Background: To investigate the effects of ASMase mediated endothelial cell apoptosis in multiple hypofractionated irradiations in CT26 tumor bearing mice. Materials and Methods: Thirty-five CT26 tumor bearing mice were subjected to single ionizing radiation (IR) of 0, 3, 6, 9, 12, 15, 18 Gy. Eight hours after IR, the mice were sacrificed and tumor tissues were used for CD31 immunohistochemistry staining, TUNEL and CD31 double staining, ASMase activity assay. Then 6 and 12 Gy were chosen for multiple hypofractionated IR experiments according to the above results. Each time after IR, 5 mice were sacrificed and assayed as above. Results: The ASMase activities were increased significantly after a single IR of 12 Gy or higher which was accompanied with remarkable increased endothelial cell apoptosis and decreased MVD. For 6 Gy which was not high enough to trigger ASMase activation, after 2 or more times of IR, the ASMase activities were significantly increased accompanied with remarkable increased endothelial cell apoptosis and decreased MVD. While for 12 Gy, after 2 or more times of IR, the ASMase activities and endothelial cell apoptosis rates were maintained without remarkable increase; however, the MVD was significantly decreased. What's more, the cancer cell apoptosis rates were significantly increased after multiple IR for both 6 Gy and 12 Gy. Conclusions: ASMase mediated endothelial cell apoptosis may play an important role in the process of multiple hypofractionated IR for CT26 colorectal carcinoma.
Angiogenesis is essential for tumor growth and vascular endothelial cell growth factor (VEGF) plays a key role in this process. Conversely, sphingosine 1-phosphate (S1P) is a biologically active sphingolipid known to play a key role in cancer progression by regulating endothelial cell proliferation and migration. In this study, the authors found that S1P increases the level of VEGF mRNA in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) and immortalized HUVECs (iHUVECs). Additionally, S1P was found to increase VEGF promoter activity in MS-1 mouse pancreatic islet endothelial cells. Furthermore, a pharmacological inhibitory study revealed that $G_{\alpha i/o}$-mediated phospholipase C, Akt, Erk, and p38 MAPK signaling are involved in this S1P-induced expression of VEGF. A component of AP1 transcription factor is important for S1P-induced VEGF expression. Taken together, these findings suggest that S1P enhances endothelial cell proliferation and migrat ion by upregulating the expression of VEGF mRNA.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제31권1호
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pp.39-45
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2005
Stem cell therapy using mesenchymal stem cells(MSCs) transplantation have been paid attention because of their powerful proliferation and pluripotent differentiating ability. Although umbilical cord blood (UCB) is well known to be a rich source of hematopoietic stem cells with practical and ethical advantages, the presence of mesenchymal stem cells (MSCs) in UCB has been controversial and it remains to be validated. In this study, we examine the presence of MSCs in UCB harvests and the prevalence of them is compared to that of endothelial progenitor cells. For this, CD34+ and CD34- cells were isolated and cultured under the endothelial cell growth medium and mesenchymal stem cell growth medium respectively. The present study showed that ESC-like cells could be isolated and expanded from preterm UCBs but were not acquired efficiently from full-terms. They expressed CD14-, CD34-, CD45-, CD29+, CD44+, CD105+ cell surface marker and could differentiate into adipogenic and osteogenic lineages. Our results suggest that MSCs are fewer in full-term UCB compared to endothelial progenitor cells.
Objective: Pluripotent stem cell-derived lymphatic endothelial cells (LECs) show great promise in their therapeutic application in the field of regenerative medicine related to lymphatic vessels. We tested the approach of forced differentiation of mouse embryonal stem cells into LECs using biodegradable poly lactic-co-glycolic acid (PLGA) nanospheres in conjugation with growth factors (vascular endothelial growth factors [VEGF-A and VEGF-C]). Methods: We evaluated the practical use of heparin-conjugated PLGA nanoparticles (molecular weight ~15,000) in conjugation with VEGF-A/C, embryoid body (EB) formation, and LEC differentiation using immunofluorescence staining followed by quantification and quantitative real-time polymerase chain reaction analysis. Results: We showed that formation and differentiation of EB with VEGF-A/C-conjugated PLGA nanospheres, compared to direct supplementation of VEGF-A/C to the EB differentiation media, greatly improved yield of LYVE1(+) LECs. Our analyses revealed that the enhanced potential of LEC differentiation using VEGF-A/C-conjugated PLGA nanospheres was mediated by elevation of expression of the genes that are important for lymphatic vessel formation. Conclusion: Together, we not only established an improved protocol for LEC differentiation using PLGA nanospheres but also provided a platform technology for the mechanistic study of LEC development in mammals.
