Rebamipide is a mucosal-protective antiulcer drug, but its mechanism of action in gastric cancer remains elusive. CagA, a major virulence factor of Helicobacter pylori (H. pylori), is associated with the risk of gastric cancer. CagA protein is injected into gastric epithelial cells and deregulates a variety of cellular signaling molecules. CagA from H. pylori induces phospholipase D1 (PLD1) expression through NFκB activation in gastric epithelial cells, followed by invasion and proliferation of gastric epithelial cancer cells. Infection with cagA-positive H. pylori and expression of CagA enhances the binding of NFκB to the PLD1 promoter. Rebamipide abolishes H. pylori cagA-induced PLD1 expression via inhibition of binding of NFκB to the PLD1 promoter and also inhibits PLD activity. Moreover, rebamipide abolishes H. pylori CagA-induced β-catenin and the expression of a target cancer stem cell (CSC) marker gene via upregulation of miRNA-320a and -4496, followed by attenuation of self-renewal capacity of H. pylori CagA-infected gastric CSCs. In addition, rebamipide increases the chemosensitivity of CagA-expressed gastric CSCs and suppresses gastric carcinogenesis. Thus, it is speculated that rebamipide might show a potent efficacy as chemotherapeutic drug against gastric cancer cells. In this review, we summarizes recent results regarding the novel insights for the efficacy of rebamipide in gastric cancer cells.
Gastric cancer is one of the most frequently occurring malignancies in the world. Development of multiple drug resistance (MDR) to chemotherapy is known as the major cause of treatment failure for gastric cancer. Multiple drug resistance 1/P-glycoprotein (MDR1/p-gp) contributes to drug resistance via ATP-dependent drug efflux pumps and is overexpressed in many solid tumors including gastric cancer. To investigate the role of MDR1 knockdown on drug resistance reversal, we knocked down MDR1 expression using shRNA in drug resistant gastric cancer cells and examined the consequences with regard to adriamycin (ADR) accumulation and drug-sensitivity. Two shRNAs efficiently inhibited mRNA and protein expression of MDR1 in SGC7901-MDR1 cells. MDR1 knockdown obviously decreased the ADR accumulation in cells and increased the sensitivity to ADR treatment. Together, our results revealed a crucial role of MDR1 in drug resistance and confirmed that MDR1 knockdown could reverse this phenotype in gastric cancer cells.
Purpose: PRIL (proliferation-inducing ligand) is a newly identified member of the tumor necrosis factor (TNF) family and modulates death ligand-induced apoptosis. Here, we investigated the effect of PRIL on cellular characteristics relating to tumor progression in human gastric cancer. Method: Recombinant lentivirus containing PRIL siRNA was constructed and then infected MGC803 and SGC7901 gastric cancer cells. MTT [3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide] colony formation and cell cycle analysis were used to study the effect of PRIL knockdown on gastric cancer cell proliferation. Results: PRIL expression in lentivirus infected cells was significantly reduced as evidenced by quantitative real-time PCR. Cell viability and colony formation of MGC803 and SGC7901 cells were significantly hampered in PRIL knock-down cells. Moreover, the cell cycle was arrested at G2/M phase, elucidating the mechanism underlying the inhibitory effect of siRNA on cell proliferation. Conclusions: Our study indicated that PRIL functions in promoting cell growth, and lentivirus-mediated PRIL gene knockdown might be a promising strategy in the treatment of gastric cancer.
Backgrounds: Tanshinone IIA (TIIA), a phenanthrenequinone derivative extracted from Salvia miltiorrhiza BUNGE, has been reported to be a natural anti-cancer agent in a variety of tumor cells. However, the effect of TIIA on gastric cancer cells remains unknown. In the present study, we investigated the influence of TIIA on the malignant phenotype of SGC7901 gastric cancer cells. Methods: Cells cultured in vitro were treated with TIIA (0, 1, 5, $10{\mu}g/ml$) and after incubation for different periods, cell proliferation was measured by MTT method and cell apoptosis and cell cycling were assessed by flow cytometry (FCM). The sensitivity of SGC7901 gastric cancer cells to anticancer chemotherapy was investigated with the MTT method, while cell migration and invasion were examined by wound-healing and transwell assays, respectively. Results: TIIA (1, 5, $10{\mu}g/ml$) exerted powerful inhibitory effects on cell proliferation (P < 0.05, and P < 0.01), and this effect was time- and dose-dependent. FCM results showed that TIIA induced apoptosis of SGC7901 cells, reduced the number of cells in S phase and increased those in G0/G1 phase. TIIA also significantly increased the sensitivity of SGC7901 gastric cancer cells to ADR and Fu. Moreover, wound-healing and transwell assays showed that TIIA markedly decreased migratory and invasive abilities of SGC7901 cells. Conclusions: TIIA can reverse the malignant phenotype of SGC7901 gastric cancer cells, indicating that it may be a promising therapeutic agent.
