Facile synthetic methods of 2',5'-dideoxy-, 2',3'-dideoxy- and 3'-deoxy-1, N6-ethenoadenosine nucleosides by either an enzymatic dideoxyribosyl transfer reaction or a simple chemical reaction were proposed. The synthesis products were isolated and purified by preparative HPLC and their structures were confirmed by 1H NMR (500 MHz) and FAB-MS including high resolution mass measurement. These modified nucleoside analogs have not been reported yet. Therefore, these modified nucleoside analogs are of potential value to be studied further for biological activity such as anticancer or antiviral.
In this study, we demonstrated the asymmetric synthesis of L-tert-leucine from trimethylpyruvate using branched-chain aminotransferase (BCAT) from Escherichia coli in the presence of L-glutamate as an amino donor. Since BCAT was severely inhibited by 2-ketoglutarate, in order to overcome this here, we developed a BCAT/aspartate aminotransferase (AspAT) and BCAT/AspAT/pyruvate decarboxylase (PDC) coupling reaction. In the BCAT/AspAT/PDC coupling reaction, 89.2 mM L-tert-leucine (ee>99%) was asymmetrically synthesized from 100 mM trimethylpyruvate.
The enzymatic synthesis of 3, 4-dihydroxyphenyl-L-alanine (L-DOPA) was examined for the effects of the reaction additives such as sodium borate, alcohol, and organic solvents. The enzyme used was tyrosine phenol-lyase of Citrobacter freundii KCTC 2006 produced in Escherichia coli. The amounts of tyrosine phenol-lyase and pyridoxal-5-phosphate were optimized to 2.0 units/ml and 0.1 mM, respectively, for the synthetic reaction. Sodium borate, a substance that forms a complex with pyrocatechol, reduced the enzyme deactivation by pyrocatechol although it seriously inhibited the enzyme activity. Among the organic solvents tested, dimethylsulfoxide, dimethylformamide, and alcohol increased the productivity of the L-DOPA synthesis. In a reaction system with 5% methanol, L-DOPA concentration increased up to 210 mM after 24 hours, and 77.1% of which was separated as precipitates. The L-DOPA was purified to 99.96% by solubilizing and recrystallyzing the precipitates.
Sarsasapogenin (SAR) is a steroidal sapogenin that is used as starting material for the industrial synthesis of steroids. It has various pharmacological benefits, such as antitumor and antidepressant activities. Since its effect on melanin biosynthesis has not been reported, we used murine melanocyte melan-a cells to investigate whether SAR influences melanogenesis. In this study, SAR significantly increased the melanin content of the melan-a cells from 1 to 10 ${\mu}M$. Based on an enzymatic activity assay using melan-a cell lysate, SAR had no effect on tyrosinase and DOPAchrome tautomerase activities. It also did not affect the protein expression of tyrosinase-related protein 1 and DOPAchrome tautomerase. However, protein levels of tyrosinase and microphthalmia-associated transcription factor were strongly stimulated by treatment with SAR. Therefore, our reports suggest that SAR treatment may induce melanogenesis through the stimulation of tyrosinase and microphthalmia-associated transcription factor expression in melan-a cells.
(S) and (R) 12-HETE. endogenous eicosanoids. have recently been discovered to be implicated in a number of important biological activities. In particular. it has recently been reported by us that both the capsaicin-activated channel of sensory neurons and the cloned capsaicin receptor (VR1) are activated by the eicosanoids including these metabolites. We report herein a novel and efficient asymmetric synthesis of highly enantiomerically enriched 12(S)-HETE via enzymatic kinetic resolution of the key allylic alcohol synthon. (omitted)
The reaction of lauric acid vinyl ester with n-butanol was established to give lauric acid butyl ester by subtilisin A-catalyzed transesterification in organic media containing nonionic surfactants. Pyridine has been used as an organic solvent since it provides higher yields than other organic solvents. However, because of stench of pyridine, compounds enzymatically synthesized in pyridine may be unsuitable as ingredients for foods and drugs. Hence, in order to select an organic solvent to replace pyridine, sugar esters were synthesized with the protease in various organic media. However, no solvent paralleled pyridine in yields. On the basis of this result, pyridine-based W/O microemulsions containing nonionic surfactants and water were used in enzymatic synthesis of the sugar ester, and when Tween 60, Brij 56, or 1-O-octyl-${\beta}$-D-glucopyranose was used for the W/O microemulsions, the yield was higher.