Ha, Jung Min;Jin, Seo Yeon;Lee, Hye Sun;Shin, Hwa Kyoung;Lee, Dong Hyung;Song, Sang Heon;Kim, Chi Dae;Bae, Sun Sik
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제20권5호
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pp.533-538
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2016
Angiogenesis plays an essential role in embryo development, tissue repair, inflammatory diseases, and tumor growth. In the present study, we showed that endothelial nitric oxide synthase (eNOS) regulates retinal angiogenesis. Mice that lack eNOS showed growth retardation, and retinal vessel development was significantly delayed. In addition, the number of tip cells and filopodia length were significantly reduced in mice lacking eNOS. Retinal endothelial cell proliferation was significantly blocked in mice lacking eNOS, and EMG-2-induced endothelial cell sprouting was significantly reduced in aortic vessels isolated from eNOS-deficient mice. Finally, pericyte recruitment to endothelial cells and vascular smooth muscle cell coverage to blood vessels were attenuated in mice lacking eNOS. Taken together, we suggest that the endothelial cell function and blood vessel maturation are regulated by eNOS during retinal angiogenesis.
Purpose: Protein tyrosine kinase(PTK), protein kinase C(PKC), oxidase, as a mediator, have been known to take a role in signal transduction pathway of angiogenesis. The authors confirmed that PKC is the most noticeable mediator for abnormal proliferation of vascular endothelial cells through in vitro study model using the inhibitors, targeting the formation of three co-enzymes. In this study, we would investigate which isoform of PKC play an important role in abnormal angiogenesis of vascular endothelial cell. Methods: In 96 well plates, $10^4$ HUVECs(human umbilical vein endothelial cells) were evenly distributed. Two groups were established; the control group without administration of DMH(1,2-dimethylhydrazine) and the DMH group with administration of $7.5{\times}10^{-9}M$ DMH. RNA was extracted from vascular endothelial cell of each group and expression of the PKC isoform was analyzed by RT-PCR(reverse transcriptase-polymerase chain reaction) method. Results: RT-PCR analysis showed that $PKC{\alpha}$, $-{\beta}I$, $-{\beta}II$, $-{\eta}$, $-{\mu}$ and $-{\iota}$ were expressed in vascular endothelial cells of each group. DMH incresed the expression of $PKC{\alpha}$ and $PKC{\mu}$, and decreased $PKC{\beta}I$, $PKC{\beta}II$ expression dominantly. Conclusion: Based on the result of this study, it was suggested that $PKC{\alpha}$ and $PKC{\mu}$ may have significant role in abnormal proliferation of vascular endothelial cell.
Kim, Su-Ryun;Park, Hyun-Joo;Bae, Soo-Kyung;Park, Ji-Hyun;Kim, Hyo-Sun;Koo, Tae-Hyeon;Bae, Moon-Kyoung
International Journal of Oral Biology
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제33권4호
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pp.149-154
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2008
Porphyromonas gingivalis, a major periodontal pathogen, has been implicated in the initiation and progression of periodontal disease. Endothelial dysfunction (Editor note: Aberrant and dysfunction are somewhat redundant. The authors may want to choose one or the other.) contributes to chronic periodontal inflammation. Using cDNA-representational difference analysis, we found that P.gingivalis lipopolysaccharide differentially induces a number of genes in human microvascular endothelial cells. Among these upregulated genes, we focused on intercellular adhesion molecule-1 (VCAM-1), which is crucial for leukocyte recruitment during vascular inflammation. P. gingivalis LPS significantly increased the expression of vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) as well as ICAM-1. Promoter assays revealed that the transcription of these cell adhesion molecules was mainly regulated by nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$) in endothelial cells. Furthermore, P. gingivalis LPS significantly increased leukocyte adhesiveness to microvascular endothelial cells and to aortic endothelium. Taken together, our results demonstrate that P. gingivalis LPS activates microvascular endothelial cells through NF-${\kappa}B$-dependent expression of cell adhesion molecules.
