The objective of this study was to investigate the in vitro / in vivo embryonic development after vitrification of mouse zygotes and the chrom osomal normality of delivered live young after embryo transfer. Mouse IVF zygotes were cryopreserved by vitrification using vitrification solution, EFS40 (40% ethylene glyc이, 30% Ficoll a and 0.3 M sucrose in phosphate buffer saline c containing 10% FBS ) . After mouse zygotes were exposed to EFS40 at 25"C for 30 sec., they were immediately plunged into LN$_2$. Vitrified thawed mouse zygotes were cultured upto bIastocysts in M16 for 4 days. The rates of in vitro development were 71.5% under this condition. Cultured blastocysts were transferred to recipients (3 day of pseudopregnant) on one or both uterus horns (6-8 embryos per a uterus horn). And all recipients were allowed to produce litters. The results obtained in these experiments were summarized as follows: The pregnancy rates and in vivo survival rates, live fetus rates, for vitrified zygotes (80.0, 39.6%) were not significantly difference in those of control zygotes (77.8%, 50.0%). Also, all of live-born young mice were chromosomally normal (n=40). This results suggested that proposed rapid vitrification procedures can be effectively use in 1-cell mouse zygotes cryopreservation.
Kim, E.Y.;Kim, N.H.;Yi, B.K.;Yoon, S.H.;Park, S.P.;Chung, K.S.;Lim, J.H.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.25
no.1
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pp.71-76
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1998
This study was carried out to examine whether the developmental capacity of bovine immature oocytes frozen ultra-rapidly using electron microscope (EM) grids and EFS30 can be obtained. As freezing solution, we used EFS30 which consisted of 30% ethylene glycol, 0.5 M sucrose, 18% ficoll and 10% FBS added in D-PBS. As criterior of oocyte viability, the rates of maturation, fertilization and embryonic development were determined. The results obtained in this experiment were summarized as follows: When ultra-rapidly frozen immature oocytes were thawed, 43.2% of them were survived. The rates of maturation (84.1%) and normal 2 pronuclei formation (57.5%) of frozen immature oocytes were not significantly different when compared to those of control (92.5, 65.0%). In addition, the rates of $\geq2$-cell (65.0%) and blastocyst formation (30.8%) of freezing group were not significantly different when compared to those of control (73.7, 35.7%). These results demonstrate that developmental capacity of frozen-thawed bovine immature oocytes can be successfully obtained when survived from the ultra-rapid freezing method using EM grid and EFS30.
Objective: The aim of this study was to compare the efficacy of slow freezing with vitrification method for cryopreservation of mouse pronuclear stage embryos. Methods: Mouse pronuclear embryos obtained from superovulated mice and classified into 2 groups of slow freezing and vitrification. Slow freezing solution consisted of 1.5 M PROH, 0.1 M sucrose, while vitrification solution consisted of 40% ethylene glycol, 18% Ficoll and 0.5 M sucrose diluted in Dulbecco's phosphate-buffered saline supplemented with 10% SSS. Recovery and survival rates after thawing and development rates to hatching balstocyst stage were compared between two groups. Results: After freezing and thawing, recovery rate of slow freezing group was 93.8%, whereas vitrification group was 66.5% (p<0.01). Survival rate of recovered embryos were similar between two groups as 83.2% in slow freezing and 87.6% in vitrification. Embryo development rates to 2-cell stage after 24 hrs (77.0% vs 59.1%), 4-cell after 48 hrs (72.6% vs 53.3%), blastocyst after 96 hrs (53.1% vs 40.1%) of thawing were significantly higher in vitrification group than those of slow freezing group, respectively. Conclusion: The vitrification method may provide better developmental competence of frozen-thawed embryos than that of slow freezing method for cryopreservation of mouse pronuclear stage embryos.
