Yeon S. H.;Son D. S.;Jean H. J.;Choi S. H.;Kim I. C.;Park C. S.;Lee K. S.
Journal of Embryo Transfer
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v.19
no.3
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pp.265-273
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2004
This study was carried out to examine the effects of fertilization media and sperm concentration on in vitro fertilization (IVF) and development (IVD) of porcine oocytes matured in vitro. Cumulus-oocyte complexes (COCs) were collected from antral follicles of porcine ovaries collected from abattoir, and were matured in vitro in modified NCSU-23 (mNCSU-23) supplemented with 10% porcine follicular fluid (pFF). After the fertilization by experimental scheme, putative embryos were developed in vitro in NCSU-23. The results are as follows. When the oocytes were fertilized in vitro in modified TBM or modified TLP-PVA by 1 ${\times}$10$^{5}$ sperm/$m\ell$, all of the fertilization parameters were not significantly different between two media. Subsequently, as these putative embryos were developed in vitro in NCSU-23, the percentage of oocytes cleaved and of blastocysts were not different between two media, either. When the oocytes were fertilized in vitro in mTBM by 5${\times}$10$^4$, 1${\times}$10$^{5}$ or 5${\times}$10$^{5}$ sperm/$m\ell$, all of the fertilization parameters were significantly (P<0.05 or P<0.01) increased as sperm concentration was elevated. Subsequently, as these putative embryos were developed in vitro in NCSU-23, the percentage of oocytes cleaved and of blastocysts were significantly boosted (P<0.01) as sperm concentration at fertilization was elevated from 5${\times}$10$^4$ to 1${\times}$10$^{5}$ sperm/$m\ell$, but were not different between 1${\times}$10$^{5}$ and 5${\times}$10$^{5}$ sperm/$m\ell$.
본 연구는 이식 후 남은 잉여의 포배기 배아를 두 번의 냉동과 융해 과정을 반복적으로 실시한 후 이식한 결과에 관한 보고이다. 사람 포배기 배아의 동결보존에서 높은 생존율과 성공적인 임신율이 보고되고 있으나 미성숙 난자로부터 발달한 포배기 배아에 두 번의 초급속 냉동 방법을 실시한 후 이식한 보고는 되어 있지 않다. 이에 본 연구에서는 다낭성 난소 증후군 환자에게서 얻은 미성숙 난자로부터 발달한 포배기 배아를 artificial shrinkage 후 초급속 냉동함으로써 생존율을 높이는 방법을 이용하여 재냉동 이식하였을 때 임신에 성공한 증례를 보고하고자 한다. 29세의 환자로부터 채취한 55개의 미성숙 난자들(germinal vesicle stage oocytes)을 체외배양 하여 성숙한 37개의 난자들로부터 30개의 수정란을 얻을 수 있었다. 12개의 배아가 포배기 배아까지 발달하였으며 이 중 3개의 양질의 포배기 배아를 선별하여 이식하였고, 이식을 한 후에 남은 9개의 포배기 배아들은 artificial shrinkage의 과정을 마친 후에 초급속 냉동 방법을 이용하여 동결보존 하였다. 그 중, 4개의 포배기 배아들을 융해한 후 이식을 하지 않고 다시 재냉동을 하여 보관하였고 이 후 재냉동 되었던 4개의 포배기 배아들을 다시 융해 하여 이식을 한 결과 임신이 되어 건강한 남아를 분만하였다. 이로써 미성숙 난자로부터 얻은 포배기 배아가 두 번의 냉동과 융해의 과정을 통해 크게 손상을 입지 않고 생존할 수 있다는 것을 알 수 있었다. 그러므로 융해이식 후 남은 잉여의 포배기 배아를 다시 냉동 보관하여 다음 주기에 이용함으로써 축적된 임신율을 증가시킬 수 있을 것으로 사료된다.