Purpose: Gastric cancer is a highly metastatic malignant tumor, often characterized by chemoresistance and high mortality. In the present study, we aimed to investigate the role of B-cell lymphoma 3 (Bcl-3) protein on cell migration and chemosensitivity of gastric cancer. Materials and Methods: The gastric cancer cell lines, AGS and NCI-N87, were used for the in vitro studies and the in vivo studies were performed using BALB/c nude mice. Western blotting, wound healing assay, Cell Counting Kit-8 assay, immunohistochemistry, and terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling assay were used to evaluate the role of Bcl-3 in gastric cancer. Results: We found that the protein expression of hypoxia (HYP)-inducible factor-1α and Bcl-3 were markedly upregulated under hypoxic conditions in both AGS and NCI-N87 cells in a time-dependent manner. Interestingly, small interfering RNA-mediated knockdown of Bcl-3 expression affected the migration and chemosensitivity of the gastric cancer cells. AGS and NCI-N87 cells transfected with si-RNA-Bcl-3 (si-Bcl-3) showed significantly reduced migratory ability and increased chemosensitivity to oxaliplatin, 5-fluorouracil, and irinotecan. In addition, si-Bcl-3 restored the autophagy induced by HYP. Further, the protective role of si-Bcl-3 on the gastric cancer cells could be reversed by the autophagy inducer, rapamycin. Importantly, the in vivo xenograft tumor experiments showed similar results. Conclusions: Our present study reveals that Bcl-3 knockdown inhibits cell migration and chemoresistance of gastric cancer cells through restoring HYP-induced autophagy.
Kim, Jung-A;Han, Song-Ee;Song, Ho-Joon;Chae, Han;Kwon, Young-Kyu;Kim, Byung-Joo
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.25
no.3
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pp.466-470
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2011
The purpose of this study was to investigate the anti-cancer effects of Carthami Flos in some kinds of human gastric cancer cells. We used two kinds of human gastric cancer cell lines, such as AGS cells and MKN45 cells. We examined cell death by MTT assay and observed the morphological changes with Carthami Flos. Also, we showed that the combination of sub-optimal doses of Carthami Flos and cisplatin noticeably suppresses in AGS cells and doxorubicin in MKN45 cells. Furthermore, we studied the caspase 3 activity to identify the apoptosis. Therefore, our findings provide insight into unraveling the effects of Carthami Flos in human gastric cancer cells and developing therapeutic agents against gastric cancer.
Purpose: We previously found that the histone methyltransferase suppressor of variegation, enhancer of zeste, trithorax and myeloid-nervy-deformed epidermal autoregulatory factor-1 domain-containing protein 3 (SMYD3) is a potential independent predictive factor or prognostic factor for overall survival in gastric cancer patients, but its roles seem to differ from those in other cancers. Therefore, in this study, the detailed functions of SMYD3 in cell proliferation and migration in gastric cancer were examined. Materials and Methods: SMYD3 was overexpressed or suppressed by transfection with an expression plasmid or siRNA, and a wound healing migration assay and Transwell assay were performed to detect the migration and invasion ability of gastric cancer cells. Additionally, an MTT assay and clonogenic assay were performed to evaluate cell proliferation, and a cell cycle analysis was performed by propidium iodide staining. Furthermore, the expression of genes implicated in the ataxia telangiectasia mutated (ATM) pathway and proteins involved in cell cycle regulation were detected by polymerase chain reaction and western blot analyses. Results: Compared with control cells, gastric cancer cells transfected with si-SMYD3 showed lower migration and invasion abilities (P<0.05), and the absence of SMYD3 halted cells in G2/M phase and activated the ATM pathway. Furthermore, the opposite patterns were observed when SMYD3 was elevated in normal gastric cells. Conclusions: To the best of our knowledge, this study provides the first evidence that the absence of SMYD3 could inhibit the migration, invasion, and proliferation of gastric cancer cells and halt cells in G2/M phase via the ATM-CHK2/p53-Cdc25C pathway. These findings indicated that SMYD3 plays crucial roles in the proliferation, migration, and invasion of gastric cancer cells and may be a useful therapeutic target in human gastric carcinomas.
