Changes of silk fibroin molecular weight was studied by enzymatic proteolysis and reverse reaction of enzymatic proteolysis (plastein reaction) using chromatography, X-ray diffraction and thermal analysis methods. When the treatment of enzymatic proteolysis with $\alpha$-chymotripsin to silk fibroin solution, a precipitate of Fcp fractions was formed. And, this was dissolved in LiBr aqueous solution, the precipitate of PIFcp fractions was obtained again. Fcp and PIFcp fractions showed silk IIand silk Itype structure, respectively. Fcp fractions was about 6,900 in molecular weight, PIFcp fractions obtained by plastein reaction on the precipitate of Fcp fractions increased molecular weight to abort 15,000. The molecular weight of Fcp fractions was increased by plastein reaction, but Fcp fractions almost transited to silk I type crystal. The structure of silk I type of PIFcp fractions was steady identified by X-ray diffraction and thermal analysis. As molecular weight of Fcp fractions was gradually low, PIFcp fractions was become to macromolecule little by little.
Traditionally, small-molecule or antibody-based therapies against human diseases have been designed to inhibit the enzymatic activity or compete for the ligand binding sites of pathological target proteins. Despite its demonstrated effectiveness, such as in cancer treatment, this approach is often limited by recurring drug resistance. More importantly, not all molecular targets are enzymes or receptors with druggable 'hot spots' that can be directly occupied by active site-directed inhibitors. Recently, a promising new paradigm has been created, in which small-molecule chemicals harness the naturally occurring protein quality control machinery of the ubiquitin-proteasome system to specifically eradicate disease-causing proteins in cells. Such 'chemically induced protein degradation' may provide unprecedented opportunities for targeting proteins that are inherently undruggable, such as structural scaffolds and other non-enzymatic molecules, for therapeutic purposes. This review focuses on surveying recent progress in developing E3-guided proteolysis-targeting chimeras (PROTACs) and small-molecule chemical modulators of deubiquitinating enzymes upstream of or on the proteasome.
The crystalline fraction of silk fibroin (Fcp) was obtained from the aqueous solution of silk fibroin hydrolyzed by $\alpha$-chymotrypsin. The molecular weight of Fcp was found approximately 7000 by using high speed GPC. On the other hand, a high molecular weight of PIFcp product could be obtained by the reverse reaction of enzymatic proteolysis of Fcp precipitates. Some parts of this PIFcp have the molecular weights of approximately 17000 and 24000. As a result of x-ray diffraction analysis, the crystal structure of Fcp and PIFcp was turned out silk-II type and silk-I type, respectively. Upon the reverse reaction of enzymatic protelysis, the structural transition occured from silk-II type to silk-I type crystal for the most of Fcp precipitates. It was confirmed that PIFcp might be somewhat stable crystal structure of silk-I type according to the thermal analysis as well as x-ray diffraction method.
To investigate the feasibility of mucosal delivery of $[D-Ala^6]$ LHRH, a potent analogue of LHRH, enzymatic proteolysis of $[D-Ala^6]$ LHRH and inhibitory effect of medium chain fatty acid salts(MFA) were studied using rabbit mucosal homogenate. $[D-Ala^6]$ LHRH incubated in homogenates of rectal(RE), nasal(NA) and vaginal(VA) mucosa were assayed by HPLC. The degradation of $[D-Ala^6]$ LHRH followed the first order kinetics. The degradation products were found as $[D-Ala^6]$$LHRH^{1-7}$(m-i), to a lesser extent, $[D-Ala^6]$$LHRH^{1-9}$(m-ii) and $[D-Ala^6]$$LHRH^{1-3}$(m-iii) by the method of amino acid analysis(PITC method). The formation of$[D-Ala^6]$$LHRH^{1-7}$ was not inhibited by the addition of disodium ethylenediaminetetraacetic acid but inhibited by sodium tauro-24,25-dihydrofusidate, suggesting that endopeptidase 24.11(EP 24.11) cleaves the $Leu^7-Arg^8$ bond of $[D-Ala^6]$ LHRH and is the primary $[D-Ala^6]$ LHRH degrading enzyme. The patterns of $[D-Ala^6]$ LHRH degradation indicated that EP 24.11 exists in each mucosal homogenate with the order of RE>NA>VA. MFA significantly inhibited the proteolysis of $[D-Ala^6]$ LHRH. The addition of sodium caprate(1.0%) or sodium laurate(0.5%) to the each mucosal homogenate completely protected $[D-Ala^6]$ LHRH from the degradation.
This study evaluated the binding abilities of rabbit anti-ovalbumin (OVA) immunoglobulin G (IgG) and egg-allergic patient IgE on gamma-irradiated OVA during proteolysis using pepsin and trypsin. The concentrations of both the intact and the irradiated OVAs decreased during proteolysis when detected with IgG However, when detected by patient IgE the concentration of the intact OVA decreased up to 30 min after the trypsin treatment and increased thereafter. Irradiated OVA detected by patient IgE showed a lower initial concentration (0.16%) than that of the intact OVA, and this reduced concentration was maintained stably. The results indicate that irradiation, rather than enzymatic treatment, could reduce the binding of the irradiated and enzyme-treated OVA. Therefore, gamma irradiation has potential as an effective method to reduce OVA-induced allergy and may enhance the safety of egg-allergic individuals.
