We established a transient gene expression system in chili pepper leaves based on Agrobacterium-mediated transformation of GUS gene. For the best GUS transient expression, two step culture system was adopted. When the Agrobacterium tumefaciens cell density of pre-culture was $A_{600nm}$ 0.3, the cells were harvested and diluted to $A_{600nm}$ 0.8 with virulence induction medium after cell harvested. The addition of acetosyringone (200 $\mu$M) in virulence induction step was a key factor for successful transient expression. Additionally, Younger leaves showed more effective transient expression than older leaves. Temporally, the strongest intensity of GUS expression was detected at 2 days after infiltration. These results demonstrate that Agrobacterium-mediated transient expression can be used for a simple in vivo assays of plant promoters, transcription factors and furthermore provide efficient protocol for chili pepper transformation.
Kim, Yu-Jung;Cho, Eun-Kyung;Lee, Soo-In;Lim, Chae-Oh;Choi, Young-Ju
BMB Reports
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v.43
no.1
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pp.9-16
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2010
The promoters of OsCaM1 and OsCaM3 were characterized after sequencing and fused to the reporter gene, GUS. The constructs were then transformed into the tobacco plant. Histochemical analysis of GUS showed different expression patterns in pOsCaM1::GUS and pOsCaM3:: GUS transgenic plants. The expression of pOsCaM1::GUS in 4- to 15-day-old seedlings in particular was observed only in the root, while the expression of pOsCaM3::GUS was detected in both the cotyledons and root. Also, pRCaM1::GUS was detected in all the tissues surrounding the root system, while the presence of pOsCaM3::GUS was observed in the root, except in the root meristem. However, in mature transgenic plants, the expression of pOsCaM1::GUS and OsRCaM3::GUS was scarcely detected. Under wounding stress, the GUS activity of pOsCaM1 and pOsCaM3 was strongly induced, and the activity of pOsCaM3 especially, was retained for long periods. In the phloem, pOsCaM3 activity induced by hormone treatments and abiotic stresses was also identified.
The Korean radish cationic peroxidase (KRCP) promoter, comprising nucleotides -471 to +704 relative to the transcriptional initiation site, was fused to the GUS gene and transformed to tobacco BY-2 cells. We examined how auxin (2,4-dichlorophenoxyacetic acid, 2,4-D), cytokinin (6-benzylaminopurine, BAP), gibberellic acid ($GA_3$), abscisic acid (ABA), methyl jasmonate (MeJA), and phosphatidic acid (PA) affect the GUS expression in the presence or absence of 2,4-D in a modified LS medium. Exogenous 2,4-D or BAP greatly decreased the GUS expression regulated by the KRCP promoter in a modified LS medium containing 0.2 mg/l 2,4-D. $GA_3$ increased the GUS expression and ABA completely reduced the inductive effect of $GA_3$. The GUS expression was also increased dose-dependently by plant defense regulators, MeJA and PA. In contrast to the above results, auxin deprivation from the modified LS medium increased the GUS expression after treatment with exogenous 2,4-D whereas BAP still greatly decreased the GUS expression dose-dependently. $GA_3$ or MeJA slightly decreased the GUS expression. The data suggest that auxin deprivation changes the sensitivity of the suspension cells to exogenous chemicals and that the regulation of the KRCP promoter by 2,4-D, $GA_3$, and MeJA is dependent on auxin, whereas the regulation by BAP is not. This study will be valuable for understanding the function and expression mode of the Korean radish cationic peroxidase in Korean radish.
To study calmodulin (CaM) gene expression and its regulation, rice CaM promoter (RCaM-2) was isolated and fused to $\beta-glucuronidase$ (GUS), reporter gene. X-Glue staining patterns revealed that GUS localization is high in meristemic tissues such as the stem apex, stolen tip, and vascular regions. GUS staining in the transverse sections of stem and petiole was restricted to the inside of the vascular system, and cortex and epidermis located outside of the vascular system usually did not show GUS staining even a plant that expressed strong activity. GUS activity was found to be tissue specific expressed and exhibited a dramatic transient increase in response to wounding. These results suggest that the 5'-flanking region of RCaM gene regulates wound-inducible expression.
DNA uptake in dry embryos of rice by DNA imbibition was detected by monitoring the expression of chimeric vectors. The selective markers of expression vectors used were ${\beta}-glucuronidase$ ronidase (GUS) and hygromycin phosphotransferase (HPT) genes under the control of CaMV35 S promoter. Frequency of transient expression of the foreign gene was generally 30-50% varying according to the types of vectors and rice cultivars. Dot blot analysis and DNA sequence analysis of inverse polymerase chain reaction products showed that selected rice in hygromycin B (HmB) medium had HPT gene and CaMV35S promoter DNA sequence in genomic DNA of rice. To investigate what ratio of rice having two marker genes simultaneously as rice embryos imbibed the vector DNA having two HPT and GUS gene, transform ants selected in lImB medium were subjected to PCR for GUS gene. It was shown that about 90 percentage of surviving ones in HmB medium had GUS gene.S gene.