The enzymatic interesterification was performed to produce structured lipids (SLs) with palm mid fraction (PMF) and stearic ethyl ester (STEE) for 1, 3, 6, 9, 12 and 15 hr at $80^{\circ}C$. The reaction was catalyzed by Lipozyme TLIM (immobilized lipase from Thermomyces lanuginosus, amount of 20% by weight of total substrates) in a shaking water bath set at 180 rpm. The optimum condition for synthesis of asymmetric SLs were: substrate molar ratio 1:0.5 (PMF:STEE, by weight), reaction time 6 hr, enzyme 20% (wt%, water activity=0.085) of total substrate and reaction temperature $80^{\circ}C$. After reaction at optimized condition, triacylglycerols (symmetrical and asymmetrical TAGs) from reactants were isolated. POP/PPO (1,3-palmitoyl-2-oleoyl glycerol or 1,2-palmitoyl-3-oleoyl glycerol), POS/PSO (palmitoyl-oleoyl-stearoyl glycerol or palmitoyl-stearoyl-oleoyl glycerol), SOS/SSO (1,3-stearoyl-2-oleoyl glycerol or 1,2-stearoyl-3-oleoyl glycerol) were obtained by solvent fractionation. Finally, refined SLs contained stearic acid of 16.91%. Solid fat index and thermogram of the refined SLs were obtained using differential scanning calorimetry. The degree of asymmetric triacylglycerol in the refined SLs was analyzed by Ag-HPLC equipped with evaporated light scattering detector (ELSD). The refined SLs consisted of symmetric TAG of 41.15 area% and asymmetric TAG of 58.85 area%.
A passive microfluidic delivery system using hydrophobic valving and pneumatic control was devised for microfluidic handling on a chip. The microfluidic metering, cutting, transport, and merging of two liquids on the chip were correctly performed. The error range of the accuracy of microfluid metering was below 4% on a 20 nL scale, which showed that microfluid was easily manipulated with the desired volume on a chip. For a study of the feasibility of biochemical reactions on the chip, a single enzymatic reaction, such as ${\beta}-galactosidase$ reaction, was performed. The detection limit of the substrate, i.e. fluorescein $di-{\beta}-galactopyranoside$ (FDG) of the ${\beta}-galactosidase$ (6.7 fM), was about 76 pM. Additionally, multiple biochemical reactions such as in vitro protein synthesis of enhanced green fluorescence protein (EGFP) were successfully demonstrated at the nanoliter scale, which suggests that our microfluidic chip can be applied not only to miniaturization of various biochemical reactions, but also to development of the microfluidic biochemical reaction system requiring a precise nano-scale control.
Park, Hyun-Su;Choi, Kyoung-Hwa;Park, Young-Don;Park, Cheon-Seok;Cha, Jae-Ho
Journal of Life Science
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v.21
no.11
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pp.1631-1635
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2011
The capability of synthesizing polyphenol glycosides was examined using recombinant amylosucrase from the hyperthermophilic bacterium Deinococcus geothermalis. Based on the action mode of amylosucrase, sucrose and twenty-one polyphenols were used as a donor and acceptors respectively. The transglycosylation reaction by amylosucrase produced one or two major polyphenol glycosides depending on the type of polyphenols used. The synthesized polyphenol glycosides were detected by thin-layer chromatography. The structures of the newly synthesized polyphenol glycosides were predicted based on the transglycosylation mechanism of the enzyme. According to the acceptability of the polyphenols, the structural characteristics of polyphenol as an efficient acceptor were evaluated. The results indicate that amylosucrase is an efficient catalyst for the enzymatic synthesis of polyphenol glycosides, which have high potentials in food, cosmetics, and pharmaceutical industries.
In this study, a galactooligosaccharide (GOS) was synthesized using active ${\beta}$-galactosidase (${\beta}$-gal) inclusion bodies (IBs)-containing Escherichia coli (E. coli) cells. Analysis by MALDI-TOF (matrix-assisted laser desorption/ionization-time of flight) mass spectrometry revealed that a trisaccharide was the major constituent of the synthesized GOS mixture. Additionally, the optimal pH, lactose concentration, amounts of E. coli ${\beta}$-gal IBs, and temperature for GOS synthesis were 7.5, 500 g/l, 3.2 U/ml, and $37^{\circ}C$, respectively. The total GOS yield from 500 g/l of lactose under these optimal conditions was about 32%, which corresponded to 160.4 g/l of GOS. Western blot analyses revealed that ${\beta}$-gal IBs were gradually destroyed during the reaction. In addition, when both the reaction mixture and E. coli ${\beta}$-gal hydrolysate were analyzed by high-performance thin-layer chromatography (HP-TLC), the trisaccharide was determined to be galactosyl lactose, indicating that a galactose moiety was most likely transferred to a lactose molecule during GOS synthesis. This GOS synthesis system might be useful for the synthesis of galactosylated drugs, which have recently received significant attention owing to the ability of the galactose molecules to improve the drugs solubility while decreasing their toxicity. ${\beta}$-Gal IB utilization is potentially a more convenient and economic approach to enzymatic GOS synthesis, since no enzyme purification steps after the transgalactosylation reaction would be required.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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