Purpose: Evidence exists that dysregulation of apoptosis is involved in the pathogenesis of cancer development. The Bcl-$x_{L}$/Bcl-2-associated death promoter (BAD), a member of the Bcl-2 family, is a critical regulatory component of the intrinsic cell-death pathway that exerts its pro-apoptotic effect upon heterodimerization with anti-apoptotic proteins Bcl-2 and Bcl-$X_{L}$. Expression of the BAD protein has been reported in several cancer types, but not in stomach cancer. The aim of this study was to explore the expression status of the BAD protein in gastric carcinomas. Materials and Methods: In the current study, we analyzed the expression of the BAD protein in 60 advanced gastric adenocarcinomas by using immunohistochemistry and a tissue microarray approach. Results: Immunopositivity (defined as $\geq\30\%$) was observed for the BAD protein in 57 ($95\%$) of the 60 cancers. Normal gastric mucosal cells showed weaker expressions of the BAD protein than gastric carcinomas. Conclusion: Taken together, these results suggest that stomach cancer cells in vivo may need BAD protein expression for apoptosis. Also, the higher expression of the BAD protein in stomach cancer cells than in normal gastric mucosal cells suggests that apoptosis might be easily triggered in susceptible stomach cancer cells, thereby producing selective pressure to make more apoptosis-resistant cells during tumor development.
To clarify the role of long intergenic nonprotein-coding RNA 1232 (LINC01232) in the progression of gastric cancer and the potential mechanism, we analyzed the expression of LINC01232 in TCGA database using the GEPIA online tool, and the LINC01232 level in gastric cancer cell lines was detected by quantitative real time-polymerase chain reaction (qRT-PCR) as well. Cell proliferation assay, colony formation assay, transwell assay and tumor formation experiment in nude mice were conducted to observe the biological behavior changes of gastric cancer cells through the influence of LINC01232 knockdown. LncATLAS database and subcellular isolation assay were used for subcellular distribution of LINC01232 in gastric cancer cells. The interaction among LINC01232, zeste homolog 2 (EZH2) and kruppel-like factor 2 (KLF2) was clarified by RNA-protein interaction prediction (RPISeq), RNA immunoprecipitation (RIP), qRT-PCR and chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay. Rescue experiments were further conducted to elucidate the biological function of LINC01232/KLF2 axis in the progression of gastric cancer. LINC01232 was upregulated in stomach adenocarcinoma (STAD) tissues and gastric cancer lines. LINC01232 knockdown inhibited the proliferative capacities of gastric cancer cells in vitro, and impaired in vivo tumorigenicity. LINC01232 was mainly distributed in the cell nucleus where it epigenetically repressed KLF2 expression via binding to the enhancer of EZH2, which was capable of binding to promoter regions of KLF2 to induce histone H3 lysine 27 trimethylation (H3K27me3). LINC01232 exerts oncogenic activities in gastric cancer via inhibition of KLF2, and therefore, the knockdown of KLF2 could reverse the regulatory effect of LINC01232 in the proliferative ability of gastric cancer cells.
Trastuzumab is the first molecular targeting drug to increase the overall survival rate in advanced gastric cancer. However, it has also been found that a high intrinsic or primary trastuzumab resistance exists in some proportion of gastric cancer patients. In order to explore the mechanism of resistance to trastuzumab, firstly we investigated the expression of MUC1 (membrane-type mucin 1) in gastric cancer cells and its relationship with drug-resistance. Then using gene-silencing, we transfected a siRNA of MUC1 into drug-resistant cells. The results showed the MKN45 gastric cell line to be resistant to trastuzumab, mRNA and protein expression of MUC1 being significantly upregulated. After transfection of MUC1 siRNA, protein expression of MUC1 in MKN45cells was significantly reduced. Compared with the junk transfection and blank control groups, the sensitivity to trastuzumab under MUC1 siRNA conditions was significantly increased. These results imply that HER2-positive gastric cancer cell MKN45 is resistant to trastuzumab and this resistance can be cancelled by silencing expression of the MUC1 gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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