNA and protein sequence data, including complete genome sequences, is revolutionizing the way we examine microbial physiology and diversity. We describe here some examples of our use of genomics- and proteomics-based methods, to analyze the cellulase system of Ruminococcus flavefaciens FD-1 and explore the genome of Ruminococcus albus 8. At Illinois, we are using bacterial artificial chromosome (BAC) vectors to create libraries containing large (>75 kbases), contiguous segments of DNA from R. flavefaciens FD-1. Considering that every bacterium is not a candidate for whole genome sequencing, BAC libraries offer an attractive, alternative method to perform physical and functional analyses of a bacterium's genome. Our first plan is to use these BAC clones to determine whether or not cellulases and accessory genes in R. flavefaciens exist in clusters of orthologous genes (COGs). Proteomics is also being used to complement the BAC library/DNA sequencing approach. Proteins differentially expressed in response to carbon source are being identified by 2-D SDS-PAGE, followed by in-gel-digests and peptide mass mapping by MALDI-TOF Mass Spectrometry, as well as peptide sequencing by Edman degradation. At Ohio State, we have used a combination of functional proteomics, mutational analysis and differential display RT-PCR to obtain evidence suggesting that in addition to a cellulosome-like mechanism, R. albus 8 possesses other mechanisms for adhesion to plant surfaces. Genome walking on either side of these differentially expressed transcripts has also resulted in two interesting observations: i) a relatively large number of genes with no matches in the current databases and; ii) the identification of genes with a high level of sequence identity to those identified, until now, in the archaebacteria. Genomics and proteomics will also accelerate our understanding of microbial interactions, and allow a greater degree of in situ analyses in the future. The challenge is to utilize genomics and proteomics to improve our fundamental understanding of microbial physiology, diversity and ecology, and overcome constraints to ruminal function.
Background: Kombucha, known domestically as black tea mushroom, is a traditional fermented beverage from Northeast Asia made by fermenting a mixture of black tea extract and fungus. It is known for its high detoxifying, antimicrobial, and antioxidant activities, as well as its effects on relieving arthritis pain, reducing blood pressure, and addressing gastrointestinal or metabolic diseases. Purpose: This study aims to identify the main microbial system of Kombucha fermentation. Methods: The 16sRNA sequencing method was applied to analyze the microbial composition of Kombucha fermentation. Results: Bacterial, yeast, and fungi groups were identified. Through the identification of commercial Kombucha strains, it was confirmed that the bacteria in the Kombucha fermentation liquid and the pellicle were predominantly microbes from the Gluconacetobacter and Gluconobactor, which are involved in the fermentation of Kombucha. Among the yeasts, Sacchromycetes class, Starmerella bacillaris were identified with the highest expression rate. It was confirmed that the main microbial system fermenting Kombucha is SCOBY(Symbiotic Culture of Bacteria and Yeast), and that different strains are prominently expressed compared to the foreign Kombucha, which is mainly composed of Acetobacter acetic bacteria and Zygosaccharomyces yeast commonly. Conclusions: This study highlights the complexity and diversity of the microbial ecosystem in Kombucha fermentation, and comparative analysis with commercial strains reveals the potential for diversification of SCOBY to improve the functional properties of Kombucha. Future studies will investigate microbial interactions within the SCOBY and their impact on the health-promoting properties of Kombucha.
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