The enzymatic properties of soil cellobiohydrolase were examined and compared with those of cellobiohydrolase-active extracts from soil in the forms of enzyme-humic complex and humicfree enzyme, and cellobiohydrolase partially pruified from Aspergillus niger. The pH optima of soil cellobiohydrolase and cellobiohydrolase-humic complex were greater by 1.5-3.0 pH units than those of cellobiohydrolase in humic-free extract and from A. niger. Soil cellobiohydrolase and cellobiohydrolase-humic complex were remarkably resistant to thermal denaturation and proteolysis. These results confirm that cellobiohydrolase in soil is atable in conditions which rapidly inactivate microbial cellobiohydrolase and that its stability is due to the immobilization of this enzyme by association with humic substances. The Michaelis-Menten constants (Km) for soil, cellobiohydrolase-humic complex, humic free extract and cellobiohydrolase from A. niger were 22.1mg/ml, 11.3mg/ml, 10.6mg/ml and 4.5 mg/ml of Avicel, respectively.
Objective: The objective of this study was to isolate proteolytic microorganisms and evaluate their effects on proteolysis in total mixed ration (TMR) silages of soybean curd residue. Methods: TMRs were formulated with soybean curd residue, alfalfa or Leymus chinensis hay, corn meal, soybean meal, a vitamin-mineral supplement, and salt in a ratio of 25.0: 40.0:30.0:4.0:0.5:0.5, respectively, on a basis of dry matter. The microbial proteinases during ensiling were characterized, the dominate strains associated with proteolysis were identified, and their enzymatic characterization were evaluated in alfalfa (A-TMR) and Leymus chinensis (L-TMR) TMR silages containing soybean curd residue. Results: Both A-TMR and L-TMR silages were well preserved, with low pH and high lactic acid concentrations. The aerobic bacteria and yeast counts in both TMR silages decreased to about 105 cfu/g fresh matter (FM) and below the detection limit, respectively. The lactic acid bacteria count increased to 109 cfu/g FM. The total microbial proteinases activities reached their maximums during the early ensiling stage and then reduced in both TMR silages with fermentation prolonged. Metalloproteinase was the main proteinase when the total proteinases activities reached their maximums, and when ensiling terminated, metallo and serine proteinases played equally important parts in proteolysis in both TMR silages. Strains in the genera Curtobacterium and Paenibacillus were identified as the most dominant proteolytic bacteria in A-TMR and L-TMR, respectively, and both their proteinases were mainly with metalloproteinase characteristics. In the latter ensiling phase, Enterococcus faecium strains became the major sources of proteolytic enzymes in both TMR silages. Their proteinases were mainly of metallo and serine proteinases classes in this experiment. Conclusion: Proteolytic aerobic bacteria were substituted by proteolytic lactic acid bacteria during ensiling, and the microbial serine and metallo proteinases in these strains played leading roles in proteolysis in TMR silages.
This study was performed to measure the angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitory activity of peptide extracts derived from the enzymatic proteolysis of Hanwoo Musculus longissimus (M. longissimus) during cold storage. Thermolysin (80 ppm, w/w) and protease type XIII (100 ppm, w/w) were injected separately or in combination for the enzymatic proteolysis of sarcoplasmic and myofibrillar proteins prior to storage at $5^{\circ}C$ (T1) or at $-1^{\circ}C$ (T2) in a chilling room for 9 days. Beef injected with thermolysin (E2) and thermolysin+protease type XIII (E3) showed a significantly higher degree of hydrolysis at both storage temperatures (p<0.05). During the storage period, T1E2 at day 6 and T1E3 at day 9 showed the strongest ACE inhibitory activity with sarcoplasmic and myofibrillar protein proteolysates. Macromolecules greater than 10,000 Da were removed by ultra filtration, and the filtrates were separated into fractions using gel filtration. Five and three major fractions were collected from S-T1E2-6 and M-T1E3-9 extracts, respectively, and the $4^{th}$ fraction of the S-T1E2-6 extracts showed the highest ACE inhibitory rate of $61.96{\pm}7.41%$.
An enzymatic process was developed to produce protein hydrolysater form defatted soya protein. Various unit operations were tried, and the effects of pre- and post-treatments on the product characteristics such as degree of hydroylsis (DH), free amino acid content (%FAA) and average molecular weight (MW) were investigated. The use of acid washes showed no difference in %DH. Increasing pH during pre-cooking gave lower %DH. Alkaline cooking made too much insoluble protein, thus the protein yield was too small. A better hydrolysis with more acceptable taste was obtained when the combination of Neutrase/Alcalase/Flavourzyme was used in place of Alcalase/Flavourzyme combination; Untoasted defatted soya was more effective on the proteolysis than toasted one. The MW of the evaporated and spray dried product was higher than that of undried product, due to precipitation of low-solubility components. When ultrafiltration and the product concentration carried out the product separation by reverse osmosis, the solubility and the taste of the product were improved. The difference between enzyme hydrolysate and acid hydrolysate was significant in free amino acid composition, especially in tyrosine, phenylalanine, glutamine and asparagine.
Cheese flavor is derived from three main pathways, that are proteolysis, lipolysis and glycolysis, the extent of which varies according to the cheese variety. Proteolysis is the most complex of the three primary events during cheese ripening. The basis of EMC technology is the use of specific enzymes acting at optimum conditions to produce required cheese flavors from suitable substrates. These enzymes consist of proteinases, peptidases, lipases, esterases. The key factors in EMC production are the type of cheese flavor required, the type and specificity of enzyme or cultures used, their concentration and some processing parameters, such as pH, temperature, agitation, aeration, and incubation time. The emulsifiers, bacteriocins, flavor compounds, and precursors also effect to it importantly. The dosage of enzyme or starter culture used is dependent on the intensity of flavor required, processing time and temperature and the quality of the initial substrate. To produce a consistent EMC product it is necessary to have a highly controlled process, and a detailed knowledge of the enzymatic reactions under the conditions used must be fully understood.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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