Endothelial dysfunction in atherosclerosis is associated with increasing oxidative stress that could be reversed by antioxidant. Therefore epigallocatechin gallate (EGCG), epicatechin gallate (ECG), epigallocatechin (EGC) and catechin (C) of tea flavonoids were investigated for their roles in regenerating endothelial cell. Peripheral blood mononuclear cells (PB-MNCs) were isolated, plated and cultured in medium with/without treatment of EGCG, ECG, EGC and C. Results showed that among all EGCG, ECG, EGC and C concentrations tested, $12.5{\mu}mol/L$ was not cytotoxic for peripheral blood-derived endothelial progenitor cells (PB-EPCs). Treatment of EGCG, ECG, EGC or C increased the percentages of CD34, CD133, VEGFR-2 expressions and suppressed hydrogen peroxide-induced percentages of reactive oxygen species (ROS) level in PB-EPCs. Taken together, our current results showed that EGCG, ECG, EGC or C of tea flavonoids could induce differentiation of PB-MNCs into PB-EPCs as well as protect PB-EPCs from oxidative damage by suppresing the intracellular ROS levels.
This study aimed to investigate the effects and potential mechanisms of Chikusetsusaponin V (CsV) on endothelial nitric oxide synthase (eNOS) and vascular endothelial cell functions. Different concentrations of CsV were added to animal models, bovine aorta endothelial cells (BAECs) and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) cultured in vitro. qPCR, Western blotting (WB), and B ultrasound were performed to explore the effects of CsV on mouse endothelial cell functions, vascular stiffness and cellular eNOS mRNA, protein expression and NO release. Bioinformatics analysis, network pharmacology, molecular docking and protein mass spectrometry analysis were conducted to jointly predict the upstream transcription factors of eNOS. Furthermore, pulldown and ChIP and dual luciferase assays were employed for subsequent verification. At the presence or absence of CsV stimulation, either overexpression or knockdown of purine rich element binding protein A (PURA) was conducted, and PCR assay was employed to detect PURA and eNOS mRNA expressions, Western blot was used to detect PURA and eNOS protein expressions, cell NO release and serum NO levels. Tube formation experiment was conducted to detect the tube forming capability of HUVECs cells. The animal vasodilation function test detected the vasodilation functions. Ultrasonic detection was performed to determine the mouse aortic arch pulse wave velocity to identify aortic stiffness. CsV stimulus on bovine aortic cells revealed that CsV could upregulate eNOS protein levels in vascular endothelial cells in a concentration and time dependent manner. The expression levels of eNOS mRNA and phosphorylation sites Ser1177, Ser633 and Thr495 increased significantly after CsV stimulation. Meanwhile, CsV could also enhance the tube forming capability of HUVECs cells. Following the mice were gavaged using CsV, the eNOS protein level of mouse aortic endothelial cells was upregulated in a concentration- and time-dependent manner, and serum NO release and vasodilation ability were simultaneously elevated whereas arterial stiffness was alleviated. The pulldown, ChIP and dual luciferase assays demonstrated that PURA could bind to the eNOS promoter and facilitate the transcription of eNOS. Under the conditions of presence or absence of CsV stimulation, overexpression or knockdown of PURA indicated that the effect of CsV on vascular endothelial function and eNOS was weakened following PURA gene silence, whereas overexpression of PURA gene could enhance the effect of CsV upregulating eNOS expression. CsV could promote NO release from endothelial cells by upregulating the expression of PURA/eNOS pathway, improve endothelial cell functions, enhance vasodilation capability, and alleviate vessel stiffness. The present study plays a role in offering a theoretical basis for the development and application of CsV in vascular function improvement, and it also provides a more comprehensive understanding of the pharmacodynamics of CsV.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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