This study was carried out to investigate in vitro/in vivo development of vitrified-thawed immature mouse oocytes. Immature mouse oocytes were vitrified with EFS40 (40% ethylene glycol, 18% ficoll and 0.5 M sucrose). Thawed oocytes were matured for 16 hr in vitro. Matured oocytes with the first polar body were fertilized with the concentration of 1~2$\times$10$^{6}$$m\ell$ of epididymal sperm. After fertilization, cleavage ($\geq$ 2-cell) and in vitro/in vivo development rates were examined. $\pi$ Ie results were summarized as follows: in vitro maturation rate of immature mouse oocytes in vitrified-thawed group was similar to that in exposed group (67.5%) and control (66.3%), but cleavage rate of vitrified-thawed oocytes (64.9 %) and blastocyst formation rate (59.0%) were significantly different compared to those of exposed group (83.7 and 74.7%) and control (90.7 and 83.7%) (p<0.05). However, when the blastocysts derived from immature mouse oocytes vitrified-thawed were transferred to pseudopregnant mouse, total implantation (31.3%) was slightly lower than that in control (40.8%), but live fetus formation rate (66.7%)was slightly higher than that in control (58.1%), there was not significantly different. Therefore, when the blastocyts produced in vitro were transferred into recipients, although the development in vitro of oocytes vitrified-thawed was decreased, live fetus formation rate was similar to that of control group. The present results indicate that immature mouse oocytes can be frozen successfully by vitrification with EFS40.
Kim, Yoon Suk;Kim, Jeonghan;Yi, Chi A;Ko, Jesang;Park, Yong Serk;Lee, Seung-Jae
Biomedical Science Letters
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v.18
no.4
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pp.329-337
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2012
${\alpha}$-synuclein (${\alpha}$-syn) is known to be implicated in the pathogenesis of Parkinson's disease and transiently bind to biological vesicles. In this study, we examined the effect of molecular crowding on the interaction of ${\alpha}$-syn with biological vesicles by using inert polymers since the environment of proteins in cells are crowded with other macromolecules. The addition of different polymers including polyethylene glycol, dextran, and ficoll enhanced the binding of ${\alpha}$-syn to vesicles in a concentration-dependent manner and the association of ${\alpha}$-syn with vesicle was proportionally augmented by increased expression of ${\alpha}$-syn. However, molecular crowding had a neglectable effect on the vesicle binding of ${\alpha}$-syn mutants (A30P, TG6), which has been reported to show impaired vesicle binding capacity. These results suggest that transient interaction of ${\alpha}$-syn with vesicles occurs more commonly in cells than expected implying interaction with vesicles may be one of the physiological processes in which ${\alpha}$-syn is involved.
Polymorphonuclear (PMN) leucocytes are fundamental importance to the body's defense mechanism and play a major role in the local and systemic reactions to infectious disease. Investigation of the physiological and pathological role of the various leucocyte subtypes in host defence mechanisms is dependent upon the isolation of adequate numbers of viable, pure leucocyte fractions. This report describes the separate frequency of PMN leucocytes both from buffy coat layer and from packed RBC layer when bovine peripheral blood was treated with various anti-coagulants such as acid-citrate-dextrose(ACD), ethyldiaminetetraacetic acid(EDTA), sodium citrate and heparin. The separate frequencies of PMN leucocytes from buffy coat layer was 60.4$\pm$9.6%(heparin), 56.8$\pm$11.8%(sodium citrate), 30.6$\pm$14.1%(ACD) and 6.2$\pm$3.7%(EDTA), in order. Those from packed RBC layer monitored with EDTA, ACD, sodium citrate and heparin was 85.0$\pm$4.7%, 84.3$\pm$5.5%, 83.8$\pm$6.5% and 76.3$\pm$7.7%, respectively. The Ficoll-hypaque(FH) density gradient method was used to remove a small part of lymphocytes and/or monocytes from leucocytes in packed RBC layer. With the result that it increased separate frequency of PMN leucocytes from EDTA(89.9$\pm$2.4%), ACD(89.5$\pm$3.6%), and sodium citrate(83.6$\pm$10.3%) than heparin(68.4$\pm$13.9%). These results indicate that the use of EDTA and ACD as anticoagulant Is suitable for the separation of PMN leucocytes from bovine peripheral blood, and that the FH density gradient method is able to increase the separate frequency of PMN leucocytes from packed RBC layer.