Han, E Jung;Lee, Hye Nam;Kim, Min Kyoung;Lyu, Sang Woo;Lee, Woo Sik
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.48
no.3
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pp.203-210
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2021
We performed a systematic review and meta-analysis to evaluate whether intralipid administration improved the outcomes of in vitro fertilization. Online databases (PubMed, Cochrane Library, Medline, and Embase) were searched until March 2020. Only randomized controlled trials (RCTs) that assessed the role of intralipid administration during in vitro fertilization were considered. We analyzed the rates of clinical pregnancy and live birth as primary outcomes. Secondary outcomes included the rates of chemical pregnancy, ongoing pregnancy, and missed abortion. We reviewed and assessed the eligibility of 180 studies. Five RCTs including 840 patients (3 RCTs: women with repeated implantation failure, 1 RCT: women with recurrent spontaneous abortion, 1 RCT: women who had experienced implantation failure more than once) met the selection criteria. When compared with the control group, intralipid administration significantly improved the clinical pregnancy rate (risk ratio [RR], 1.48; 95% confidence interval [CI], 1.23-1.79), ongoing pregnancy rate (RR, 1.82; 95% CI, 1.31-2.53), and live birth rate (RR, 1.85; 95% CI, 1.44-2.38). However, intralipid administration had no beneficial effect on the miscarriage rate (RR, 0.75; 95% CI, 0.48-1.17). A funnel plot analysis revealed no publication bias. Our findings suggest that intralipid administration may benefit women undergoing in vitro fertilization, especially those who have experienced repeated implantation failure or recurrent spontaneous abortion. However, larger, well-designed studies are needed to confirm these findings.
This study was carried out to determine the effect of bovine follicular fluid(bFF), hormones, and fetal bovine serum(FBS) supplemented in the medium on the in vitro fertilization and development of bovine embryos. The ovaries were obtained from a local abattoir and placed in physiological saline kept at 30~32˚C and brought to the laboratory within 3~4 hours. The oocytes and follicular fluid were collected by aspiration from visible follicles, and the oocytes of grades I on the basis of the morphology of cumulus cells attached and the homogeneity of cytoplasmic granules were selected and used for maturation. The basal media used for oocyte maturation, fertilization and embryo development in vitro were Ham' F-10, TALP and TCM-199, respectively. The hormones supplemented in maturation medium were consisted of 35 pg /ml FSH, 10 pg /ml LH and 1 pg/mi estradiol-l7$\beta$. The bFF collected from 5~9 mm follicles was centrifuged, filtered and inactivated by heat-treatment at 56˚C for 30 min. FBS also was inactivated with the same method and kept at -20˚C until use. The embryos were co-cultured with the monolayer of bovine oviductal epithelial cells at 39˚C under 5% $CO_2$ in air for 9 days. The results obtained were summarized as follows: The fertilization rate of oocytes was found 87.4% from 10% FBS and hormones treatment for IVM, and 37.1% of these TVF embryos were developed to blastocyst stage in 10% FBS groups. Compared with this control system, the fertilization rate was decreased significantly(P<0.05) in the maturation without either FBS or hormones. These IVF embryos were developed to morula stage at the similar rate, but to blastocyst at significantly(P<0.05) lower rate in the embryo culture with or without FBS supplementation. The fertilization rate(82.9%) in hormones and 10% inactivated bFF was similar with 10% FBS and hormone groups(87.4%), but decreased significantly(P<0.05) in 20 or 30% bFF (61.0 or 66.0%), respectively. In vitro developmental competence to blastocyst stage in 10% FBS and 20% inactivated bFF(37.1% and 31.4%) was higher than in 10 or 30% inactivated bFF(20.0 or 19.2%) or 10, 20 and 30% fresh bFF(19.1, 21.0 and 17.5%) The results indicated that the in vitro fertillzation and development rate of the embryos should be improved in 10% FBS or 20% inactivated culture system and 20% inactivated bFF might be available economically for bovine oocyte maturation and embryo culture instead of fetal bovine serum.
The oocyte quality is of great importance in infertility as it reflects the follicle developmental potential and further affects the embryo development, clinical pregnancy outcomes. The analysis of gene expression in somatic cells is an important study to better clinical in vitro fertilization (IVF) outcomes in embryo selection reflecting the appropriate communication between the oocyte and somatic cells. Specifically, somatic cell transcriptomic technology can help assess biomarkers of oocyte and embryo ability. The present article aims to overview the basic aspect of folliculogenesis and review studies involving changes in candidate gene expression of cumulus or granulosa cell related to clinical outcomes in human IVF.