Hong, Joon Ki;Lim, Myung-Ho;Kim, Jin A;Kim, Jung Sun;Lee, Seung Bum;Suh, Eun Jung;Lee, Soo In;Lee, Yeon-Hee
Plant Breeding and Biotechnology
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v.2
no.3
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pp.289-300
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2014
A tissue-specific and developmentally expressed gene was isolated from Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis), designated BrREF (B. rapa Rubber elongation factor). BrREF transcripts were expressed at high levels in seedlings and at low levels in flower buds and roots. To study the activity of this promoter, the 2.2 kb upstream sequence of BrREF gene was fused to a β-glucuronidase (GUS) reporter gene and was introduced into Arabidopsis thaliana and B. napus by Agrobacterium-mediated transformation. Strong expression of GUS driven by the BrREF promoter was detected in the cotyledons and hypocotyls of transgenic plant seedlings, but GUS expression was weak in roots, excluding the root tips. GUS expression in the cotyledons and hypocotyls decreased dramatically as the seedlings matured and was not detected in the tissues of mature plants. During floral development, GUS expression was observed in immature anthers. These findings suggest that the BrREF promoter can modulate the tissue-specific and developmental expression of gene at the early stages of growth and development.
Two potato (Solanum tuberosum L.) cultivars were transformed by Agrobacterium tumefaciens harboring cauliflower mosaic virus (CaMV) 35S promoter and $\beta$-glucuronidase (GUS) gene. Expression patterns of the CaMV 35S promoter according to tissue types and developmental stages, and genetic stability of GUS gene were investigated in the clonal progenies of transgenic potatoes. Kanamycin-resistant shoot emerged from tuber disc after 4 weeks of culture, and root was induced 6 weeks after culture on the selection medium. Shooting frequency of cvs. Superior and Dejima were 43% and 27%, respectively. Mature transformants and their clonal progenies showed no phenotypical abnormality. GUS activity was expressed primarily at parenchymatous cells of phloem tissue around the vascular cambium in the stem and root, and higher activity was found at the apical meristem of shoot, root and adventious shoot bud. GUS activity was higher at tubers of young explants than at stored tubers. These facts indicate that expression level of the CaMV 35S promoter differed according to tissue types and developmental stages of the organs. The GUS gene was stably inherited to each clonal progeny and normally expressed.
Kang, Hoduck;Kang, Sang-Gu;Bae, Hanhong;Park, Kyo-Soo;Hall, Richard B.
Journal of Korean Society of Forest Science
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v.86
no.3
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pp.261-269
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1997
Excised immature ovules and calli derived from the stems of cottonwood were bombarded with microprojectiles carrying plasmid DNA containing CaMV-35S promoter and ${\beta}$-glucuronidase(GUS) gene. After bombarded, the expression of GUS gene was detected by the assay of 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-${\beta}$-gluconide(X-gluc). Transient gene expression was measured by counting the number of distinct regions of GUS activity per explant. As major parameters, the number of shots and the period of exposure to X-gluc after the bombardment were investigated for detecting GUS gene expression. In this experiment, the percents of GUS gene expression showing spots were 56.8 from immature ovules and 75.9 from micro-calli of cottonwood species. Among the treatments, two consecutive shots and 48 hour exposure produced about $25.75{\pm}2.77$(per ovule), $11.43{\pm}1.22$(per mini petridish) spots, respectively, Microprojectile particle bombardment provides a useful method to assay transient expression in both types of explants. Furthermore, our results represent that the excised ovule and/or the calli might be stably transformed by the biolistics.
This study was carried out to investigate the tissue-specific expression of ${\beta}$-glucuronidase (gus) gene driven by endosperm-specific promoter (Z4 promoter) in the transgenic tobacco and to find out inheritance pattern of transgene to the next generation. Tobacco (Nicotiana tabaccum cv. Havana SR1) was transformed with Agrobacterium tumerfaciens LBA4404 harboring BV3 construct containing gus gene driven by Z4 promoter and a kanamycin resistant gene. Seven hundred bp PCR products, indicating the presence of npt II gene, were found in the all eight transformants by PCR analysis using nptII primers. To study the expression pattern of the two different kind of promoters, leaf disks of the Z4pro-gus-transformed plants and 35Spro-gus-transformed plants were analyzed histochemically for gus activity. As a result, leaf disks of Z4pro-gus-transformed plants showed very weak and partial positive gus activity. In contrast, leaf disks of 35Spro-gus-transformed plants showed relatively strong positive gus activity. To investigate the expressed position of Z4 promoter, seeds from Z4pro-gus-transformed plants and 35Spro-gus-transformed plants were analyzed histochemically for gus activity. Z4pro-gus-transformed seeds showed positive gus activity restricted to the endosperm. However, the blue-colored product in 35Spro-gus-transformed seeds was observed in all the area including endosperm. Kanamycin resistance assay showed that transgenes were stably inherited to next generation in all lines.
A vector for plant transformation which had two reporter genes(Gus and Hpt genes) in a single plasmid was constructed. After rice embryos imbibed DNA solution, DNA uptake and gene expression in rice were monitored. Main expression sites of the Gus gene were meristem of root and coleoptiles. There was no difference in Hpt gene expression between a single Hpt vector and the constructed vector in viability of rice in the hygromycin medium after DNA imbibition, The genomic DNA and total RNA extracted from rice transformant survived in the hygromycin medium were subjected to PCR and RT PCR analysis, respectively. As a result, we found the existence of the Hpt gene and its expression in rice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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