Roh Jong Yul;Lee In Hee;Li Ming Shun;Chang Jin Hee;Choi Jae Young;Boo Kyung Saeng;Je Yeon Ho
Journal of Microbiology
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제42권4호
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pp.340-345
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2004
To investigate the co-expression and crystallization of a fusion gene between the Bacillus thuringiensis crystal protein and a foreign protein in B. thuringiensis, the expression of the Cry1Ac fused with green fluorescent protein (GFP) genes in a B. thuringiensis $Cry^-B$ strain was examined. The cry1Ac gene was cloned in the B. thuringiensis-E. coli shuttle vector, pHT3101, under the control of the native cry1Ac gene promoter, while the GFP gene was inserted into the XhoI site upstream of the proteolytic cleavage site, in the middle region of the crylAc gene (pProAc-GFP). The B. thuringiensis $Cry^-B$ strain carrying pProAc-GFP (ProAc-GFP/CB) did not produce any inclusion bodies. However, the transformed strain expressed fusion protein forms although the expression level was relatively low. Furthermore, an immunoblot analysis using GFP and Cry1Ac antibodies showed that the fusion protein was not a single species, but rather multiple forms. In addition, the N-terminal fragment of Cry1Ac and a non-fused GFP were also found in the B. thuringiensis $Cry^-B$ strain after autolysis. The sporulated cells before autolysis and the spore-crystal mixture after autolysis of ProAc-GFP/CB exhibited insecticidal activities against Plutella xylostella larvae. Accordingly, the current results suggest that a fusion crystal protein produced by the transfomant, ProAc-GFP/CB, can be functionally expressed but easily degraded in B. thuringiensis.
We have expressed GFP in Sf9 and Bm5 cells or Bombyx mori larvae by using Ac-Bm hybrid virus capable of replicating in both Bm5 and Sf9 cells. Genomic DNA of Ac-Bm hybrid virus expressing ${\beta}$-galactosidase was cotransfected with baculovirus transfer vector containing GFP gene, pBacPAK-GFP in Sf9 cells. The Ac-Bm hybrid virus harboring GFP was named as Ac-Bm hybrid virus-GFP. The Ac-Bm hybrid virus-GFP-infected insect cells were easily selected by detecting the emission of GFP from each well of cell culture dish on the UV illuminator. GFP produced by Ac-Bm hybrid virus-GFP in Sf9 and Bm5 cells or B. mori larvae was confirmed by SDS-PAGE and Western blot analysis using GFP antibody. In addition, B. mori larvae infected with Ac-Bm hybrid virus-GFP was apparently appeared fluorescence from the whole body at S days postinoculation. The fluorescence of GFP from the hemolymph and fat body of B. mori larvae infected with Ac-Bm hybrid virus-GFP was also observed by fluorescence microscope. In conclusion, our results demonstrated that in baculovirus expression vector system, use of Ac-Bm hybrid virus have an additional advantage of expanded host range for producing recombinant proteins.
The present study was conducted to evaluate the efficiency of transgenic rabbit production by DNA microinjection using EGFP (Enhanced Green Fluorescent Protein) gene. In this experiment EGFP coding sequences fused to CMV promoter were microinjected into rabbit one-cell embryos, and then GFP expression and gene integration were evaluated in preimplantation embryos and fetuses recovered on day 15 of pregnancy to determine efficiency of transgenic rabbit production. Effect of DNA concentration was also tested on development in vitro following microinjection and transgene integration in fetuses. Development of embryos in vitro was decreased by DNA microinjection, but the rates of pregnancy and implantation were not significantly affected by microinjection. As development progressed in vitro percentage of GFP expression in rabbit embryos was decreased, resulting GFP expression detected in 37.5% of blastocysts. The efficiencies for production of transgenic fetuses were 4.0% and 7.6%, respectively, when $10ng/{\mu}l$ and $20ng/{\mu}l$ of DNA concentration were microinjected. Transgenic fetuses were confirmed by GFP expression and PCR analysis of fetus genomic DNA. These results indicated that DNA microinjection itself damaged embryo development and DNA concentration affected the efficiency of transgenic rabbit production.