Two experiments in this study were designed to compare the potential for in vitro capacitation and in vitro fertilization of ejaculated sperm among individual rabbit bucks. In experiment 1, for in vitro capacitation, the ejaculated sperm were preincubated in DM for 12 hr or 18 hr after HIS treatment, then 12 hr -or 18 hr- preincubated sperm were incubated with superovulated rabbit ova in a 5% CO2 incubator for 36 hr at 38$^{\circ}C$, and a part of cleaved ova was transferred to the recipient does for implantation of embryo. In experiment 2, effect of lysolecithin addition to preincubation medium on induction of accelerated in vitro capacitation and in vitro fertilization of individual rabbit sperm was studied. Experiment 1; 1. Percent acrosome reaction of sperm, noted after staining, after 12 hr or 18 hr preincubation ranged from 52.5 to 76.0% and from 67.5 to 90.0%, respectively and sperm motility index of these sperm ranged from 20.0 to 47.5 for 12 hr-preincubated sperm and from 15.0 to 37.5 for 18 hr- preincubated sperm. There was no a certain relation between percent acrosome reaction and sperm motility index. 2. In vitro fertilization rate (cleavage rate) of in vitro capacitated sperm varied widely among individual bucks, ranging from 0 to 47.8% for 12 hr - preincubated sperm and from 0 to 60.9% for 18 hr -prein- cubated sperm. Cleavage rate of 18 hr - preincubated sperm was higher and faster than that of 12 hr - preincubated sperm. 3. Eight of 44 in vitro fertilized embryos transferred into 6 recipients were implanted in 4 recipients (66.7%) up to day 15 and implnatation rate was 18.2%. Experiment 2; 1. The percent acrosome reaction of sperm before and after 4 hr preincubation in DM without lysolecithin varied significantly among individual bucks, ranging from 0.4 to 18.4% and from 1.7 to 37.4%, respectively and percent acrosome reaction of sperm at 30 min after addition of 60${\mu}$g/ml lysolecithin also was significantly different among bucks, ranging from 19.2 to 67.1%. 2. Effect of accelerated acrosome reaction following lysolecithin addition was more considerable in the individuals showed less percent acrosome reaction before and after 4 hr preincubation. Percentage of motile sperm and motility score showed a trendency towards a decrease with increase of preincubation time and time after lysolecithin addition. 3. In vitro fertilization rate (cleavage rate) at 24 hr postinesmination with pooled sperm were treated to 60 $\mu\textrm{g}$/ml lysolecithin for 30 min after 4 hr preincubation was 24.6%, a higher rate than 13.2% for control. While 80 $\mu\textrm{g}$/ml lysolecithin-added sperm showed a lower cleavage than control and 60$\mu\textrm{g}$/ml-added sperm at both 24 hr and 48 hr postinsemination. These results from 2 experiments suggest that more useful preincubation time for the in vitro capacitation of ejaculated rabbit sperm is 18 hr in DM after HIS treatment, although there is wide variation in vitro capacitation and in vitro fertilization rate among individual bucks, and lysolecithin addition to at least 4 hr - preincubated sperm in DM can result in almost same in vitro fertilization rate as that of 18 hr - preincubated sperm in the experiment 1.
Objective: The aims of this study were to investigate whether fertilization could induce the resumption of meiosis in mouse oocytes arrested at metaphase I (MI) after in vitro maturation (IVM), and to investigate the effect of $Ca^{2+}$ chelator treatment at the time of fertilization on the transition from MI to metaphase II (MII). Methods: MII-stage and arrested MI-stage mouse oocytes after IVM were fertilized, and then embryonic development was monitored. Blastocysts from each group were transferred into 2.5 days post-coitum pseudo-pregnant ICR mice. MI oocytes after IVM were treated with a $Ca^{2+}$ chelator to investigate the effect of $Ca^{2+}$ oscillations on their maturation. Results: As insemination time increased, the number of oocytes in the MI group that reached the MII stage also increased. The blastocyst rates and total cell numbers in the MII group were significantly higher than in the MI group. No pregnancy occurred in the MI group, but 10 pregnancies were achieved (10 of 12) in the MII group. The proportion of MI oocytes that matured to MII oocytes after fertilization was significantly higher in the non-treated group than in the $Ca^{2+}$ chelator-treated group. Conclusion: The findings that a higher proportion of MI-arrested oocytes progressed to MII after fertilization and that the MI-to-MII transition was blocked by $Ca^{2+}$ chelator treatments before fertilization indicate that the maturation of MI oocytes to MII oocytes is associated with intracellular $Ca^{2+}$ oscillations driven by fertilization.