Background: Minor histocompatibility HY antigen, as a transplantation antigen, has been known to cause graft rejection in MHC (major histocompatibility complex) matched donor-recipient. The aim of our study is to investigate the role of male antigen (HY) disparity on MHC matched pancreatic islet transplantation and to examine the mechanism of the immune reaction. Methods: Pancreatic islets were isolated and purified by collagen digestion followed by Ficoll gradient. The isolated islets of male C57BL6/J were transplanted underneath the kidney capsule of syngeneic female mice rendered diabetic with streptozotocine. Blood glucose was monitored for the rejection of engrafted islets. After certain period of time, tail to flank skin transplantation was performed either on mouse transplanted with HY mismatched islets or on sham treated mouse. The rejection was monitored by scoring gross pathology of the engrafted skin. Results: HY mismatched islets survived more than 300 days in 14 out of 15 mice. The acceptance of second party graft (male B6 islets) and the rejection of third party graft (male BALB/c islets) in these mice suggested the tolerance to islets with HY disparity. B6 Skin with HY disparity was rejected on day $25{\pm}7$. However, HY mismatched skin transplanted on the mice tolerated to HY mismatched islets survived more than 240 days. Tetramer staining in these mice indicated the CTL recognizing MHC Db/Uty was not deleted or anergized. Conclusion: The islet transplantation across HY disparity induced tolerance to HY antigen in C57BL6 mouse, which in turn induced tolerance to HY mismatched skin, which otherwise would be rejected within 25 days. The MHC tetramer staining suggested the underlying mechanisms would not be clonal deletion or anergy.
Kim, Seun-Eui;Uhm, Sang-Jun;Kim, Eun-Young;Yoon, San-Hyun;Park, Se-Pill;Lim, Jin-Ho
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.23
no.1
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pp.41-49
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1996
본 연구는 체외수정에 의해 생산된 생쥐 배반포기배를 vitrification 방법으로 동결보존하였을때 높은 생존율을 얻기 위한 적정조건을 검토하고자 실시하였다. 배반포기배를 생산하기 위하여, B6CBA F1 (C57BL/6, (표현불가)${\times}CBA/N$, (표현불가)) 계통의 생쥐 미수정란에 $1{\times}10^6$ spermatozoa/ml 농도의 정자로서 수정을 유도하였으며, 이후 $37^{\circ}C$, 5% $CO_2$배양기내에서 96시간동안 체외배양하였다. 배양 4일째의 배반포기배는 발달상태에 따라 early, middle 그리고 hatching blastocysts로 구분하였다. 본 실험에 사용된 동결보존액은 30% Ficoll과 0.5mol의 sucrose가 첨가된 mDPBS 용액에 40%의 ethylene glycol를 첨가한 EFS 40 (Zhu et al., 1993) 이었고, 수정란은 $25^{\circ}C$의 상온에서 먼저 20% ethylene glycol에 노출된 후 EFS 40 용액으로 옮겨 액체질소에 침지하는 2단계 동결법에 의해 동결보존되었으며, 급속융해하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 1. 체외수정율과 배양 4일째 배반포기까지의 배발달율은 각각 89.4%와 86.1%였다. 2. 20% ethylene glycol에서 5분간 평형된 후 EFS 40 용액에 냉동보존된 후 융해된 난자의 생존율은 20% ethylene glycol에 0, 1, 3분간 평형된 난자의 생존율에 비해 유의하게 높았다. 3. 배반포기배를 20% ethylene glycol에서 5분간, EFS 40 용액에 1분간 차례로 노출한 다음 체와배양하였던 바, 배양 24시간째 생존율은 $82.9%{\sim}88.4%$ 였다. 본 연구 결과, 체외수정, 배양된 생쥐 배반포기배는 20% ethylene glycol과 EFS40에 대한 노출만으로는 난자의 생존성에 나쁜 영향을 미치지 않는 것으로 미루어 보아 배반포기배의 초자화 동결이 가능함을 시사하였다. 따라서 동결 융해 후 높은 생존율은 상온에서 난자를 2단계 즉, 20% ethylene glycol에 5분간 평형시킨 후 EFS 40 용액에 노출하여 1분내에 LN2에 직접 침지하는 간편한 동결방법으로 얻을 수 있었다.