Background: Rheumatoid arthritis (RA) is an autoimmune disorder characterized by chronic synovial inflammation which leads to joint destruction. Gene therapy of RA targets the players of inflammation or articular destruction. However, viral vectors have safety problems and side effects, while non-viral vectors suffer from inefficient gene transfer and fast loss of gene expression. To overcome the limits of non-vial vectors, an EBV-based plasmid which is known to exert prolonged high level gene expression can be used. Methods: pEBVGFP, pEBVIL-10, and pEBVvIL-10 were constructed by cloning GFP, IL-10, and vIL-10 genes into an EBV-based plasmid, respectively. The pGFP was used as a control plasmid. Each constructs were lipofected into HIG-82 rabbit synoviocytes. The expression of GFP was monitored by FACS and confocal microscopy. IL-10 and vIL-10 expressions were measured by ELISA. Results: GFP expression 2 days after transfection was achieved in 33.2% of cells. GFP-expressing cells transfected with pGFP decreased rapidly from 4 days after transfection and disappeared completely by 11 days. Cells transfected with pEBVGFP began to decrease slowly from 4 days. But GFP expression was detected for over 35 days. In addition, HIG-82 cells transfected with pEBVIL-10 ($44.6{\pm}1.5ng/ml$) or pEBVvIL-10 ($51.0{\pm}5.7ng/ml$) secreted these cytokines at high levels. High level cytokine production by hygromycin selection was maintained at least for up to 26 days after transfection. Conclusion: These results suggest that the EBV-based plasmid has a potential to improve non-viral gene transfer system and may be applicable to treat RA without the drawbacks of viral vectors.
Caspase-11 has been known as a dual regulator of apoptosis and inflammatory response. An unusual feature of caspase-11 is that its expression is induced by apoptotic or proinflammatory stimuli. Utilizing these unusual features of caspase-11, we have developed a simple and sensitive assay method to screen pro- or anti-apoptotic/inflammatory molecules. To develop this assay method, we generated a reporter construct where GFP expression is regulated by caspase-11 promoter. When several types of cultured cells were transfected with this reporter construct and subsequently treated with various apoptotic or proinflammatory molecules, expression of GFP by the activation of caspase-11 promoter was easily detected by fluorescence microscopy or spectrofluorometry. In addition, a reduction of the GFP fluorescence was detected when an agent reported to suppress caspase-11 induction was applied. These results suggest that our reporter system can be used to screen pro- or anti-apoptotic/inflammatory molecules.
본 연구에서는 retrovirus를 이용한 유전자 전이에 있어서 대두되는 큰 문제점의 하나인 외래 유전자의 지속적인 발현으로 인한 개체의 생리적인 손상을 최소화하기 위하여 tetracycline계 물질의 공급 여부에 따라서 발현을 유도적으로 조절할 수 있는 one vector 형태의 Tet-On system을 구축하고자 하였다. 또한 WPRE 서열을 이 vector 상에 도입하여 유도적 조건에서 외래 유전자의 발현이 보다 강하게 일어날 수 있는 효율적인 retrovirus vector system을 확립하고자 하였다. 구축한 각각의 vector system에서 fluorometry와 western blotting을 이용하여 GFP 유전자의 발현 정도를 비교 측정한 결과, RevTRE-EGFP-WPRE-RSVp-rtTA2SM2 virus를 이용하여 유전자를 전이시킨 표적세포에서 GFP의 절대적인 발현량이 가장 큰 것으로 나타났고, 유전자 발현의 turn on/off에 의한 유도율은 RevTRE-EGFP-RSVp-rtTA2SM2-WPRE virus의 경우에서 8∼21배로 가장 높은 것으로 나타났다. 이상의 결과에서 외래 유전자의 발현을 효율적으로 조절할 수 있는 vector system은 WPRE가 rtTA2SM2 서열의 3에 위치한 형태로, 이 system을 이용하여 생산한 고감염가의 virus는 유전자 치료나 형질전환 동물의 생산에 있어서 요구되는 외래 유전자의 발현을 효율적으로 조절할 수 있는 수단이 될 것이다.