This studies were carried out to investigate the effects of co-culture with cumulus cells, oviduct epithelial cells and uterine endometrium cells on the in-vitro fertilization and cleavage rate of bovine follicular oocytes. The ovaries were obtained from slaughtered Korean native cows. The follicular oocytes surrounded with cumulus cells were recovered by aspirating follicular fluids from the visible follicles of diameter 3~5 mm. The follicular oocytes were cultured in TCM-199 medium containing hormones and 10% FCS for 24~48 hrs in a incubator with 5% CO2 in air at 38.5$^{\circ}C$ and then matured oocytes were again cultured for 12~18 hrs with motile capacitated sperm by preincubation. The results obtained in these experiments were summarized as follows: 1. The in vitro maturatin and fertilization rate of bovine oocytes co-cultured with cumulus cells in TCM-199 medium were 64.0~74.1% and 40.0~58.6% respectively. And in-vitro fertilization rate of cumulus-enclosed oocytes(55.4%) were significantly(p<0.05) higher than cumulus-denuded oocytes(23.1%). 2. The in-vitro maturatin and fertilization rate of bovine oocytes co-cultured with 1$\times$104 cells/ml, 1$\times$106 cells/ml, 1$\times$108 cells/ml and 1$\times$1015 cells/ml oviduct epithelial cells in TCM-199 medium were 59.3% and 40.7%, 64.0% and 48.0%, 58.3% and 37.5%, 52.0% and 32.0%, respectively. 3. The in-vitro maturation and fertilization rate of bovine oocytes co-cultured with 1$\times$104 cells/ml, 1$\times$106 cells/ml, 1$\times$108 cells/ml and 1$\times$1015 cells/ml uterine endometrium cells in TCM-199 medium were 56.0% and 36.0%, 60.7% and 42.9%, 59.3% and 37.0%, 52.0% and 36.0%, respectively. 4. When the in-vitro fertilized oocytes were co-cultured with cumulus cells, oviduct epithelial cells and uterine endometrium cells, the development rate to be blastocyst was 12.2%, 15.6% and 11.7%, respectively and rates were higher than that of control, 2.1%(P<0.05).
Controlled ovarian hyperstimulation is one of the major steps of in vitro fertilization. The inaccessibility or non-visualization of developing follicles on transvaginal sonography (the preferred imaging method) may be misjudged as a poor response, resulting in cycle cancellation. It is necessary to scrupulously appraise proxy indicators for ovarian response, such as estradiol levels, endometrial thickness, and other individual clinical characteristics. This can prompt meticulous transabdominal ultrasound follicular monitoring and oocyte retrieval with the goal of averting cycle cancellation and improving treatment outcomes.
Ryu, C. S.;K. S. Kil;Kim, N-H;D. H. Ko;Lee, H. T.;K. S. Chung
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.23
no.3
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pp.221-227
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1999
Successful cryopreservation of bovine immature oocytes can increase availably of oocytes for the in vitro fertilization or nuclear transfer. However, it was not reported successful development to the blastocyst stage following in vitro fertilization of cryopreserved bovine immature oocytes. The objective of this study was to determine the incidence of survival, meiotic maturation, fertilization and in vitro development of cryopreserved bovine immature by ultra rapid cooling methods. The oocytes were adversely affected by brief exposure to EFS40 solution in electron microscope grids and plunged directly into liquid nitrogen. After such ultra-rapid cooled immature oocytes were warmed, 78% of oocytes were matured to the metaphase II stage, 50% of oocytes were fertilized after insemination, and 5% of oocytes were developed to the blastocyst stage. Different sodium concentration of sodium ion in the freezing medium did not affect survival, maturation, fertilization and in vitro development of cryopreserved oocytes. These results suggested that immature bovine oocytes can be cryopreserved by ultra-rapid cooling methods.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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