In the present study, the effect of $HgCl_2$on the function of human peripheral polymorphonuclear leukocytes(PMNs) was examined. PMNs were isolated from human peripheral blood with density centrifugation in Ficoll-Paque. The cells were then incubated with $0.5{\sim}5{\mu}M\;HgCl_2$and glass adherence, chemotactic activity and erythrocyte-antibody rosette forming activity were measured. $HgCl_2$ decreased the function of PMNs in all three aspects tested. $HgCl_2$significantly diminished glass adherence(40.5 {\mu}M: 92{\pm}12%$ (percentage of control, $mean{\pm}$ S.D.); 41 {\mu}M: 46{\pm}11%,$ P<0.01; $3{\mu}M: 35{\pm}7%,$P<0.01;$5{\mu}M:49{\pm}10%,$ P<0.01). Similarly, significant differences were observed in chemotactic activity after $HgCl_2$treatment compared with control (control: $0.95{\pm}0.14mm; 0.5 {\mu}M: 0.91{\pm}0.11 mm; 1 {\mu}M: 0.77{\pm}0.16mm, P<0.05; 3{\mu}M: 0.61{\pm} 0.06mm, P<0.01; 5{\mu}M: 0.15{\pm}0.03 mm, P<0.01).$ Also, 4HgCl_2$decreased the percentage of rosette-forming PMNs, indicating diminished phagocytic activity of PMNs upon $HgCl_2$ exposure compared with control (control: $58{\pm}4%; 1{\mu}M: 53{\pm}4%, p<0.05; 3{\mu}M: 49{\pm}3%, P<0.01; 5{\mu}M: 46{\pm}3%, P<0.01).$ Cell viability was not antered after $HgCl_2$treatment (483{\pm}5%$ viability in control PMNs versus $81{\pm}8%$ viability in $5{\mu}M$ Hg-treated PMNs), suggesting that the impaired PMN function after $HgCl_2$treatment was not due to nonspecific cytotoxicity induced by $HgCl_2$. $HgCl_2$-induced decrease in the function of PMNs may have some implications in depressed host susceptibilityupon bacterial challenge after mercury exposure.
Preparative isolation of lipid granules from Fhodotorula glutinis, which has been studied for long time to produce edible lipids, was carried out by flotation method in Ficoll-Linear density gradient. When the isolated lipid granules were suspended in a series of solutions containing varying concentration of osmotic stabilizer (sorbitoal and mannitol) ranging from 0.8M to 0M, the lipid granules appeared to be disrupted at a concentration between 0.8M and 0.7, and again at a concentration below 0.1M, suggesting that lipid granules have a membraneous structure and that at least two types of lipid granules are present. Compositional analysis of lipids from lipid granules revealed that lipids are composed mainly of neutral lipids (87.8% of total lipids), predominantly as triacylglycerols (71.89%). Marked differences were observed inphospholipids between lipids of lipid granules and those of whole cells . The major components of phospholipids in lipid granules and inwhole cells are phosphatidylcholine(38.6%) and phosphatidylserine(42.8%), respectively. In addition, significant differences were also observed in the fatty acid composition of phospholipids. As phospholipids are important structural components of membranes, these differences lead to the suggesting that the membrane of lipid granules may be distinct functionally and structurally from other membranes of yeast cells. The major fatty acid components of neutral lipidss of whole cells and lipid granules are palmitic , oleic and linoleic acid. However , degreeof fatty acid unsaturation of neutal lipids of lipid granules was much lower than that of neutral lipids of whole cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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