쪽(Polygonum tinctortium) 세포에서 외래 단백질 발현을 검토하기 위하여 green fluorescent protein(GFP)가 내재하는 pCAMBIA1302를 형질 전환시켰으며 Western blot 분석에 의해 GFP의 발현을 확인하였다. Sodium butyrate가 GFP생성에 미치는 효과를 검토한 결과, 10 mM에서 세포성장이 지연되었으며, 15 mM 이상에서는 정지되었다. 세포 내 GFP 생성량은 세포 접종 후 3일째 5 mM sodium butyrate를 첨가하였을 때가 0일째 처리에 비해 120% 증가하였다. 또한 접종후 3일 후 5 mM의 sodium butyrate를 처리한 경우가 10 mM의 경우보다 GFP의 수율이 50% 증가하였다. 본 실험을 통하여 세포 접종 후 3일째, 5 mM의 농도로 처리한 sodium butyrate가 외래 단백질의 발현을 효과적으로 증가시키는 결과를 확인하였다.
식물의 미토콘드리아에서 eukaryotic 유전자 발현하는 양상을 관찰한다는 것은 매우 중요하게 알여져 왔다. 본 실험에서는 식물의 미토콘드리아에서 발현하는 유전자와 GFP가 미토콘드리아에 발현하는지를 구명하였다. 미토콘드리아(mt)에서 발현 하는 AtBI-1 유전자와 GFP 유전자를 35S promoter를 가진 pBin vector에 재조합한 후, 유전자총을 이용한 형질전환법으로 담배의 잎과 cotyledon에 형질전환하여 재분화 된 shoot를 얻었다. mt에서 그 유전자가 발현 되는 것을 현미경하에서 GFP가 발광하는 것으로 확인하였다. 또한 PCR분석과 Southern분석에서도 미토콘드리아에서 AtBI-1 유전자가 발현함을 확인하였다. 따라서 본 연구의 결과로 mt에 관련된 유전자를 식물의 조직에 형질전환 하여 1개 이상의 유전자가 식물의 mt에 삽입되어 그 유전자의 특성이 발현되는데 이용되어 질수 있을것이라 생각된다.
C. elegans DLK-1 has been reported to play an important role in synaptogenesis by shaping the structure of presynaptic terminal. In this study, we investigated the expression pattern and regulation of the dlk-1 gene in C. elegans. To determine the expression pattern, we made a dlk-1::gfp fusion construct, named pPDdg1, which consisted of -2.2 kb 5' upstream region, the first exon, the first intron, and a part of the second exon of the dlk-1 gene. By microinjecting this construct into the worm, we observed that the DLK-1::GFP was expressed mainly in neurons. We next examined the regulatory elements of gene expression by deletion analysis of pPDdg1. Removal of a large portion of the 5' upstream region (${\Delta}-361$ to -2246) of the gene had little effect on the expression pattern, whereas deletion of the first intron led to elimination of the DLK-1::GFP expression in most of the neurons. Our results suggest that the first intron of the C. elegans dlk-1 gene contains the regulatory element critical for gene expression.
본 실험에서는 외래 유전자의 효율적인 발현을 위하여 GFP 표지유전자를 이용하여 여러 종류의 promoter를 검정하였다. 또한, retrovirus vector에 WPRE 서열을 도입함으로써 GFP 유전자의 발현 증가 여부를 확인하였다. 모든 표적 세포에 있어서 UbC와 β-actin promoter에 비해 RSV와 CMV promoter 통제하의 GFP의 발현이 더 강하게 나타났으며, 특히 CEF 세포에서는 RSV promoter가 가장 우수한 것으로 확인되었다. WPRE의 도입으로 인한 발현율의 증가는 CEF를 제외한 세포주에서 promoter의 종류에 관계없이 확인되었다. 이상의 결과로 각 세포주는 promoter에 따라 발현 양상이 약간의 차이를 보이고 있으나 RSV와 CMV promoter에서 유전자의 발현이 보다 효율적이며, WPRE 서열이 도입된 경우에 HeLa와 PFF 세포에서 발현이 현저히 증가하는 것을 확인할 수 있었다. 이러한 연구 결과는 효율적인 유전자의 발현 체계를 확립하는데 기여함으로써 더 나아가 유전자 치료나 형질전환 동물생산에 적극적으로 활용되어질 수 있을 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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